Detección del virus de la inmunodeficiencia humana tipo 1 en menores de 18 meses provenientes de madres seropositivas

  • Patricia Márquez Área de Biotecnología, Instituto Nacional de Investigación en Salud Pública “Leopoldo Izquieta Pérez”
  • Martha Sánchez Área de Biotecnología, Instituto Nacional de Investigación en Salud Pública “Leopoldo Izquieta Pérez”
  • Cesar Bedoya 2 Dirección de Investigación, Desarrollo e Innovación, Instituto Nacional de Investigación en Salud Pública “Leopoldo Izquieta Pérez”, Ecuador Facultad de Ciencias de la Vida, Escuela Superior Politécnica de Litoral, Ecuador
  • Maylen Espinosa Dirección de Investigación, Desarrollo e Innovación, Instituto Nacional de Investigación en Salud Pública “Leopoldo Izquieta Pérez”, Ecuador
  • Iliana Caicedo Dirección Técnica del área de ensayos clínicos del ARCSA, Ecuador
  • Cindy Nacipucha Área de Biotecnología, Instituto Nacional de Investigación en Salud Pública “Leopoldo Izquieta Pérez”, Ecuador
  • Cosme Hidalgo Área de Biotecnología, Instituto Nacional de Investigación en Salud Pública “Leopoldo Izquieta Pérez”, Ecuador
  • Tatiana Sivisaca Área de Biotecnología, Instituto Nacional de Investigación en Salud Pública “Leopoldo Izquieta Pérez”, Ecuador
  • Angel Ortiz Facultad de Ciencias Médicas, Universidad de Guayaquil, Ecuador
Palabras clave: Reacción en Cadena de la Polimerasa Anidada, región conservada, Transmisión Vertical

Resumen

Actualmente la transmisión materna infantil es la primera causa de infección por el Virus de la Inmunodeficiencia Humana a nivel mundial en poblaciones pediátricas. La Reacción en Cadena de la Polimerasa es la técnica molecular más eficiente para la identificación del ADN del Virus de la Inmunodeficiencia Humana tipo 1 en niños menores de 18 meses, nacidos de madres seropositivas. En Ecuador, no existen estudios anteriores publicados sobre la aplicación de las técnicas moleculares en la detección del virus en infantes, motivo que llevó a la realización de la presente investigación, cuyo objetivo principal es detectar el ADN del Virus de la Inmunodeficiencia Humana tipo1 en menores de 18 meses provenientes de madres seropositivas al Virus de la Inmunodeficiencia Humana.  Para esto, se analizaron 118 muestras de sangre periféricas de niños menores de 18 meses nacidos de madres positivas al Virus de la Inmunodeficiencia Humana durante el embarazo correspondiente a 59 pacientes. Las muestras provienen de diferentes centros de salud y hospitales, las cuales fueron tomadas en dos ocasiones diferentes separadas por un período de 6 meses para una mejor confirmación del caso. Una Reacción en Cadena de la Polimerasa anidada fue realizada para la amplificación de una región conservada del gen gag del VIH-1. De las 59 muestras investigadas, en una primera instancia, el 15,25% fueron positivas, mientras que, en la segunda ocasión las muestras positivas constituyeron el 20,33% del total, con lo cual se demuestra que la negatividad de estas pruebas a una edad temprana no excluye definitivamente la infección.

Citas

Albert J., and E. M. Fenyö. 1990. “Simple, Sensitive, and Specific Detection of Human Immunodeficiency Virus Type 1 in Clinical Specimens by Polymerase Chain Reaction with Nested Primers.” Journal of Clinical Microbiology 28 (7): 1560–64.

Chohan Bhavna H., Emery Sandra., Wamalwa Dalton., John-Stewart Grace., Majiwa Maxwel., Ng’ayo Musa., Froggett,Steve., and Overbaugh Julie. 2011. “Evaluation of a Single Round Polymerase Chain Reaction Assay Using Dried Blood Spots for Diagnosis of HIV-1 Infection in Infants in an African Setting.” BMC Pediatrics 11: 18. doi:10.1186/1471-2431-11-18.

De Rivera Ivette Lorenzana., and Barahona Wendy Murillo. 2014. “Aplicación del PCR-ADN, en el diagnóstico de la Infección Por VIH-1 En Infantes.” Accessed June 23.

Fischer A., Lejczak C., Lambert C., Servais J, Makombe N., Rusine J., Staub T., Hemmer R., Schneider F., Schmit, J. C., and Arendt, V. 2004. “Simple DNA Extraction Method for Dried Blood Spots and Comparison of Two PCR Assays for Diagnosis of Vertical Human Immunodeficiency Virus Type 1 Transmission in Rwanda.” Journal of Clinical Microbiology, 42(1), 16–20. doi: 10.1128/JCM.42.1.16-20.2004.

Jeffrey J Germer., and Tara M. Gerads. 2006. “Detection of HIV-1 Proviral DNA with the AMPLICOR HIV-1 DNA Test, Version 1.5, Following Sample Processing by the MagNA Pure LC Instrument.” Journal of Clinical Virology : The Official Publication of the Pan American Society for Clinical Virology 37 (3): 195–198. doi:10.1016/j.jcv.2006.08.001.

Kairiyama Claudia., Benhaim Marcela., Buresti Patricia., Citatti Sergio., Pengue Claudia., Perroni Nancy., Pittaluga Sergio., and Tonelli María C. 2007. “Detección de VIH Proviral Por Nested-PCR Utilizando Metodología Casera (in House).” Bioquímica y Patología Clínica 71 (1): 49–53.

“Lonza Walkersville Inc. 2014. Manta. Accessed July 1.http://www.manta.com/c/mmnxtt2/lonza-walkersville-inc

Lukong ChristopherS., Tshimwanga EdourdD., and Mfuh AnitaY. 2013. “The Role of Polymerase Chain Reaction in Early Diagnosis of Human Immunodeficiency Virus Infection in Infants.” Annals of African Medicine 12 (4): 232. doi:10.4103/1596-3519.122692.

MSP. 2016. Ministerio de Salud Pública del Ecuador. Disponible en:

http://www.salud.gob.ec/informacion-estadistica-de-produccion-de-salud/ https://public.tableau.com/profile/publish/BASE_INCIDENCIA_VIH_2016/VIHSIDA#!/publish-confirm

Nesheim S., Lee F., Kalish M. L., Ou C. Y., Sawyer M., Clark S., Meadows L., Grimes V., Simonds R. J., and Nahmias A. 1997. “Diagnosis of Perinatal Human Immunodeficiency Virus Infection by Polymerase Chain Reaction and p24 Antigen Detection after Immune Complex Dissociation in an Urban Community Hospital.” The Journal of Infectious Diseases 175 (6): 1333–36.

Ngo-Giang-Huong Nicole., Khamduang Woottichai., Leurent Baptiste., Collins Intira., Nantasen Issaren., Leechanachai Pranee., Sirirungsi Wasna., et al. 2008. “Early HIV-1 Diagnosis Using in-House Real-Time PCR Amplification on Dried Blood Spots for Infants in Remote and Resource-Limited Settings.” Journal of Acquired Immune Deficiency Syndromes (1999) 49 (5): 465–471. doi:10.1097/QAI.0b013e31818e2531.

OMS. 2015. Organización Mundial de la Salud. Disponible en: http://www.who.int/hiv/topics/mtct/es/

Pane F, Buttò S, Gobbo M. L, Franco M, Butteroni C, Pastore L, Maiorano G, Foggia M, Cataldo P T, and Guarino A. 1995. “Direct Detection of Proviral Gag Segment of Human Immunodeficiency Virus in Peripheral Blood Lymphocytes by Colorimetric PCR Assay as a Clinical Laboratory Tool Applied to Different at-Risk Populations.” Journal of Clinical Microbiology 33 (3): 641–47.

E. Piwowar-Manning., L. Lugalia., B. Kafufu., and J. Brooks Jackson. 2008. “Comparison of Results Obtained with Amplicor HIV-1 DNA PCR Test Version 1.5 Using 100 versus 500 Microliters of Whole Blood.” Journal of Clinical Microbiology 46 (3): 1104–5. doi:10.1128/JCM.02259-07.

“(QIAampR Blood DNA Mini Kit Handbook) - Buscar Con Google.” 2014. Accessed July 1. https://www.google.com.ec/search?q=(QIAampR++blood+DNA+Mini+Kit+Handbook)&ie=utf-8&oe=utf-8&aq=t&rls=org.mozilla:es-ES:official&client=firefox-a&channel=sb&gfe_rd=cr&ei=dvqyU6qoCKTQ8ges5YGoCw

Yourno J, & Conroy J, 1992. “A novel polymerase chain reaction method for detection of human immunodeficiency virus in dried blood spots on filter paper”. Journal of Clinical Microbiology, Vol 30(11):2887-2892.

Publicado
2018-02-01
Sección
ARTÍCULOS DE INVESTIGACIÓN