ISSN-e 2528-7818
DOI: 10.54753/blc.v16i1
Volumen 16 | Número 1 | Año 2026
Revista Científica Indexada
BOSQUES
Latitud Cero
Editorial Universidad Nacional de Loja
Dirección: Ciudad Universitaria Guillermo Falconí. Loja - Ecuador
Cod. Postal: 110111 PBX: +593 7 254 7252
email: bosqueslatitudcero@unl.edu.ec
www.unl.edu.ec revistas.unl.edu.ec/index.php/bosques
Flora preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur
oriente de la provincia de Zamora Chinchipe,
Ecuador
El Oso Andino: ciencia, mito
y emblema de identidad de la
Universidad Nacional de Loja, Ecuador
BOSQUES
Latitud Cero
Edición:
Volumen 16 Número 1
Enero - Junio 2026
DOI: 10.54753/blc.v16i1
ISSN-e 2528-7818
Revista científica indexada
Acceso Abierto
Semestral
Digital
Editorial Universidad Nacional de Loja
Dirección: Ciudad Universitaria Guillermo Falconí. Loja - Ecuador
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email: bosqueslatitudcero@unl.edu.ec
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AUTORIDADES
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Royal Botanic Garden Edinburgh, UK
Ph.D. Haline Heidinger Abadía
Universidad Nacional Agraria La Molina, Perú
Ph.D. Alberto Julca Otiniano
Universidad Nacional Agraria La Molina, Perú
Ph.D. Tania Delgado Cueva
Universidad Nacional de Loja, Ecuador
Ph.D. Patricio Castro Quezada
Universidad de Cuenca, Ecuador
Ph.D. Mario Añazco Romero
Universidad Técnica del Norte, Ecuador
Ph.D. Alan García Bermúdez
Universidad Técnica de Manabí, Ecuador
Ph.D. Geraldo Cuadrado Barreto
Universidad Técnica de Cotopaxi, Ecuador
Ph.D. Lía Ramos Fernández
Universidad Nacional Agraria La Molina, Perú
Ph.D. Manuel Canto Sáenz
Universidad Nacional Agraria La Molina, Perú
Ph.D. Alina Freire Fierro
Universidad Regional Amazónica, Ecuador
Ph.D. Gretel Geada
Universidad Pinar del Río, Cuba
Ph.D. Dalton Marcelo Pardo Enríquez
Universidad Ecológica Amazónica, Ecuador
Ph.D. José Sánchez Fonseca
Universidad Guantánamo, Cuba
Ph.D. Alonso Cartuche Paqui
Universidad Nacional de Loja, Ecuador
Ph.D. Iris Jacaranda Cruz Larios
Posgr. Ciencias Forestales Montecillo, México
Mg.Sc. Oswaldo Jadán Maza
Universidad de Cuenca, Ecuador
Mg.Sc. Juan Maita Chamba
Universidad Nacional de Loja, Ecuador
Ph.D Nikolay Aguirre
Rector
Universidad Nacional de Loja
Ph.D Elvia Zhapa
Vicerrectora
Universidad Nacional de Loja
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Ph.D Zhofre Aguirre
Director General
Facultad Agropecuaria y de
Recursos Naturales Renovables
Mg.Sc Vinicio Alvarado Jaramillo
Editor en Jefe
Facultad Agropecuaria y de
Recursos Naturales Renovables
Mg.Sc Johanna Muñoz Mg.Sc
Editor de Sección
Facultad Agropecuaria y de
Recursos Naturales Renovables
Diseño de logotipo
Mg.Sc. Vinicio Alvarado Jaramillo
Diseño y diagramación
Mg.Sc Vinicio Alvarado Jaramillo
Mg.Sc. Augusto Correa
Fotografía de portada
Ph.D Zhofre Aguirre
Revisión Abstract
Ph.D Aura Paucar
COMITÉ CIENTÍFICO
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EDITORIAL
La historia de la conservación ambiental ha dado
un giro decisivo en el corazón de la Amazonía.
La reciente Cumbre de Belém y la COP30 no solo
han marcado el décimo aniversario del Acuerdo
de París, sino que han inaugurado una «era de
implementación» bajo el espíritu del Mutirão
Global —una movilización colectiva basada en la
solidaridad y la acción compartida—. Para quienes
trabajamos y vivimos en la mitad del mundo, las
decisiones tomadas en Brasil, conocidas como
el «Paquete Belém», resuenan con una urgencia
particular.
El mensaje central es claro: la crisis ecológica es
indisoluble de la crisis social. La Declaración de
Belém sobre la lucha contra el racismo ambiental,
respaldada por Ecuador, reconoce explícitamente
que el cambio climático exacerba las desigualdades
históricas, afectando desproporcionadamente
a los pueblos indígenas, afrodescendientes y
comunidades locales. Ya no se trata solo de contar
hectáreas de bosque o toneladas de carbono; se
trata de justicia racial y social.
Uno de los hitos más esperanzadores para nuestra
región es el lanzamiento del Tropical Forest Forever
Facility (TFFF) o Fondo Bosques Tropicales para
Siempre. Este mecanismo innovador busca resolver
una deuda histórica: garantizar que los bosques
tropicales valgan más en pie que destruidos. Con
un capital inicial movilizado de más de 6,7 billones
de dólares, el fondo promete pagos predecibles
reconociendo el valor intrínseco de los servicios
ecosistémicos que nuestros bosques proveen al
mundo.
Sin embargo, proteger el bosque implica también
proteger a quienes lo habitan y lo trabajan. La
declaración sobre «Acción Climática Centrada en
las Personas» subraya la necesidad de apoyar a los
pequeños productores de alimentos como agentes
de resiliencia. Esto es vital para integrar sistemas
de protección social con la gestión de recursos
naturales, asegurando que la transición hacia una
economía baja en carbono no deje a nadie atrás.
La realidad para Loja y Ecuador
¿Cómo aterrizamos estos acuerdos globales
en nuestra Latitud Cero? Para Ecuador, y
implicaciones son profundas y requieren acción
inmediata.
Primero, la gestión del fuego. Ecuador se ha
sumado al «Llamado a la Acción sobre el Manejo
Integral del Fuego», un compromiso para transitar
de la simple supresión de incendios a estrategias
de prevención que incorporen el conocimiento
ancestral y comunitario. En los ecosistemas secos
y frágiles del sur del Ecuador, donde los incendios
forestales son una amenaza recurrente agravada
por el cambio climático, este enfoque es vital.
Debemos empoderar a nuestras comunidades
locales como primeros respondientes y guardianes
del territorio, tal como lo estipula el acuerdo.
Ecuador en la lista de países que respaldan el TFFF
y la declaración contra el racismo ambiental abre
hacia nuestras áreas de conservación. Loja, con
su rica biodiversidad y sus bosques secos únicos,
debe posicionarse para acceder a estos recursos,
demostrando que la conservación local es una
pieza clave de la estabilidad climática global.
Finalmente, el enfoque humano. El pequeño
agricultor lojano, el guardián del bosque seco y las
comunidades en las zonas de amortiguamiento son
los protagonistas de esta nueva etapa. La agenda de
Belém nos invita a ver la conservación no como una
restricción, sino como una herramienta para erradicar
la pobreza y garantizar la seguridad alimentaria.
Desde Bosques Latitud Cero, hacemos un
llamado a las autoridades locales, la academia y la
sociedad civil para transformar estos compromisos
diplomáticos en políticas públicas tangibles. El
mundo ha reconocido que el futuro es verde y
justo; es nuestro deber asegurar que ese futuro
eche raíces profundas en nuestro suelo.
Vicio A lvara Jaro
Editor en Jefe BLC
De Belém a los Andes: un nuevo horizonte para nuestros bosques y gente
Í NDICE
Aralia soratensis Marchal, nuevo árbol y género para Ecuador
8
Eduardo Cueva, David Neill(†), Zhofre Aguirre-Mendoza, Adrián Escudero
Bosques Latitud Cero, 16(1) 8-14. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2636
Flora preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora
Chinchipe, Ecuador
15
Zhofre Aguirre-Mendoza, Dario Veintimilla-Ramos, Sebastian Pardo-Jaramillo, Jaime Peña-Tamayo,
Nelson Jaramillo-Diaz
Bosques Latitud Cero, 16(1) 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Valoración y comercialización de productos forestales no maderables en Cofán
Bermejo, Ecuador
39
Andrea Beltrán, Evelyn Pallo, Jenny Zamora
Bosques Latitud Cero, 16(1) 39-52. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2510
Formulación de un herbicida ecológico a base de Theobroma cacao L. e hidróxido de
potasio
53
Davis Bonilla, Ariana Sarmiento, Jaime Maza, Hugo Romero
Bosques Latitud Cero, 16(1) 53-66. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2565
de Loja, Ecuador
67
Paulina Fernández, Deicy Lozano, Andrés Armijos-Montaño, Nohemí Jumbo, Darwin Pucha
Bosques Latitud Cero, 16(1) 67-89. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2638
AgroBacillus: Lixiviado de raquis de banano para el manejo agroecológico de
Ralstonia solanacearum
90
Edison Vásquez, Arístides Stavrinouidis-Xenon
Bosques Latitud Cero, 16(1) 90-98. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2532
Inducción de estructuras callogénicas en explantes in vitro y ex vitro de Cinchona
ocinalis L
99
Andrés Armijos-Montaño, Marcia Manchay-Loaiza, Magaly Yaguana-Arévalo
Bosques Latitud Cero, 16(1) 99-113. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2633
El Oso Andino: ciencia, mito y emblema de identidad de la Universidad Nacional de
Loja, Ecuador
114
Nikolay Aguirre, Tania Salinas
Bosques Latitud Cero, 16(1) 114-117. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2602
Sistemas Agroforestales (SAFs), una alternativa para la restauración del paisaje
118
Leonardo González, Zhofre Aguirre-Mendoza
Bosques Latitud Cero, 16(1) 118-125. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2637
provincia de Manabí, Ecuador
126
Amarú Ramón, Edison García, Paolo Piedrahita, Nelson Jaramillo-Díaz
Bosques Latitud Cero, 16(1) 126-167. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2608
en los bosques de Polylepis del Ecuador
168
Eduardo Obando, Mayra Caiza, Cecilia Castañeda, Francisco Tobar
Bosques Latitud Cero, 16(1) 168-178. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2634
INDEX
Aralia soratensis Marchal, a new tree and genus for Ecuador
8
Eduardo Cueva, David Neill(†), Zhofre Aguirre-Mendoza, Adrián Escudero
Bosques Latitud Cero, 16(1) 8-14. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2636
province, Ecuador
15
Zhofre Aguirre-Mendoza, Dario Veintimilla-Ramos, Sebastian Pardo-Jaramillo, Jaime Peña-Tamayo,
Nelson Jaramillo-Diaz
Bosques Latitud Cero, 16(1) 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
39
Andrea Beltrán, Evelyn Pallo, Jenny Zamora
Bosques Latitud Cero, 16(1) 39-52. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2510
Formulation of an ecological herbicide based on Theobroma cacao L. and potassium
hydroxide
53
Davis Bonilla, Ariana Sarmiento, Jaime Maza, Hugo Romero
Bosques Latitud Cero, 16(1) 53-66. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2565
Symptomatological evaluation of the phytosanitary status of the urban trees in the
city of Loja, Ecuador
67
Paulina Fernández, Deicy Lozano, Andrés Armijos-Montaño, Nohemí Jumbo, Darwin Pucha
Bosques Latitud Cero, 16(1) 67-89. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2638
AgroBacillus: Banana rachis leachate for the agroecological management of
Ralstonia solanacearum
90
Edison Vásquez, Arístides Stavrinouidis-Xenon
Bosques Latitud Cero, 16(1) 90-98. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2532
Induction of callogenic structures in in vitro and ex vitro explants of Cinchona
ocinalis L
99
Andrés Armijos-Montaño, Marcia Manchay-Loaiza, Magaly Yaguana-Arévalo
Bosques Latitud Cero, 16(1) 99-113. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2633
The Andean Bear: science, myth, and an emblem of identity of the Universidad
Nacional de Loja, Ecuador
114
Nikolay Aguirre, Tania Salinas
Bosques Latitud Cero, 16(1) 114-117. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2602
Agroforestry System (SAFs), an alternative for the landscape restoration
118
Leonardo González, Zhofre Aguirre-Mendoza
Bosques Latitud Cero, 16(1) 118-125. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2637
Manabí province, Ecuador
126
Amarú Ramón, Edison García, Paolo Piedrahita, Nelson Jaramillo-Díaz
Bosques Latitud Cero, 16(1) 126-167. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2608
found in the Polylepis forests of Ecuador
168
Eduardo Obando, Mayra Caiza, Cecilia Castañeda, Francisco Tobar
Bosques Latitud Cero, 16(1) 168-178. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2634
8
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Bosques Latitud Cero 16(1), 8-14. 2026
https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2636
Publicado por la Universidad Nacional de Loja,
bajo licencia Creative Commons 4.0
Aralia soratensis Marchal, nuevo árbol y género para Ecuador
Aralia soratensis Marchal, a new tree and genus for Ecuador
Eduardo Cueva
1,2,
*
David Neill
(†)
1. Universidad Nacional de Loja, Facultad Agropecuaria y Recursos
Renovables, Herbario Loja, Escuela de Ingeniería Forestal, Loja, Ecuador
2. Universidad Rey Juan Carlos, Área de Biodiversidad y Conservación,
Departamento de Biología y Geografía, Móstoles, Madrid, España
3. Universidad Estatal Amazónica, Departamento de Biología, Tena, Ecuador
*Autor para correspondencia: ecuevafcsf@gmail.com
RECIBIDO: 11/09/2025 ACEPTADO: 10/12/2025
RESUMEN
Un nuevo árbol y género de la familia Araliaceae ha sido registrado por primera vez en Ecuador. El
hallazgo de varios ejemplares se realizó en bosques semideciduos piemontanos del Catamayo - Alamor
y en bosques semideciduos montanos bajos del Catamayo – Alamor de la provincia de Loja, cantones:
y Cultura Internacional), ubicada a unos 20 km de Macará, a una altitud de 1120 m s.n.m. Durante una
expedición botánica (noviembre 2009), se colectó un árbol de aproximadamente 7 metros de altura,
desconocido por los habitantes locales. Tras su análisis en herbarios ecuatorianos (LOJA, QCNE, QCA)
Aralia soratensis Marchal,
especialmente en el norte de Argentina, el suroeste de Bolivia y el sur del Perú. En este último país, hay
una colección realizada en el noroeste, dentro del área protegida Cerros de Amotape, en el departamento
ejemplares en otros cantones de la provincia de Loja, como Gonzanamá sector Sacapalca (1350 m
s.n.m.), y con mayor frecuencia en Paltas, particularmente en la parte baja del cerro Pisaca (1857 m
Aralia
soratensis
Paltas, creciendo en lugares húmedos o lechos de quebradas secas donde encuentra su nicho favorable
para su desarrollo.
Araliaceae, Aralia, Laipuna, Pisaca, semideciduo, piemontano
PUBLICADO: 05/01/2026
9
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Cueva, E., Neill, D., Aguirre-Mendoza, Z., Escudero, A. (2026). Aralia soratensis Marchal, nuevo árbol y género para
Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 8-14. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2636
ABSTRACT
discovery of several specimens took place in semi-deciduous piedmont forests of Catamayo–Alamor
(property of Naturaleza y Cultura Internacional), located about 20 km from Macará, at an altitude of
1120 m a.s.l. During a botanical expedition in November 2009, a tree approximately 7 meters tall was
collected, unknown to local inhabitants. After analysis in Ecuadorian herbaria (LOJA, QCNE, QCA)
Aralia soratensis Marchal,
Argentina, southwestern Bolivia, and southern Peru. In the latter country, a collection was made in the
northwest, within the Cerros de Amotape Protected Area, in the department of Tumbes. In Ecuador, besides
of Loja Province, such as Gonzanamá (Sacapalca sector, 1350 m a.s.l.), and more frequently in Paltas,
plants have determined that Aralia soratensis
the onset of the rainy season, and fruits between January and March. So far, two populations with few
Keywords: Araliaceae, Aralia, Laipuna, Pisaca, semi-deciduous, piedmont
INTRODUCCIÓN
La familia Araliaceae comprende más de 1 400
especies distribuidas en aproximadamente 50
géneros, con predominancia en regiones tropicales
y algunos representantes en zonas templadas
género Aralia L. destaca por su diversidad, con
71 especies reconocidas, lo que lo convierte en
el quinto género más grande de Araliaceae (Wen,
2011). En América del Sur, Aralia soratensis
Marchal, ha sido registrada en múltiples ocasiones
en el norte de Argentina, el occidente y sur de
Bolivia, así como en el sur del Perú. En este último
existe un registro muy distante de los existentes
(Gentry & Díaz 58212), en el Parque Nacional
Cerros de Amotape, ubicado en el departamento
de Tumbes, al norte del Perú, en la frontera con
Ecuador (Wen, 2011). Este último constituye el
registro más cercano al nuevo hallazgo de la reserva
natural Laipuna, del cantón Macará, provincia de
Loja en Ecuador.
Hasta la fecha, el género Aralia no había sido
registrado en territorio ecuatoriano. El presente
estudio reporta su primer registro en el país,
correspondiente al espécimen ECO número 1513,
depositado en el herbario LOJA; colectado en
ecosistemas de bosque semideciduo piemontano
del Catamayo - Alamor y en bosque semideciduo
montano bajo del Catamayo – Alamor de la
provincia de Loja (Ministerio del Ambiente del
Ecuador [MAE], 2013). Posteriormente, se han
encontrado algunos ejemplares adicionales de
A. soratensis en localidades como la Reserva
Pisaca (cantón Paltas), incluyendo su zona de
amortiguamiento, y en el cantón Gonzanamá,
vía hacia el río Catamayo. Estos hallazgos sugieren
una posible distribución de la especie en el sur del
Ecuador, provincia de Loja, asociada a ambientes
secos semideciduos, piemontanos y premontanos
interandinos.
El objetivo de este trabajo es reportar el
registro para Ecuador de Aralia soratensis, un
árbol perteneciente a un género y especie no
documentados antes en el país. Esta especie
ha sido muy recolectada en Sudamérica, con
de 1 200 km del nuevo hallazgo. Hasta la fecha,
10
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
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Cueva, E., Neill, D., Aguirre-Mendoza, Z., Escudero, A. (2026). Aralia soratensis Marchal, nuevo árbol y género para
Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 8-14. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2636
su presencia más cercana se había reportado en
Tumbes (Perú), a aproximadamente 50 km de la
nuevo registro amplía la distribución conocida
de la especie y representa un aporte relevante al
del Ecuador, reforzando la importancia de los
METODOLOGÍA
Durante una expedición realizada en la Reserva
Natural Laipuna, gestionada por Naturaleza y
Cultura Internacional (noviembre 2009), ubicada
en el sistema montañoso seco occidental del
cantón Macará, provincia de Loja, se colectó un
individuo arbóreo de aproximadamente 7 metros
de altura y 15 cm de diámetro a la altura del pecho
(DAP), localizado en el sendero que conduce a la
antigua casa hacienda, como se presentaba casi
defoliado por la estación seca se regresó en la
temporada lluviosa para colectar por segunda vez
con las hojas completas. La especie no constaba
y era desconocida por los pobladores locales.
Posteriormente, se encontró un ejemplar fértil en
la vía que conecta la parroquia Sacapalca (cantón
Gonzanamá) con el río Catamayo (17 enero de
2014). Adicionalmente, se localizaron otros
individuos en las faldas y parte baja del cerro
Pisaca y en la Hacienda Macandamine, del cantón
Paltas.
El material colectado, fue transportado al herbario
se incorporó en la base de datos del herbario. Con
las muestras completas (fértiles), se procedió a
revisar las colecciones de los herbarios locales
y nacionales como: Herbario LOJA, HUTPL,
CUENC, QCNE y QCA. También se consultaron
bases de datos digitales como Trópicos del
Jardín Botánico de Missouri (MO) y el Jardín
Botánico de Nueva York (NY) y no se encontró
ningún espécimen para Ecuador, se revisó el
Catálogo de plantas vasculares del Ecuador.
(Jørgensen y León eds. 1999) y los compendios
adicionales
de plantas vasculares hay en el Ecuador? (Neill,
2012) y Guía de plantas vasculares del Ecuador
(INABIO) (Ulloa, 2017). Luego, se consultó con
D. Neill (+), C. Cerón, Z. Aguirre, B. Merino,
como Pete Lowry del herbario (MO) y Greg
que es nuevo registro para el país, con posibilidad
de ser una nueva especie.
RESULTADOS
conocido localmente con nombres comunes como:
Pacedro y Cedrillo y hubo varias localidades que
no tiene un nombre local. Pertenece a la familia
Aralia
soratensis Marchal. En la Figura 1 se ilustra la
especie descrita.
Figura 1. Ilustración de los órganos de Aralia
soratensis Marchal.
Ilustración elaborada por Cueva S. (2013)
Descripción botánica
Árbol de 5 a 16 m de altura, con un diámetro a
la altura del pecho (DAP) que varía de 10 a 60
cm., es caducifolio y polígamo (Figura 2A). El
tronco presenta una corteza corchosa de color gris,
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Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
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Cueva, E., Neill, D., Aguirre-Mendoza, Z., Escudero, A. (2026). Aralia soratensis Marchal, nuevo árbol y género para
Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 8-14. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2636
profundamente agrietada en sentido longitudinal
(1–2,4 cm de profundidad), característica evidente
en árboles de mayor edad (Figura 2B). La mayoría
de las ramas son delgadas y a menudo largas,
quebradizas, con las hojas agrupadas en el ápice;
las ramitas de donde salen las hojas muestran
cicatrices foliares conspicuas, también se observa
lenticelas blanquecinas. Posee estípulas caducas de
forma lineal a triangular, miden entre 2 y 3 mm de
largo por 0,5 a 3 mm de ancho, son subcoriáceos,
glabras y de color verde a rojizo obscuro, se
observan principalmente en los pecíolos de las
varían en tonalidad de verde a rojiza obscura
(Figura 2C).
Figura 2. A: Ejemplar completo de Aralia soratensis
creciendo en el límite de un cultivo de maíz.; B: Fuste
C: Cicatrices foliares y lenticelas cremas evidentes en
las ramitas.
Tiene hojas compuestas, alternas, impari-
tripinnadas (Novara, 1993), de 50 - 65 cm de
largo y 50 - 70 cm de ancho; pecíolos de 9 – 18 y
raramente hasta 24 cm, de color verdoso a rojizo
obscuro; La base envainadora con presencia de
lenticelas blanquecinas; raquis verde a rojizo,
articulado (4 o 5 secciones) las pinnas basales tiene
5 – 7 foliólulos y disminuyen hacia la parte apical
que termina en uno; Foliólulos glabros, cordados,
ovados a elípticos de 1,8 – 4,5 y raramente hasta
6,2 cm de largo y de 1,6 – 3,2 cm de ancho, haz
verde brillante y envés verde blanquecino, base
cordados a ovados u obtusos, con ápice aristado
nervaduras reticuladas; peciólulos verdosos a
rojizos de 0,6 cm en la parte apical a 5 cm en la
base (Figura 3 A y B).
Figura 3. A: Hoja compuesta tripinnada de A.
soratensis; B: Disposición apical de las hojas.
panículas terminales con un eje principal y la parte
terminal verdosa a rojiza, glabras, compuestas
generalmente por 2 a 7 y hasta 10 panículas de 14 –
25 cm de largo y 9 – 15 cm de ancho, que se agregan
en un eje principal; cada panícula posee de 30 a 90
umbelas (3 – 6,5 cm de largo); cada umbela tiene
mm; receptáculo ensanchado; pétalos de 1,5 – 2,5
mm con un nervio central longitudinal, amarillento
a verdosos en el haz y rojizos en el envés; Cáliz
rojizo con sépalos triangulares de 1,0 – 1,6 mm de
largo y 1,3 a 2,5 mm de ancho, glabros; Posee 5
de 2 a 3,5 mm que emergen desde un disco verde
o amarillento que cubre el ovario, posee dos tecas
Ovario semi ínfero rodeado por el disco estaminal,
estilo corto o nulo de 0 – 2 mm; pecíolos articulados
de 5 – 8 mm verdes a rojizos.
en botón y abiertas; C: Flores con 5 estambres
alternipétalos.
Los frutos son redondos u ovalados, pentacarpelares,
de 4 - 5 mm de diámetro y 5 a 6 mm de largo,
rojizos cuando están tiernos y al madurar son
rojizos o púrpura obscuros; el estilo persistente 1 –
2 mm, dividido en 4 o 5 puntas el ápice y connados
basalmente; las semillas son achatadas de 2 a 3 mm.
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Cueva, E., Neill, D., Aguirre-Mendoza, Z., Escudero, A. (2026). Aralia soratensis Marchal, nuevo árbol y género para
Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 8-14. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2636
Figura 5. A: Infrutescencia; B: Frutos con estilo apical
persistente; C: Frutos pentacarpelares con semillas
achatadas.
Distribución
Aralia soratensis ha sido registrada en la zona
central y occidental de Sudamérica, región que
comprende el norte de Argentina, el oeste de
Bolivia y el sur de Perú en la cordillera de los
Andes, se encuentra en valles interandinos secos
y zonas montañosas entre 500 y 3500 m s.n.m.,
frescos y húmedos. Sin embargo, en territorio
peruano existe un único registro en la costa
norte, una muestra colectada por los botánicos
Alwyn Gentry y Camilo Díaz (número 58212) el
Tumbes, dentro del Parque Nacional Cerros de
Amotape (Wen, 2011). Este registro constituye el
punto más cercano al nuevo hallazgo en Ecuador,
localizado en el cantón Macará, Reserva Laipuna,
a aproximadamente 50 km de distancia (Figura 6).
Figura 6. Distribución conocida de A. soratensis en
Sudamérica (Wen, J., 2011)., incluyendo el nuevo
registro en el sur de Ecuador (provincia de Loja,
cantón Macará, Reserva Laipuna).
En Ecuador, la presencia de A. soratensis se
ha documentado en la provincia de Loja, en
las regiones centro y occidente. Existen dos
poblaciones principales que se encuentran
separadas por aproximadamente 30 km. Esta
especie de árbol crece en ecosistemas de bosque
semideciduo piemontano del Catamayo - Alamor y
en bosque semideciduo montano bajo del Catamayo
– Alamor de la provincia de Loja (MAE, 2013)
dentro de un rango altitudinal que va desde 900
hasta 2000 m s.n.m. Se desarrolla en montañas con
vegetación espinosa y caducifolia, particularmente
en los cantones Macará, Paltas y Gonzanamá,
donde se ha observado una preferencia a crecer por
hondonadas y cerca de las quebradas donde existe
más humedad. (Ver Figura 7).
La no existencia de colecciones botánicas y
documentación han condicionado que este estudio
se apoye en observaciones y fotografías de campo
y pocos trabajos realizados en otros países. El
mapa de distribución se elaboró utilizando las
colectas realizadas en campo de A. soratensis
(Tabla 1) y las imágenes de Google Earth.
Figura 7. Sitios de colección y registro de Aralia
soratensis en Ecuador provincia de Loja.
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Cueva, E., Neill, D., Aguirre-Mendoza, Z., Escudero, A. (2026). Aralia soratensis Marchal, nuevo árbol y género para
Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 8-14. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2636
Tabla 1. Coordenadas de los sitios donde se ha registrado A. soratensis.
# Colecta Fecha Altitud Coord. S Coord.W Lugar
1 ECO 1513 11/11/2009 1122 621815 9532425 Y casa vieja Laipuna
2 ECO 1536 25/03/2010 1122 621815 9532425 Y casa vieja Laipuna
3 ECO 1537 25/03/2010 970 621310 9532603 Cerca de la casa vieja
4 ECO 1553 17/01/2014 1350 662293 9544004 Carretera Sacapalca – Río Catamayo
5 ECO 5159 19/12/2014 1857 652113 9552086 Carretera al Pisaca La Y
6 Foto2116 24/04/2015 2000 654249 9550499 Parcela de carbono Pisaca
7 Foto 24/07/2015 1525 655783 9548279 Árbol grande. Defoliado
8 Foto 24/07/2015 1860 652544 9549672 Carretera San Vicente Curva. Defoliado
9 ECO 2148 05/08/2015 950 617290 9532562 Laipuna parcelas de carbono
10 Foto 15/03/2018 900 633831 9554433 Hacienda Guachanamá (Zapotepamba)
DISCUSIÓN
Wen Jun, indica que el tamaño que tienen las hojas
es de 80-125 cm de longitud y de 70-120 cm de
ancho, son bipinnadas a tripinnadas y cerca de las
Lázaro J. menciona que el tamaño de las hojas es
hasta 40 cm de longitud y de 20 a 30 cm de ancho.
De ambos autores los tamaños son diferentes a los
encontrados y van de 50-65 cm de largo, por 50-70
cm de ancho y todas las hojas colectadas en campo
han sido tripinnadas.
En algunas colecciones de herbarios digitalizados,
en la descripción de sus etiquetas dice que los
frutos maduros son negros y en las colecciones que
se ha realizado son rojizos obscuros nunca negros.
CONCLUSIONES
Aralia soratensis, no se ha reportado anteriormente
en el Ecuador, constituyéndose como un nuevo
árbol y género de la familia Araliaceae.
Existen dos poblaciones de Aralia soratensis en la
provincia de Loja, uno está en el cantón Macará
reserva Laipuna y otra se encuentra en el cantón
Paltas en las faldas del Cerro Pisaca con ejemplares
dispersos.
A. soratensis normalmente crece en las partes
interandinas secas, pero siempre está en quebradas
u hondonadas porque hay mejores condiciones por
la humedad presente.
A. soratensis se encuentra en las reservas privadas
Laipuna y Pisaca lo que favorece para proteger a
la especie.
AGRADECIMIENTOS
Expresamos un agradecimiento al Dr. David
Neill (†) por su apoyo incondicional, por todas
las enseñanzas impartidas en sus cursos de
Dendrología que apoyaron a formar botánicos por
diferentes sectores del país, por todos sus últimos
favoritos, la cordillera del Cóndor en especial Alto
Nangaritza y Cerro el Plateado, por considerarme
para el conocimiento y descubrimiento de especies
de la Flora del Ecuador. A su familia Mercedes,
María Elizabet y David por acogerme en su casa
muchas veces.
A mi hermana Sonia María Cueva Ortiz, por la
ilustración didáctica de la especie.
Al señor José Acaro por el acompañamiento y
ayuda en el trabajo de campo, guardabosque de la
reserva Laipuna.
Al Ing. Cristian Retete, por la elaboración del mapa
de la provincia de Loja.
A la Facultad Agropecuaria y Carrera de Ingeniería
Forestal, por brindarme la oportunidad para realizar
esta publicación.
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Cueva, E., Neill, D., Aguirre-Mendoza, Z., Escudero, A. (2026). Aralia soratensis Marchal, nuevo árbol y género para
Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 8-14. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2636
Al Herbario LOJA, por siempre permitir revisar
su colección botánica y al personal técnico por su
apoyo profesional y amistad.
A Naturaleza y Cultura Internacional, por haber
brindado el apoyo para realizar la fase de campo.
Este trabajo no sería posible sin el apoyo moral de
mi familia.
CONTRIBUCIÓN DE AUTORES
EC, DN: Borrador original, Conceptualización,
Metodología, Visualización, Escritura y Edición;
ZA, AE: Revisión y Escritura.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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Publicado por la Universidad Nacional de Loja,
bajo licencia Creative Commons 4.0
Flora preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora
Chinchipe, Ecuador
province, Ecuador
*
1. Universidad Nacional de Loja
2. Herbario “Reinaldo Espinosa”, Universidad Nacional de Loja, Ecuador
*Autor para correspondencia: zhofre.aguirre@unl.edu.ec
RECIBIDO: 11/10/2025 ACEPTADO: 01/12/2025
RESUMEN
exploradas; además, es una de las zonas más deforestadas del Ecuador y enfrenta presiones antrópicas
como minería, conversión de uso del bosque, deforestación e incendios forestales. El proyecto tuvo
de los cantones Palanda y Chinchipe, en la cuenca del río Mayo. Se realizaron expediciones botánicas
en las parroquias La Chonta, El Chorro, Chito, San Andrés, Zumba y Valladolid, recolectando material
vegetal fértil. También se instalaron diez transectos temporales de 50 × 10 m en Palanda y dos parcelas
permanentes de una hectárea en Valladolid y Zumba, en éstas se midió DAP y altura total, para el
monitoreo de la dinámica de especies. Con los datos levantados se obtuvo diversidad, composición
especies, distribuidas en 313 géneros y 119 familias. De éstas, 310 son árboles, 208 arbustos, 82 hierbas,
Lauraceae (36) y Bromeliaceae (34). Se registraron 32 especies endémicas. Los remanentes boscosos
otras aún desconocidas por la ciencia, lo que demuestra su importancia biológica y urgente manejo y
conservación.
PUBLICADO: 05/01/2026
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Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
ABSTRACT
explored areas; moreover, it is unfortunately among the most deforested regions and is currently facing
cantons of Palanda and Chinchipe, within the Mayo River basin. Botanical expeditions were conducted
in the parishes of La Chonta, El Chorro, Chito, San Andrés, Zumba, and Valladolid, collecting fertile
plant material. In addition, ten temporary transects (50 × 10 m) were established in Palanda, as well as
two permanent one-hectare plots in Valladolid and Zumba, where DBH and total height were recorded to
monitor species dynamics. A total of 2 212 botanical collections were made, corresponding to 702 species
distributed across 313 genera and 119 families. Of these, 310 species were trees, 208 shrubs, 82 herbs, 62
epiphytes, 22 lianas, 13 palms, and 9 parasitic plants. The most species-rich families were Rubiaceae (50
species), Lauraceae (36), and Bromeliaceae (34). Thirty-two endemic species were recorded. The forest
species and others still undescribed by science, underscoring their biological importance and the urgent
Keywords:
INTRODUCCIÓN
La provincia de Zamora Chinchipe, ubicada al
suroriente del Ecuador, es reconocida por su
alta biodiversidad, especialmente la zona de la
cuenca alta del río Mayo (Aguirre et al., 2025b).
Esta zona, que abarca territorios de los cantones
Palanda y Chinchipe, forma parte del extremo sur
de la Cordillera Oriental de los Andes y presenta
una notable heterogeneidad ecológica. El bosque
siempreverde piemontano que domina esta zona se
caracteriza por su densa estructura, alta diversidad
Se debe mencionar que, estas regiones son el
temprana del cacao (Theobroma cacao). Evidencia
arqueológica hallada en el sitio Santa Ana-La
Florida, asociada a la cultura Mayo-Chinchipe,
demuestra el uso de cacao hace aproximadamente
5 500 años, mediante restos cerámicos que
contienen teobromina, ADN antiguo y granos de
almidón, lo que sugiere prácticas ya establecidas
de cultivo y manejo ancestral. Estudios genéticos
modernos, como los recogidos por Fouet et al.
(2022), revelan además una alta diversidad alélica
en árboles silvestres y domesticados alrededor de
Palanda, vinculándolos estrechamente con el linaje
“Nacional”, famoso por su calidad aromática, lo
que refuerza la hipótesis de que en este territorio
se produjo una de las primeras y más importantes
fases de domesticación del cacao.
Sin embargo, esta región continúa siendo una de las
menos exploradas y documentadas botánicamente
del país. Esta situación se agrava por procesos de
deforestación y conversión de uso del suelo, que han
afectado a cientos de hectáreas de bosque nativo,
a causa de la expansión agropecuaria, la actividad
minera y los incendios forestales (Aguirre et al.,
2025a). Ante esta acelerada pérdida de cobertura
la región, es urgente desarrollar estudios que
permitan documentar la composición y estructura
especies endémicas y en riesgo. La falta de
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Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
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de estrategias de conservación y manejo sostenible
de estas zonas.
Con el propósito de abordar esta problemática,
el grupo de investigación en biodiversidad de la
Universidad Nacional de Loja, ejecutó un proyecto
de exploración botánica en los cantones Palanda
y Chinchipe. El objetivo principal fue generar
botánicas, instalación de parcelas permanentes,
transectos temporales y la recolección de material
vegetal fértil.
Estos resultados son parte del proyecto institucional
56-DI-FARNR-UNL, denominado: Estudio
Cecropia en
la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia
de Zamora Chinchipe, Ecuador, el mismo que
estructura y niveles de endemismo de los bosques
de la cuenca alta del río Mayo, caracterizando
especialmente el bosque siempreverde piemontano.
Los resultados contribuyen al enriquecimiento
del Herbario “Reinaldo Espinosa” (LOJA) y al
fortalecimiento de las capacidades investigativas
METODOLOGÍA
Área de estudio
Las expediciones botánicas se realizaron en los
bosques y formaciones vegetales naturales de
las parroquias La Chonta, El Chorro, Chito, San
Andrés y Zumba del cantón Chinchipe, así como
en Palanda, La Canela y Valladolid del cantón
Palanda, provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador
(Figura 1). Los muestreos de campo abarcaron
tanto áreas intervenidas como fragmentos de
bosque; además de vegetación ribereña y sistemas
agroforestales (SAF) presentes en las localidades
mencionadas.
Figura 1. Ubicación de las áreas de las exploraciones
botánicas en los cantones Palanda y Chinchipe
Expediciones y recolección de especímenes
ejecutó en dos instancias. El primero mediante
recorridos y colecciones al azar de las plantas que
se encontraron fértiles. Se colectaron muestras
botánicas de Gimnospermas y Angiospermas,
de diferentes hábitos de crecimiento: árboles,
El segundo corresponde al establecimiento de 10
transectos temporales de 20 × 50 m y dos parcelas
permanentes de una hectárea (Figura 1), en éstas
se registró: especie, DAP y altura total; esto con
diversidad de la zona (Aguirre, 2019). Los datos
y resultados levantados en estas parcelas no son
parte de este artículo, éstos son parte de otras
publicaciones.
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Las muestras recolectadas fueron trasladadas
a las instalaciones del Herbario “Reinaldo
Espinosa”, donde fueron prensadas y secadas; y,
posteriormente se determinó a nivel de familia,
género y especie, esto mediante comparaciones
taxonómicas, literatura especializada: páginas
(2016), Aguirre (2018) y Jorgensen y León-
Yanez (1999). Las muestras que no se lograron
en Quito (QCNE).
Los datos referentes a la especie, diámetro a la
altura del pecho (DAP) y altura de cada taxón
recolectado fueron registrados en hojas de cálculo
la información de cada espécimen botánico.
Posteriormente, estos datos fueron incorporados
en dos bases de datos digitales: la primera, en
la Base Nacional de Datos de Biodiversidad del
Ecuador, la cual permite generar directamente las
etiquetas de los ejemplares gracias a su software
Symbiota; y la segunda en la plataforma IPT,
administrada por el Ministerio del Ambiente y
Energía (MAE). Toda la información generada
está disponible para la comúnidad técnica y
A partir de los registros obtenidos en las
expediciones botánicas, transectos y parcelas
permanentes, se determinó la composición
endemismo de la zona de estudio.
RESULTADOS
Chinchipe
Son escasos los remanentes boscosos existentes,
Se evidencia una mezcla de especies de los andes
y de la amazonia, muy particular. Sin embargo,
colectado quedando muchas morfoespecies, que
posiblemente representen nuevas especies para la
ciencia.
Se registraron 702 especies, distribuidas en 313
géneros y 119 familias. De éstas 310 son árboles,
13 palmas y 9 parásitas, con un total de 2 212
colecciones botánicas. En la Tabla 1 se presenta
el inventario de las especies registradas, constan
alfabético), familia botánica y el nombre común
en caso de existir.
Tabla 1. Inventario de las especies registradas en los cantones de Palanda y Chinchipe.
Familia Hábito Nombre Común
Abatia sp.
Salicaceae Árbol
Aechmea wuelngho (E. Gross) Aguirre –
Santoro
Bromeliaceae
Aegiphila sp.
Lamiaceae Árbol
Aegiphila rimbachii Moldenke
Lamiaceae Árbol
Ageratina sp.
Asteraceae Arbusto
Agouticarpa sp.
Rubiaceae Arbusto
Aiouea sp.
Lauraceae Árbol
Aiouea montana (Sw.) R.Rohde
Lauraceae Arbusto
Alchornea glandulosa Poepp.
Euphorbiaceae Árbol Punsi
Alchornea grandiora Müll.Arg.
Euphorbiaceae Árbol
Alchornea sp.
Euphorbiaceae Árbol
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Familia Hábito Nombre Común
Alsophila sp.
Cyatheaceae Arbusto
Alternanthera lanceolata Schinz
Amaranthaceae Hierba
Alzatea verticillata Ruiz & Pav.
Alzateaceae Árbol
Andesanthus lepidotus (Humb. & Bonpl.)
P.J.F.Guim. & Michelang.
Melastomataceae Árbol Flor de mayo
Anemia sp.
Anemiaceae Hierba
Aniba sp.1
Lauraceae Árbol
Aniba sp.2
Lauraceae Árbol
Aniba sp.3
Lauraceae Árbol
Aniba coto (Rusby) Kosterm.
Lauraceae Árbol Ishpinku amarillo
Aniba muca (Ruiz & Pav.) Mez
Lauraceae Árbol Canelón blanco
Annona mucosa Jacq.
Annonaceae Árbol
Annona sp. 1
Annonaceae Árbol
Anthurium alvaroperezii R.Zambrano & Croat
Araceae
Anthurium amoenum Kunth & C.D.Bouché
Araceae
Anthurium sp.1
Araceae
Anthurium sp.2
Araceae
Anthurium sp.3
Araceae
Aparisthmium sp.
Euphorbiaceae Árbol
Aphelandra sp.
Acanthaceae Hierba
Arcytophyllum setosum (Ruiz & Pav.) Schltdl.
Rubiaceae Arbusto Pichana del Cerro
Arthrostemma ciliatum Pav. ex D.Don
Melastomataceae Arbusto Sacha wiru
Arundinella hispida (Kunth ex Willd.) Kuntze
Poaceae Hierba Tuntu
Asplundia sp.
Cyclanthaceae Arbusto
Astronium graveolens Jacq.
Anacardiaceae Árbol
Aulonemia sp.
Poaceae Arbusto
Axinaea sp.1
Melastomataceae Árbol
Axinaea sp.2
Melastomataceae Árbol
Axinaea scutigera Triana
Melastomataceae Arbusto
Baccharis brachylaenoides DC.
Asteraceae Arbusto
Baccharis sp.1
Asteraceae Arbusto
Bactris gasipaes Kunth
Arecaceae Palma
Bactris sp.
Arecaceae Palma
Banara sp.
Salicaceae Árbol
Banara nitida Spruce ex Benth
Salicaceae Árbol Popacuyaji
Begonia sp.1
Begoniaceae Hierba
Begonia sp.2
Begoniaceae Hierba
Begonia parviora Poepp. & Endl.
Begoniaceae Arbusto Kayuk
Begonia urticae L.f.
Begoniaceae
Bejaria resinosa Mutis ex L.f.
Ericaceae Arbusto Payana
Bejaria sp. 1
Ericaceae Arbusto
Bejaria sp. 2
Ericaceae Arbusto
Berberis sp.
Berberidaceae Arbusto
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Familia Hábito Nombre Común
Besleria solanoides Kunth
Gesneriaceae Arbusto
Besleria sp. 1
Gesneriaceae Hierba
Besleria sp. 2
Gesneriaceae Hierba
Blakea sp.
Melastomataceae Árbol
Blakea subvaginata Wurdack
Melastomataceae Árbol
Blechnum sp.1
Blechnaceae Hierba
Blechnum sp. 2
Blechnaceae Arbusto
Bletia catenulata Ruiz & Pav.
Orchidaceae Hierba
Boehmeria sp.
Urticaceae Arbusto
Bomarea sp.
Alstroemeriaceae Bejuco
Bomarea brachysepala Benth.
Alstroemeriaceae Bejuco Papa chabel
Bomarea distichifolia (Ruiz & Pav.) Baker
Alstroemeriaceae Bejuco
Brachyotum campanulare (Bonpl.) Triana
Melastomataceae Arbusto
Brachyotum sp. 1
Melastomataceae Arbusto
Brachyotum sp. 2
Melastomataceae Arbusto
Browallia sp.
Solanaceae Hierba
Brunellia inermis Ruiz & Pav.
Brunelliaceae Árbol
Brunellia sp.
Brunelliaceae Árbol
Bunchosia sp.
Malpighiaceae Arbusto
Burmeistera sp.
Campanulaceae Hierba
Burmeistera draconis Á.J.Pérez & Muchhala
Campanulaceae Arbusto
Burmeistera zamorensis Muchhala &
Á.J.Pérez
Campanulaceae Arbusto
Calceolaria fusca Pennell
Calceolariaceae Hierba
Calceolaria sp. 1
Calceolariaceae Hierba
Calceolaria sp. 2
Calceolariaceae Hierba
Calliandra sp.
Fabaceae Árbol
Casearia aculeata Jacq
Salicaceae Árbol Clavillo
Casearia arborea (Rich.) Urb.
Salicaceae Arbusto Piedrita
Casearia sp.
Salicaceae Arbusto
Cavendishia sp. 1
Ericaceae Arbusto
Cavendishia sp. 2
Ericaceae Arbusto
Cavendishia nobilis Lindl.
Ericaceae Arbusto Salapa
Cecropia andina Cuatrec.
Urticaceae Árbol Guarumo
Cecropia angustifolia Trécul
Urticaceae Árbol Guarumo
Cecropia montana Warb. ex Snethl.
Urticaceae Árbol Guarumo
Cecropia pastasana Diels
Urticaceae Árbol Guarumo
Cecropia utcubambana Cuatrec.
Urticaceae Árbol Guarumo
Cecropia sp. 1
Urticaceae Árbol Guarumo
Cecropia sp. 2
Urticaceae Árbol Guarumo
Cecropia sp. 3
Urticaceae Árbol Guarumo
Cedrela sp.
Meliaceae Árbol
Cenchrus peruvianus (Trin.) Morrone
Poaceae Hierba
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ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Cenchrus purpureus (Schumas.) Morrone.
Poaceae Hierba
Cenchrus sp.
Poaceae Hierba
Centropogon comosus Gleason
Campanulaceae Arbusto
Centropogon erythraeus Drake
Campanulaceae Arbusto
Centropogon granulosus C.Presl
Campanulaceae Hierba
Centropogon sp. 1
Campanulaceae
Centropogon sp. 2
Campanulaceae
Centropogon sp. 3
Campanulaceae
Centropogon steyermarkii Jeppesen
Campanulaceae
Ceratostema reginaldii (Sleumer) A.C.Sm.
Ericaceae Arbusto
Ceroxylon sp. 1
Arecaceae Palma
Ceroxylon sp. 2
Arecaceae Palma
Ceroxylon echinulatum Galeano
Arecaceae Palma Palma de ramo
Ceroxylon ventricosum Burret.
Arecaceae Palma Palma
Ceroxylon vogelianum (Engel) H.Wendl.
Arecaceae Palma Coco
Chamaedorea sp.
Arecaceae Palma
Chloris sp.
Poaceae Hierba
Chromolaena sp.
Asteraceae Arbusto
Chrysochlamys sp.
Clusiaceae Árbol
Chrysophyllum sp.1
Sapotaceae Árbol
Chrysophyllum sp. 2
Sapotaceae Árbol
Chusquea sp.
Poaceae Arbusto
Cinchona sp.
Rubiaceae Árbol
Cinchona mutisii Lamb.
Rubiaceae Árbol Cascarilla
Cinchona ocinalis L.
Rubiaceae Árbol Quina
Cinchona pubescens Endl.
Rubiaceae Árbol Cascarilla
Cinnamomum sp.
Lauraceae Árbol
Cissus sp.
Vitaceae Arbusto
Clarisia biora Ruiz & Pav.
Moraceae Árbol Tillo macho
Clethra mbriata Kunth
Clethraceae Árbol
Clethra obovata Ruiz & Pav.
Clethraceae Árbol
Clethra parallelinervia Gust.
Clethraceae Árbol Almizcle
Clethra revoluta (Ruiz & Pav.) Spreng.
Clethraceae Árbol Tulapa
Clethra sp. 1
Clethraceae Árbol
Clethra sp. 2
Clethraceae Árbol
Clinopodium taxifolium (Kunth) Govaerts
Lamiaceae Arbusto Poleo del inca
Clitoria sp.
Fabaceae Árbol
Clusia alata Planch. & Triana
Clusiaceae Árbol Duco
Clusia ducu Benth.
Clusiaceae Árbol
Clusia elliptica Kunth Kunth
Clusiaceae Árbol Duco
Clusia hammeliana Pipoly
Clusiaceae Árbol Bellota waska
Clusia haughtii Cuatrec.
Clusiaceae Árbol
Clusia sp.
Clusiaceae Árbol
22
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Coccoloba mollis Casar.
Polygonaceae Árbol Quebracho
Colignonia scandens Benth.
Nyctaginaceae Arbusto Chinpalu
Columnea avostriata J.L.Clark
Gesneriaceae
Columnea sp.
Gesneriaceae Hierba
Columnea strigosa Benth.
Gesneriaceae Huevo de perro
Columnea tessmannii Mansf.
Gesneriaceae Kapantin nupa
Comparettia speciosa Rchb.f.
Orchidaceae
Condaminea corymbosa (Ruiz & Pav.) DC.
Rubiaceae Arbusto
Cordia alliodora (Ruiz & Pav.) Oken
Boraginaceae Árbol Laurel
Cordia sp.
Boraginaceae Arbusto
Costus sp.
Costaceae Hierba
Coussapoa sp.
Urticaceae Árbol
Critoniopsis pycnantha (Benth.) H.Rob.
Asteraceae Árbol
Crotalaria sp.
Fabaceae Arbusto
Croton sp. 1
Euphorbiaceae Árbol
Croton sp. 2
Euphorbiaceae Árbol
Croton sp. 3
Euphorbiaceae Árbol
Cuatresia sp.
Solanaceae Arbusto
Cupania americana L.
Sapindaceae Árbol Guabo blanco
Cupania sp.
Sapindaceae Árbol
Cuphea sp.
Lythraceae Arbusto
Cyathea caracasana (Klotzsh) Domin
Cyatheaceae Arbusto
Cyathea sp. 1
Cyatheaceae Arbusto
Cyathea sp. 2
Cyatheaceae Arbusto
Cybianthus sp.
Primulaceae Árbol
Cybianthus pastensis (Mez) G.Agostini
Primulaceae Arbusto
Cybistax antisyphilitica (Mart.) Mart.
Bignoniaceae Árbol
Dacryodes peruviana (Loes.) H.J.Lam
Burseraceae Árbol Copal
Delostoma sp.
Bignoniaceae Árbol
Delostoma integrifolium D.Don.
Bignoniaceae Árbol Virgen chilca
Dendropanax caucanus (Harms) Harms
Araliaceae Árbol Sacha limón
Dendropanax sp. 1
Araliaceae Árbol
Dendropanax sp. 2
Araliaceae Árbol
Dendrophthora sp.
Santalaceae Árbol
Deprea sp.
Solanaceae Arbusto
Deprea ecuatoriana Hunz. & Barboza
Solanaceae Arbusto
Desfontainia sp. 1
Columelliaceae Arbusto
Desfontainia sp. 2
Columelliaceae Arbusto
Desmodium sp.
Fabaceae Hierba
Dichorisandra sp.
Commelinaceae Hierba
Dilkea sp.
Enredadera
Dioscorea nervata R.Knuth
Dioscoreaceae Bejuco
Dioscorea sp. 1
Dioscoreaceae Bejuco
23
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Dioscorea sp. 2
Dioscoreaceae Bejuco
Diplostephium espinosae Cuatrec.
Asteraceae Arbusto
Disterigma microphyllum (G.Don) Luteyn
Ericaceae Arbusto
Dorobaea pimpinellifolia (Kunth) B.Nord
Asteraceae Hierba Clavella de cerro
Drymonia sp.
Gesneriaceae Hierba
Elaeagia sp.
Rubiaceae Árbol
Elaeagia karstenii Standl.
Rubiaceae Árbol Lacre
Elaeagia mariae Wedd.
Rubiaceae Árbol
Elaeagia pastoensis L.E.Mora
Rubiaceae Árbol
Elaeagia utilis (Goudot) Wedd.
Rubiaceae Árbol Lacre
Elaphoglossum sp. 1
Dryopteridaceae Hierba
Elaphoglossum sp. 2
Dryopteridaceae Hierba
Elleanthus aurantiacus (Lindl.) Rchb.f.
Orchidaceae Hierba Orquidea
Elleanthus sp.
Orchidaceae
Elleanthus maculatus (Lindl.) Rchb.f.
Orchidaceae Hierba
Endlicheria aurea Chanderb.
Lauraceae Árbol
Endlicheria griseosericea Chanderb.
Lauraceae Árbol Aguacatillo
Endlicheria oreocola Chandorb.
Lauraceae Árbol
Epidendrum sp. 1
Orchidaceae Hierba
Epidendrum sp. 2
Orchidaceae Hierba
Epidendrum sp. 3
Orchidaceae Hierba
Epidendrum sp. 4
Orchidaceae Hierba
Erato sp.
Asteraceae Arbusto
Erythroxylum macrophyllum Cav.
Erythroxylaceae Árbol Ñanebe
Escallonia paniculata (Ruiz & Pav.) Schult.
Escalloniaceae Árbol Samal
Escallonia sp.
Escalloniaceae Arbusto
Escobedia grandiora (L.f) Kuntze
Orobanchaceae Hierba
Eugenia orida DC.
Myrtaceae Árbol Arrayán
Eugenia sp. 1
Myrtaceae Árbol
Eugenia sp. 2
Myrtaceae Árbol
Eupatorium sp.
Asteraceae Arbusto
Evolvolus sp.
Convolvulaceae Hierba
Faramea jasminoides (Kunth) DC.
Rubiaceae Arbusto
Faramea miconioides Standl.
Rubiaceae Árbol
Faramea quinqueora Poepp.
Rubiaceae Arbusto Yami
Ficus sp. 1
Moraceae Árbol
Ficus sp. 2
Moraceae Árbol
Ficus sp. 3
Moraceae Árbol
Ficus sp. 4
Moraceae Árbol
Ficus sp. 5
Moraceae Árbol
Ficus sp. 6
Moraceae Árbol
Ficus sp. 7
Moraceae Árbol
Ficus sp. 8
Moraceae Árbol
24
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Ficus sp. 9
Moraceae Árbol
Ficus sp. 10
Moraceae Árbol
Ficus apollinaris Dugand
Moraceae Árbol
Ficus cuatrecasasiana Dugand
Moraceae Árbol Matapalo
Ficus gomelleira Hort.Monac. ex Kunth &
C.D.Bouché
Moraceae Árbol Higuerón blanco
Ficus insipida Willd.
Moraceae Árbol Higuerón
Ficus maxima Mill.
Moraceae Árbol Higuerón
Ficus mutisii Dugand
Moraceae Árbol
Ficus tonduzii Standl.
Moraceae Árbol Higuerón
Freziera sp.
Pentaphylacaceae Árbol
Fuchsia sp.
Onagraceae Arbusto
Fuchsia steyermarkii P.E.Berry
Onagraceae Arbusto
Gaiadendron punctatum G.Don
Loranthaceae Arbusto Violeta de campo
Gamochaeta sp.
Asteraceae Hierba
Gaultheria erecta Vent.
Ericaceae Arbusto Mote blanco
Gaultheria foliolosa Benth.
Ericaceae Arbusto Payanchi de cerro
Gaultheria sp.
Ericaceae Arbusto
Gaultheria strigosa Benth.
Ericaceae Arbusto
Geissanthus cestrifolius (Kunth) Mez
Primulaceae Arbusto
Geissanthus sp.
Primulaceae Arbusto
Geissanthus vanderweri Pipoly
Primulaceae Árbol Yuber colorado
Gentianella sp.
Gentianaceae Hierba
Geonoma sp. 1
Arecaceae Palma
Geonoma sp. 2
Arecaceae Palma
Glossoloma sp.
Gesneriaceae Hierba
Glossoloma ichthyoderma (Hanst.) J.L.Clark
Gesneriaceae Subarbusto
Gnaphalium sp.
Asteraceae Hierba
Gomphichis sp.
Orchidaceae Hierba
Graenrieda cucullata (D.Don) L.O.Williams
Melastomataceae Árbol Chinchák
Graenrieda emarginata Triana
Melastomataceae Árbol
Graenrieda sp.
Melastomataceae Árbol
Gregbrownia hutchisonii (L.B.Sm.) W.Till &
Barfuss
Bromeliaceae
Richeria sp.
Phyllanthaceae Árbol
Guarea sp.
Meliaceae Árbol
Guarea kunthiana A.Juss.
Meliaceae Árbol Aguacatillo guatusero
Guatteria megalophylla Diels
Annonaceae Árbol
Guatteria punctata (Aubl.) R.A.Howard
Annonaceae Árbol
Guatteria sp. 1
Annonaceae Árbol
Guatteria sp. 2
Annonaceae Árbol
Guettarda sp.
Rubiaceae Árbol
Gunnera sp.
Gunneraceae Hierba
25
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Guzmania atrocastanea H.Luther
Bromeliaceae
Guzmania besseae H.Luther
Bromeliaceae
Guzmania coriostachya (Griseb.) Mez
Bromeliaceae
Guzmania morreniana (Linden ex E.Morren)
Mez
Bromeliaceae
Guzmania paniculata Mez
Bromeliaceae
Guzmania sibundoyorum L.B.Sm.
Bromeliaceae
Guzmania sp. 1
Bromeliaceae
Guzmania sp. 2
Bromeliaceae
Guzmania sp. 3
Bromeliaceae
Guzmania squarrosa (Mez & Sodiro) L.B.Sm.
& Pittendr.
Bromeliaceae
Gynoxys callacallana Cuatrec.
Asteraceae Arbusto
Gynoxys calyculisolvens Hieron.
Asteraceae Arbusto
Gynoxys sp. 1
Asteraceae Arbusto
Gynoxys sp. 2
Asteraceae Arbusto
Habenaria sp.
Orchidaceae Hierba
Halenia sp.
Gentianaceae Hierba
Hedyosmum anisodorum Todzia
Chloranthaceae Árbol Guayusa
Hedyosmum goudotianum Solms
Chloranthaceae Árbol Guayusa
Hedyosmum racemosum (Ruiz & Pav.) G.Don
Chloranthaceae Arbusto Jicamilla grande
Hedyosmum sp. 1
Chloranthaceae Árbol
Hedyosmum sp. 2
Chloranthaceae Árbol
Hedyosmum translucidum Cuatrec.
Chloranthaceae Árbol Toronjil de cerro
Heliconia sp.
Heliconiaceae Hierba
Helicostylis sp.
Moraceae Árbol
Hesperomeles sp. 1
Rosaceae Arbusto
Hesperomeles sp. 2
Rosaceae Arbusto
Hieracium frigidum Sodiro
Asteraceae Hierba Kana yuyu
Hieronyma sp. 1
Phyllanthaceae Árbol
Hieronyma sp. 2
Phyllanthaceae Árbol
Hieronyma alchorneoides Allemão
Phyllanthaceae Árbol Motilón
Hieronyma asperifolia
Phyllanthaceae Árbol Motilón
Hieronyma macrocarpa Müll.Arg.
Phyllanthaceae Árbol Calisaya
Hieronyma scabrida (Tul.) Müll.Arg.
Phyllanthaceae Árbol
Hirtella sp.
Chrysobalanaceae Árbol
Homannia latifolia (Bartl. ex DC.) Kuntze
Rubiaceae Arbusto
Homannia sp.
Rubiaceae Arbusto
Huberia peruviana Cogn.
Melastomataceae Arbusto
Huertea glandulosa Ruiz & Pav.
Tapisciaceae Arbusto
Hura crepitans L.
Euphorbiaceae Árbol
Hura sp.
Euphorbiaceae Árbol
Hydrangea sp.
Hydrangeaceae Arbusto
26
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Hypericum harlingii N.Robson
Hypericaceae Arbusto
Ilex inundata Reissek
Aquifoliaceae Árbol Guayusa
Ilex rupicola Kunth
Aquifoliaceae Arbusto Yersin duma
Ilex teratopis Loes.
Aquifoliaceae Arbusto
Ilex sp.
Aquifoliaceae Arbusto
Inga capitata Desv.
Fabaceae Árbol Guabilla
Inga densiora Benth.
Fabaceae Árbol Machetona
Inga extra-nodis T.D.Penn.
Fabaceae Árbol Guaba
Inga laurina (Sw.) Willd.
Fabaceae Árbol Guaba
Inga sp. 1
Fabaceae Árbol
Inga sp. 2
Fabaceae Árbol
Inga sp. 3
Fabaceae Árbol
Inga nobilis Willd.
Fabaceae Árbol Guabillo
Inga sapindoides Willd.
Fabaceae Árbol
Inga striata Benth.
Fabaceae Árbol Guaba
Iresine sp.
Amaranthaceae Hierba
Jacaratia spinosa (Aubl.) A.DC.
Caricaceae Árbol
Jamesonia aureonitens (Hook.) Christenh.
Pteridaceae Hierba
Jenmania sp.
Orchidaceae Hierba
Joosia aequatoria Steyerm.
Rubiaceae Arbusto Jicamillo
Joosia dielsiana Standl.
Rubiaceae Arbusto
Joosia sp.
Rubiaceae Arbusto
Josemania truncata (L.B.Sm.) W.Till &
Barfuss
Bromeliaceae
Jungia sp.
Asteraceae Arbusto
Justicia sp.
Acanthaceae Hierba
Klaprothia mentzelioides Kunth
Loasaceae Hierba Culantrillo
Kohleria sp.
Gesneriaceae Hierba
Ladenbergia sp.
Rubiaceae Árbol
Ladenbergia oblongifolia (Humb. ex Mutis)
L.Andersson
Rubiaceae Árbol
Lantana sp.
Verbenaceae Arbusto
Lasiacis sp.
Poaceae Hierba
Lepanthes gargantua Rchb.f
Orchidaceae
Lepidaploa sp.
Asteraceae Arbusto
Liabum sp.
Asteraceae Arbusto
Licania harlingii Prance
Chrysobalanaceae Árbol
Licaria sp. 1
Lauraceae Árbol
Licaria sp. 2
Lauraceae Árbol
Licaria sp. 3
Lauraceae Árbol
Licaria terminalis
Lauraceae Árbol
Llerasia sp.
Asteraceae Arbusto
Lonchocarpus nicou (Aubl.) DC.
Fabaceae Arbusto
27
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Lozania mutisiana Schult.
Lacistemataceae Arbusto
Luehea paniculata Mart.
Malvaceae Árbol
Lupinus sp.
Fabaceae Arbusto
Lycaste macrophylla Lindl.
Orchidaceae Hierba
Lycianthes sp.
Solanaceae Hierba
Lycopodium sp.
Lycopodiaceae Hierba
Mabea macbridei I.M.Johnst.
Euphorbiaceae Árbol
Macleania farinosa Mansf.
Ericaceae Arbusto
Macleania rupestris (Kunth) A.C.Sm.
Ericaceae Arbusto Joyapa
Macleania sp.
Ericaceae Arbusto
Maclura sp.
Moraceae Árbol
Macrocarpaea apparata J.R.Grant & Struwe
Gentianaceae Arbusto
Macrocarpaea lenae J.R.Grant
Gentianaceae Arbusto
Macrocarpaea luna-gentiana J.R.Grant &
Struwe
Gentianaceae Arbusto
Macrocarpaea sp.
Gentianaceae Arbusto
Magnolia tapichalacaensis A.J. Pérez & E.
Rea
Magnoliaceae Árbol
Marcgravia sp.
Marcgraviaceae Arbusto
Markea sp.
Solanaceae Arbusto
Masdevallia sp.
Orchidaceae
Mauria heterophylla Kunth
Anacardiaceae Árbol Caimitillo
Mauria sp.
Anacardiaceae Árbol
Maxillaria sp. 1
Orchidaceae
Maxillaria sp. 2
Orchidaceae
Meliosma sp.
Sabiaceae Árbol
Meriania neillii Humberto Mend.
Melastomataceae Árbol
Meriania sp. 1
Melastomataceae Árbol
Meriania sp. 2
Melastomataceae Árbol
Meriania tetragona (Cogn.) Wurdack
Melastomataceae Arbusto
Miconia sp. 1
Melastomataceae Árbol
Miconia sp. 2
Melastomataceae Árbol
Miconia sp. 3
Melastomataceae Árbol
Miconia sp. 4
Melastomataceae Árbol
Miconia sp. 5
Melastomataceae Árbol
Miconia sp. 6
Melastomataceae Árbol
Miconia sp. 7
Melastomataceae Árbol
Miconia sp. 8
Melastomataceae Árbol
Miconia sp. 9
Melastomataceae Árbol
Miconia sp. 10
Melastomataceae Árbol
Miconia sp. 11
Melastomataceae Árbol
Miconia aggregata Gleason
Melastomataceae Arbusto
Miconia calophylla (D.Don) Triana
Melastomataceae Arbusto
28
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Miconia calvescens DC.
Melastomataceae Árbol Pepa de pájaro
Miconia cercophora Wurdack
Melastomataceae Arbusto
Miconia complanata Jan.M.Burke, Michelang.
& D.Fernández
Melastomataceae Arbusto
Miconia dodsonii Wurdack
Melastomataceae Arbusto
Miconia jahnii Pittier
Melastomataceae Arbusto
Miconia ligustrina (Sm.) Triana
Melastomataceae Arbusto
Miconia loxensis (Bonpl.) DC.
Melastomataceae Arbusto
Miconia punctata (Desr.) D.Don
Melastomataceae Árbol Pepa de pájaro
Miconia quadripora Wurdack
Melastomataceae Arbusto Olla
Miconia suborbicularis Cogn.
Melastomataceae Arbusto
Miconia tinifolia Naudin
Melastomataceae Arbusto Amarillo
Mikania psilostachya DC.
Asteraceae Bejuco Waku
Mikania sp. 1
Asteraceae Hierba
Mikania sp. 2
Asteraceae Hierba
Mollinedia sp.
Monimiaceae Árbol
Monnina crassifolia Kunth
Polygalaceae Arbusto Iwilan
Monnina polystachya Ruiz & Pav.
Polygalaceae Arbusto
Monnina sp. 1
Polygalaceae Arbusto
Monnina sp. 2
Polygalaceae Arbusto
Monnina subscandens Triana & Planch.
Polygalaceae Arbusto
Monochaetum lineatum Naudin
Melastomataceae Arbusto
Monstera lechleriana Schott
Araceae Terlimbe
Moritzia lindenii Benth. ex Gürke
Boraginaceae Arbusto
Mormodes rolfeana L.Linden
Orchidaceae
Morus insignis Bureau
Moraceae Árbol Sacha moral
Mucuna cuatrecasasii Hern.Cam. & C.Barbosa
ex L.K.Ruíz.
Fabaceae Bejuco
Mucuna sp.
Fabaceae Bejuco
Munnozia hastifolia (Poepp) H.Rob & Bretell
Asteraceae Arbusto Sel
Munnozia sp.
Asteraceae Arbusto
Munnozia senecionidis Benth.
Asteraceae Arbusto Hierga gorda
Munnozia sp.
Asteraceae Hierba
Myrcia sp.
Myrtaceae Árbol
Myrcia fallax (Rich.) DC.
Myrtaceae Árbol Arrayán
Myrcia pulchella (DC.) ARLourenço &
E.Lucas
Myrtaceae Arbusto
Myrcia splendens (Sw.) DC.
Myrtaceae Árbol Bogenowe
Myrcianthes sp. 1
Myrtaceae Árbol
Myrcianthes sp. 2
Myrtaceae Árbol
Myriocarpa sp.
Urticaceae Arbusto
Myrsine andina (Mez) Pipoly
Primulaceae Árbol
29
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Myrsine coriacea (Sw.) R.Br. ex Roem. y
Schult.
Primulaceae Árbol
Myrsine latifolia (Ruiz & Pav.) Spreng.
Primulaceae Árbol
Myrsine sodiroana (Mez) Pipoly
Primulaceae Árbol
Myrsine sp.
Primulaceae Árbol
Myrteola phylicoides (Benth.) Landrum
Myrtaceae Arbusto Nigua
Nectandra sp. 1
Lauraceae Árbol Canelón
Nectandra sp. 2
Lauraceae Árbol
Nectandra sp. 3
Lauraceae Árbol
Nectandra sp. 4
Lauraceae Árbol
Nectandra sp. 5
Lauraceae Árbol
Nectandra sp. 6
Lauraceae Árbol
Nectandra sp. 7
Lauraceae Árbol
Nectandra sp. 8
Lauraceae Árbol
Nectandra sp. 9
Lauraceae Árbol
Nectandra sp. 10
Lauraceae Árbol
Nectandra sp. 11
Lauraceae Árbol
Nectandra sp. 12
Lauraceae Árbol
Nectandra acutifolia (Ruiz & Pav.) Mez
Lauraceae Árbol Hiwa
Nectandra globosa (Aubl.) Mez
Lauraceae Árbol Ikua
Nectandra lineata (Kunth) Rohwer
Lauraceae Árbol Tinchi
Nectandra viburnoides Meisn
Lauraceae Árbol
Nectandra villosa Nees & Mart.
Lauraceae Árbol
Neea sp.
Nyctaginaceae Árbol
Neonelsonia sp.
Apiaceae Hierba
Neosprucea grandiora (Pícea ex Benth.)
Sleumer
Salicaceae Árbol
Nertera granadensis (Mutis ex L.f.) Druce
Rubiaceae Hierba
Neurolepis elata (Kunth) Pilg.
Poaceae Arbusto Tuntu
Ochroma pyramidale (Cav. ex Lam.) Urb.
Malvaceae Árbol Balsa
Ocotea sp.
Lauraceae Árbol
Ocotea aciphylla (Nees & Mart.) Mez
Lauraceae Árbol Aguacate de monte
Ocotea leucoxylon (Sw.) Laness.
Lauraceae Árbol
Odontoglossum sp.
Orchidaceae
Oncidium sp.
Orchidaceae Hierba
Ophioglossum palmatum L.
Ophioglossaceae Arbusto
Oreopanax sp. 1
Araliaceae Árbol
Oreopanax sp. 2
Araliaceae Árbol
Oreopanax incisus (Willd. ex Schult.) Decne.
& Planch.
Araliaceae Árbol
Oreopanax microorus Borchs.
Araliaceae Árbol
Oreopanax rosei Harms
Araliaceae Árbol Puma maki
Oritrophium sp.
Asteraceae Hierba
30
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Oritrophium repens (Kunth) Cuatrec.
Asteraceae Hierba
Ormosia sp.
Fabaceae Arbusto
Orthaea mbriata Luteyn
Ericaceae Arbusto
Osmundastrum cinnamomeum (L.) C.Presl
Osmundaceae Arbusto
Oxalis integra R.Knuth
Oxalidaceae Hierba
Oxalis sp.
Oxalidaceae Hierba
Oxalis spiralis G.Don
Oxalidaceae Hierba Cañitas
Pagamea dudleyi Steyerm.
Rubiaceae Arbusto
Palicourea sp. 1
Rubiaceae Arbusto
Palicourea sp. 2
Rubiaceae Arbusto
Palicourea sp. 3
Rubiaceae Arbusto
Palicourea amethystina (Ruiz & Pav.) DC.
Rubiaceae Arbusto Naranjo
Palicourea andrei Standl.
Rubiaceae Arbusto
Palicourea angustifolia Kunth
Rubiaceae Arbusto
Palicourea brachiata (Sw.) Borhidi
Rubiaceae Árbol Mora
Palicourea demissa Standl.
Rubiaceae Arbusto Campanitas
Palicourea guianensis Aubl.
Rubiaceae Árbol
Palicourea lobbii Standl.
Rubiaceae Arbusto
Palicourea loxensis C.M.Taylor
Rubiaceae Arbusto
Palicourea luteonivea C.M.Taylor
Rubiaceae Arbusto
Palicourea ovalis Standl.
Rubiaceae Arbusto
Palicourea ulloana C.M.Taylor
Rubiaceae Arbusto
Passiora cumbalensis (H.Karst.) Harms
Bejuco Taxo silvestre
Passiora pergrandis Holm-Niels. &
Lawesson
Bejuco Granadilla
Passiora sp. 1
Bejuco
Passiora sp. 2
Bejuco
Pectinopitys harmsiana (Pilg.) C.N.Page
Podocarpaceae
Árbol
Peperomia sp. 1
Piperaceae Hierba Congona
Peperomia sp. 2
Piperaceae Hierba
Peperomia sp. 3
Piperaceae Hierba
Peperomia sp. 4
Piperaceae Hierba
Peperomia sp. 5
Piperaceae Hierba
Peperomia sp. 6
Piperaceae
Peperomia sp. 7
Piperaceae Hierba
Peperomia sp. 8
Piperaceae
Peperomia sp. 9
Piperaceae
Persea sp. 1
Lauraceae Árbol Aguacatillo
Persea sp. 2
Lauraceae Árbol
Persea caerulea (Ruiz & Pav.) Mez
Lauraceae Árbol Paltón
Persea ferruginea (Ruiz & Pav.) Mez
Lauraceae Árbol
Persea rigens CKAllen
Lauraceae Árbol Payamice
31
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Phlegmariurus hippurideus (H. Christ) B.Øllg.
Lycopodiaceae Hierba
Philodendron sp.
Araceae
Phoradendron sp. 1
Santalaceae Parásita
Phoradendron sp. 2
Santalaceae Parásita
Phragmipedium boissierianum (Rchb.f. &
Warsz.) Rolfe
Orchidaceae Hierba
Pilea sp.
Urticaceae Arbusto
Piper sp. 1
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 2
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 3
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 4
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 5
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 6
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 7
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 8
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 9
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 10
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 11
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 12
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 13
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 14
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 15
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 16
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 17
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 18
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 19
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 20
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 21
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 22
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 23
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 24
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 25
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 26
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 27
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 28
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 29
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 30
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 31
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 32
Piperaceae Arbusto
Piper sp. 33
Piperaceae Arbusto
Piper crassinervium Kunth
Piperaceae Arbusto
Piper obtusilimbum C.DC.
Piperaceae Arbusto Hoja de armadillo
Piptocoma discolor (Kunth) Pruski
Asteraceae Árbol Pigue, chilco
32
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Pitcairnia sp. 1
Bromeliaceae Hierba
Pitcairnia sp. 2
Bromeliaceae Hierba
Pitcairnia sp. 3
Bromeliaceae Hierba
Pitcairnia sp. 4
Bromeliaceae Hierba
Pitcairnia sp. 5
Bromeliaceae Hierba
Pitcairnia alata L.B.Sm.
Bromeliaceae
Pitcairnia riparia Mez
Bromeliaceae
Pitcairnia trianae André
Bromeliaceae Hierba
Pleroma ochypetalum (Ruiz & Pav.) D.Don
Melastomataceae Árbol Flor de mayo
Pleurothallis sp.
Orchidaceae
Pleurothyrium sp. 1
Lauraceae Árbol
Pleurothyrium sp. 2
Lauraceae Árbol
Podandrogyne sp.
Cleomaceae Arbusto
Podocarpus oleifolius D.Don
Podocarpaceae Árbol Romerillo
Posoqueria sp.
Rubiaceae Árbol
Poulsenia armata (Miq.) Standl.
Moraceae Árbol Majagua
Pourouma sp. 1
Urticaceae Árbol
Pourouma sp. 2
Urticaceae Árbol
Prestoea acuminata (Willd.) H.E.Moore
Arecaceae Palma Caño
Prestoea sp.
Arecaceae Palma
Prunus sp.
Rosaceae Árbol
Psammisia debilis Sleumer
Ericaceae Arbusto
Psammisia ssilis A.C.Sm.
Ericaceae Arbusto
Psammisia sp.
Ericaceae Arbusto
Pseudogynoxys scabra (Benth.) Cuatrec.
Asteraceae Bejuco
Psittacanthus sp.
Loranthaceae Parásita
Psychotria sp. 1
Rubiaceae Arbusto
Psychotria sp. 2
Rubiaceae Arbusto
Psychotria sp. 3
Rubiaceae Arbusto
Psychotria pichisensis Standl.
Rubiaceae Arbusto
Psychotria trivialis Rusby
Rubiaceae Arbusto
Puya cuevae Manzan. & W.Till
Bromeliaceae Arbusto
Quararibea sp.
Malvaceae Árbol
Racinaea adpressa (André) J.R.Grant
Bromeliaceae
Racinaea commixa (Mez) M.A.Spencer &
L.B.Sm.
Bromeliaceae
Racinaea riocreuxii (André) M.A.Spencer &
L.B.Sm.
Bromeliaceae
Racinaea seemannii (Baker) M.A.Spencer &
L.B.Sm.
Bromeliaceae
Racinaea sp. M.A.Spencer & L.B.Sm.
Bromeliaceae
Randia sp.1
Rubiaceae Árbol
Randia sp.2
Rubiaceae Arbusto
33
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Renealmia sp. 1
Zingiberaceae Hierba
Renealmia sp. 2
Zingiberaceae Hierba
Retrophyllum rospigliosii (Pilg.) C.N.Page
Podocarpaceae Árbol
Rhynchospora sp.
Cyperaceae Hierba
Rhynchospora vulcani Boeckeler
Cyperaceae Hierba
Phyllanthus sp.
Phyllanthaceae Hierba
Roupala monosperma I.M.Johnst.
Proteaceae Árbol Roble
Roupala montana Aubl.
Proteaceae Árbol
Ruagea pubescens H.Karst.
Meliaceae Árbol
Ruagea tomentosa Cuatrec.
Meliaceae Árbol
Rubus sp.
Rosaceae Arbusto
Rudgea citrifolia (Sw.) K.Schum.
Rubiaceae Arbusto
Rudgea foveolata (Ruiz & Pav.) Zahlbr.
Rubiaceae Arbusto
Ruellia sp.
Acanthaceae Hierba
Salpinga maranonensis Wurdack
Melastomataceae Arbusto
Sapindus saponaria L.
Sapindaceae Árbol Chereco
Sapium glandulosum (L.) Morong
Euphorbiaceae Árbol
Sapium sp. 1
Euphorbiaceae Árbol
Sapium sp. 2
Euphorbiaceae Árbol
Saurauia bullosa Wawra
Actinidiaceae Árbol Platanillo
Saurauia harlingii Soejarto
Actinidiaceae Arbusto
Saurauia peruviana Buscal.
Actinidiaceae Arbusto Jicamillo
Saurauia pseudostrigillosa Buscal.
Actinidiaceae Árbol Moquillo
Saurauia sp. 1
Actinidiaceae Árbol Moco
Saurauia sp. 2
Actinidiaceae Árbol Moco
Schizachyrium condensatum (Kunth.) Nees.
Poaceae Hierba
Schizachyrium sp.
Poaceae Hierba
Sciodaphyllum oellgaardii Lowry, G.M.
Plunkett & D.A. Neill
Araliaceae Árbol
Sciodaphyllum sp. 1
Araliaceae Árbol
Sciodaphyllum sp. 2
Araliaceae Árbol
Sciodaphyllum sp. 3
Araliaceae Árbol
Selaginella sp.
Selaginellaceae Hierba
Senna sp.
Fabaceae Arbusto
Serjania sp.
Sapindaceae Bejuco
Siparuna eggersii Hieron.
Siparunaceae Arbusto Limoncillo
Siparuna sp. 1
Siparunaceae Árbol
Siparuna sp. 2
Siparunaceae Árbol
Siphocampylus giganteus G.Don
Campanulaceae Hierba
Siphocampylus scandens G.Don
Campanulaceae Hierba
Siphocampylus sp.
Campanulaceae Hierba
Sloanea sp.
Elaeocarpaceae Árbol
Smilax sp.
Smilacaceae Bejuco
34
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Sobralia rosea Poepp. & Endl.
Orchidaceae Hierba Niño dormido
Sobralia sp.
Orchidaceae Hierba
Solanum cajanumense Kunth
Solanaceae Arbusto Pepinillo
Solanum savanillense Bitter
Solanaceae Arbusto
Solanum sp.
Solanaceae Arbusto
Sonchus sp.
Asteraceae Hierba
Sorocea trophoides W.C.Burger
Moraceae Árbol
Souroubea sp.
Marcgraviaceae Arbusto
Spermacoce sp.
Rubiaceae Arbusto
Spirotheca rosea (Seem.) P.E. Gibbs & W.S.
Alverson
Malvaceae Árbol
Spondias dulcis G. Forst.
Anacardiaceae Árbol Manzana de oro
Stenospermation sp.
Araceae
Stilpnophyllum grandifolium L.Adersson
Rubiaceae Arbusto
Styloceras sp.
Buxaceae Árbol
Styrax peruvianus Zhalbr.
Styracaceae Árbol
Symbolanthus mathewsii (Griseb.) Ewan
Gentianaceae Arbusto
Symplocos sp.
Symplocaceae Árbol Higo pava
Ternstroemia macrocarpa Triana & Planch.
Pentaphylacaceae Arbusto
Ternstroemia sp.
Pentaphylacaceae Arbusto
Thelypteris sp.
Pteridaceae Hierba
Themistoclesia epiphytica A.C.Sm.
Ericaceae Arbusto
Thibaudia harlingii Luteyn
Ericaceae Arbusto
Thibaudia parvifolia (Benth.) Hoerold
Ericaceae Arbusto
Thibaudia sp.
Ericaceae Arbusto
Tibouchina sp. 1
Melastomataceae Arbusto
Tibouchina sp. 2
Melastomataceae Arbusto
Pleroma ochypetalum (Ruiz & Pav.) D. Don
Melastomataceae Arbusto
Tillandsia aequatorialis L.B.Sm.
Bromeliaceae
Tillandsia complanata É.Morren
Bromeliaceae Lechuga
Tillandsia connis L.B.Sm.
Bromeliaceae
Tillandsia sp.
Bromeliaceae
Tillandsia schimperiana Wittm.
Bromeliaceae
Tillandsia stenoura Harms
Bromeliaceae
Tillandsia tovarensis Mez
Bromeliaceae
Tocoyena sp.
Rubiaceae Árbol Cauje
Tocoyena sp.
Rubiaceae Árbol
Tournefortia sp.
Boraginaceae Arbusto Alacran
Trichilia sp.
Meliaceae Árbol Cedrillo
Tropaeolum sp.
Tropaeolaceae Hierba
Trophis caucana (Pittier.) C.C. Berg.
Moraceae Árbol
Turpinia occidentalis (Sw.) G.Don
Staphyleaceae Árbol Cedrillo
Unonopsis sp.
Annonaceae Árbol
35
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia Hábito Nombre Común
Urera caracasana (Jacq.) Gaudich. ex Griseb.
Urticaceae Arbusto Ortiga
Urera sp.
Urticaceae Arbusto
Utricularia unifolia Ruiz & Pav.
Lentibulariaceae
Valeriana punctata F.G.Mey.
Caprifoliaceae Arbusto
Verbesina sp.
Asteraceae Arbusto
Vernonanthura patens (Kunth) H.Rob.
Asteraceae Arbusto Biso, laritaco
Viburnum obtectum H. Vargas
Viburnaceae Arbusto Raña
Viburnum pichinchense Benth.
Viburnaceae Arbusto Raña
Viburnum sp.
Viburnaceae Arbusto
Viola stipulacea Fr. ex Hartm.
Violaceae Hierba
Vismia baccifera (L.) Triana & Planch.
Hypericaceae Árbol Achotillo
Vismia sp.
Hypericaceae Árbol Achotillo
Weinmannia cochensis Hieron.
Cunoniaceae Árbol Mortiño
Weinmannia elliptica Kunth
Cunoniaceae Árbol Sara, cashco
Weinmannia fagaroides Kunth
Cunoniaceae Árbol Sara, cashco
Weinmannia sp. 1
Cunoniaceae Árbol Sara, cashco
Weinmannia ovata Cav.
Cunoniaceae Árbol Sara, cashco
Weinmannia pubescens Kunth
Cunoniaceae Árbol Sara, cashco
Weinmannia rollottii Killip
Cunoniaceae Árbol Encino
Weinmannia sorbifolia Kunth
Cunoniaceae Árbol Casaco grande
Weinmannia sp. 2
Cunoniaceae Árbol Sara, cashco
Xanthosoma sp.
Araceae Hierba Zango
Zanthoxylum sp.1
Rutaceae Árbol Tachuelo
Zanthoxylum sp. 2
Rutaceae Árbol Tachuelo
Zygia sp.
Fabaceae Árbol Guabilla
caracterizandose por ser una mezcla de elementos
bajas, lo que otorga rareza y especialidad a las
comúnidades vegetales que aquí se desarrollan.
Las especies que sobresalen en esta zona, por su
abundancia, son: Pleroma ochypetalum (Ruiz &
Pav.) D. Don, Cordia alliodora (Ruiz & Pav.) Oken,
Cecropia montana Warb. ex Snethl., Andesanthus
lepidotus (Humb. & Bonpl.) P.J.F.Guim. &
Michelang., Begonia guaduensis Kunth, Jacaratia
spinosa (Aubl.) A.DC., y Blakea subvaginata
Wurdack.
De igual manera se evidencia especies raras
o escasas, como: Magnolia tapichalacaensis
Á.J.Pérez & E.Rea, Tocoyena pittieri (Standl.)
Standl., Ophioglossum palmatum L., Pitcairnia
alata var. andreetae (H.Luther) Manzan. & W.Till.
lilas, frondozas y abundantes como el caso de
Pleroma ochypetalum (Ruiz & Pav.) D.Don
y Andesanthus lepidotus (Humb. & Bonpl.)
P.J.F.Guim. & Michelang. con potencial ornamental
en las ciudades de la amazonia.
Diversidad relativa de familias
De las 119 familias botánicas registardas, existe
un grupo de 46 que estan representadas por una
sola especie. Un segundo grupo con una diversidad
de especies de 2 a 11. Y un grupo de 15 familias
la Figura 2 se ilustran las 15 familias más diversas.
36
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Figura 2. Riqueza y diversidad relativa de las 15 familias
más diversas de las áreas de exploración botánica de
Palanda y Chinchipe.
Endemismo
Se registraron 32 especies endémicas, y según
las categorias de conservación de la UICN,
estas se encuentran: una en peligro critico (CR),
nueve en peligro (EN); 14 en vulnerable (VU),
tres en Preocupación Menor (LC), cinco en Casi
Amenazada (NT) (León-Yánez et al., 2011). Ver
Tabla 2.
Tabla 2. Especies endemicas registradas en las expediciones botánicas realizadas en los cantones Palanda y
Chinchipe
Familia
Categoría
de Amenaza
(UICN)
las especies
Rango altitudinal
(m s.n.m.)
Aegiphila rimbachii
Moldenke
Lamiaceae EN
Bolívar, Pichincha, Zamora
Chinchipe
2500-3000
Bomarea brachysepala
Benth.
Alstroemeriaceae NT
Azuay, Loja, Morona Santiago,
Zamora Chinchipe
2500-3500
Centropogon comosus
Gleason
Campanulaceae EN Loja, Zamora Chinchipe 2000-3500
Centropogon erythraeus
Drake
Campanulaceae EN Loja, Zamora Chinchipe 2000-3000
Centropogon steyermarkii
Jeppesen
Campanulaceae EN Loja, Zamora Chinchipe 2500-3500
Ceratostema reginaldii
Ericaceae LC
Azuay, Loja, Morona Santiago,
Zamora Chinchipe
1500-3500
Clethra parallelinervia C.
Gust
Clethraceae VU
Loja, Azuay y Zamora
Chinchipe
2500 - 3500
Cinchona mutisii Lamb.
Rubiaceae CR Loja, Zamora Chinchipe 2000-3500
Deprea ecuatoriana Hunz.
& Barboza
Solanaceae VU Loja, Zamora Chinchipe 2500-3500
Diplostephium espinosae
Cuatrec
Asteraceae NT
Azuay, Loja, Pichincha, Zamora
Chinchipe
2500-4000
Fuchsia steyermarkii P.E.
Berry
Onagraceae EN Zamora Chinchipe 1500-3000
Geissanthus vanderweri
Pipoly
Primulaceae NT
Carchi, Imbabura, Loja, Zamora
Chinchipe
2000-3500
Guzmania atrocastanea H.
Luther
Bromeliaceae VU
Morona Santiago, Zamora
Chinchipe
2000-2500
Inga extra-nodis T.D. Penn.
Fabaceae NT Napo, Zamora Chinchipe 1500-2000
37
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
Familia
Categoría
de Amenaza
(UICN)
las especies
Rango altitudinal
(m s.n.m.)
Macrocarpaea apparata
J.R. Grant & Struwe
Gentianaceae VU Loja, Zamora Chinchipe 2450-2565
Macrocarpaea lenae J.R.
Grant
Gentianaceae VU Zamora Chinchipe 1030-2100
Macrocarpaea luna-
gentiana J.R. Grant &
Struwe
Gentianaceae VU Loja, Zamora Chinchipe 2500-3000
Miconia cercophora
Wurdack
Melastomataceae VU
Morona Santiago, Napo,
Pastaza, Zamora Chinchipe
0-1500
Miconia dodsonii Wurdack
Melastomataceae NT Loja, Zamora Chinchipe 2500-3500
Miconia suborbicularis
Cogn.
Melastomataceae VU
Loja, Morona Santiago, Zamora
Chinchipe
2500-3500
Myrsine sodiroana (Mez)
Pipoly
Primulaceae VU
Cotopaxi, Loja, Pichincha,
Zamora Chinchipe
1500-3500
Neurolepis elata (Kunth)
Pilg.
Poaceae EN Loja, Zamora Chinchipe 2000-3500
Oreopanax rosei Harms
Araliaceae VU Loja, Zamora Chinchipe 2000-3000
Orthaea mbriata Luteyn
Ericaceae LC
Carchi, Loja, Morona Santiago,
Napo, Sucumbios, Zamora
Chinchipe
1500-3500
Pitcairnia alata L.B.Sm.
Bromeliaceae EN Zamora Chinchipe 2000-3000
Saurauia pseudostrigillosa
Buscal.
Actinidaceae LC
Bolívar, Chimborazo, Cotopaxi,
Imbabura, Pichincha, Zamora
Chinchipe
500-3500
Saurauia harlingii Soejarto
Actinidaceae VU Zamora Chinchipe 2000-2500
Siparuna eggersii Hieron
Siparunaceae EN
Azuay, Bolivar, Chimborazo,
El Oro, Guayas, Loja, Manabí,
Pichincha, Zamora Chinchipe
0-2500
Solanum savanillense Bitter
Solanaceae VU Loja, Zamora Chinchipe 2000-3000
Stilpnophyllum
grandifolium L.Adersson
Rubiaceae EN Zamora Chinchipe 1000 - 1500
Thibaudia harlingii Luteyn
Ericaceae VU Zamora Chinchipe 1500-2000
Tillandsia aequatorialis
L.B. Sm.
Bromeliaceae VU
Azuay, Imbabura, Loja, Zamora
Chinchipe
1000-3500
Nota: CR = En Peligro Crítico, EN = En Peligro, VU = Vulnerable, NT = Casi Amenazada, LC = Preocupación
Menor.
Es importante resaltar que de las 32 especies
endémicas registradas en este estudio, 10 de éstas
amplian su distribución para zona sur oriental
de la provincia de Zamora Chinchipe, estas
son: Aegiphila rimbachii Moldenke, Deprea
ecuatoriana Hunz. & Barboza, Diplostephium
espinosae Cuatrec, Guzmania atrocastanea H.
Luther, Inga extra-nodis T.D. Penn., Macrocarpaea
apparata J.R. Grant & Struwe, Macrocarpaea
luna-gentiana J.R. Grant & Struwe, Oreopanax
rosei Harms, Orthaea mbriata Luteyn, Saurauia
pseudostrigillosa Buscal y Tillandsia aequatorialis
L.B. Sm.
38
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre-Mendoza, Z., Veintimilla-Ramos, D., Pardo-Jaramillo, S., Peña-Tamayo, J., Jaramillo-Diaz, N. (2026). Flora
preliminar de la cuenca del Río Mayo, sur oriente de la provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador. Bosques Latitud
Cero, 16(1), 15-38. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2607
CONCLUSIONES
El desarrollo de exploraciones botánicas, junto con
la instalación de transectos y parcelas permanentes,
permitió generar información valiosa sobre la
de los remanentes de vegetación en la cuenca del
río Mayo. Este esfuerzo proporciona una base
de la dinámica forestal en los bosques de la región
del Herbario “Reinaldo Espinosa” de la Universidad
Nacional de Loja como una institución que
La documentación de especies endémicas,
permitió determinar la ampliación del registro de
distribución para 10 especies que también están
presentes en Zamora Chinchipe, y posibles nuevas
especies para la ciencia, resalta la riqueza biológica
de la Amazonía sur del Ecuador y la necesidad
urgente de su conservación. Además, los resultados
de este estudio refuerzan el potencial biológico de
esta área como escenario para la investigación,
educación y el manejo sostenible de los recursos
naturales.
La zona estudiada presenta una notable riqueza
familias Rubiaceae, Lauraceae, Bromeliaceae y
Melastomataceae destacan por su alta diversidad,
de los ecosistemas locales. El registro de 32
especies endémicas, junto con nuevos reportes para
el Ecuador y posibles especies aún no descritas,
evidencia la relevancia biológica, potencial para
descubrimientos taxonómicos y alta necesidad de
conservación.
CONTRIBUCIÓN DE AUTORES
Zhofrea Aguirre.- Gestion del proyecto, escritura
del manuscrito original; Dario Veintimilla.-
plantas y revisión del manuscrito; Nelson Jaramillo.-
datos de campo y obtención del inventario; Sebastián
Pardo y Jaime Peña, apoyo en procesamiento e
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Aguirre Z., (2018). Principios para el estudio de
las familias botánicas del Ecuador. Universidad
Nacional de Loja. ISBN: 978-9942-30-941-9
Aguirre, Z. (2019). Metodos para medir la
Biodiversidad Universidad Nacional de Loja.
Segunda Edición.
Aguirre, Z., Valencia, E., Veintimilla, D., Pardo,
estructura y endemismo del componente leñoso
en el bosque siempreverde montano bajo de
la parroquia Valladolid, Zamora Chinchipe,
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estructura de la vegetación leñosa en remanentes
boscosos piemontanos de Palanda, Ecuador.
Horizonte Académico. 5(1), 308-328
Aguirre, Z., Condoy, M., Veintimilla, D., Pardo,
estructura y endemismo de un bosque piemontano
en Zumba, Zamora Chinchipe, Ecuador. Revista
Ciencia y Tecnología, 21(1), 33-43. https://doi.
org/10.17268/rev.cyt.2025.01.03
Fouet, O., Loor Solorzano, R. G.,Rhoné, B., Subía, C.,
Calderon, D., Fernández, F., Sotomayor, I.,Rivallan,
R., Colonges, K., Vignes, H., Angamarca, F.,
Yaguana,B., Costet, P., Argout, X., & Lanaud, C.
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39
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Bosques Latitud Cero 16(1), 39-52. 2026
https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2510
Publicado por la Universidad Nacional de Loja,
bajo licencia Creative Commons 4.0
Valoración y comercialización de productos forestales no maderables en Cofán
Bermejo, Ecuador
*
1. Facultad de Ciencias de la Tierra, Universidad Estatal Amazónica,
Pastaza, Ecuador
2. Facultad de Ciencias de la Vida, Universidad Estatal Amazónica,
Pastaza, Ecuador
*Autor para correspondencia: carito11_2011@hotmail.com
RECIBIDO: 13/06/2025 ACEPTADO: 29/08/2025
RESUMEN
Los productos forestales no maderables (PFNM) son un componente esencial para la subsistencia de las
comunidades rurales amazónicas y la conservación de sus ecosistemas. Este estudio evaluó la estructura
poblacional, abundancia, usos y precios de comercialización de los PFNM en la Reserva Ecológica Cofán
encuestas en tres mercados de Lago Agrio, para caracterizar los usos, partes aprovechadas, y precios de
270 individuos de PFNM, con predominio de clases diamétricas menores, lo cual sugiere una estructura
poblacional joven con alto potencial de regeneración. Las especies más abundantes fueron Iriartea
deltoidea Ruiz & Pav. (20,37 %) y Otoba parvifolia (Markgr.) A.H. Gentry (15,56 %). Se registraron
20 especies con usos predominantes comestibles (39,3 %), medicinal (21,5 %) y artesanal (19,1 %).
La familia Arecaceae se distinguió por su uso múltiple, y otras especies, por su doble funcionalidad
alimentaria y medicinal, esenciales para el sustento y la salud local. En conclusión, los PFNM de la
RECB demuestran una alta diversidad y valor socioeconómico. Su estructura poblacional respalda la
implementación de estrategias de manejo y conservación sostenibles para potenciar la bioeconomía
local.
Precios de mercado, manejo sostenible, Amazonía Ecuatoriana, valor de uso y bioeconomía
local.
PUBLICADO: 05/01/2026
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Beltrán, A., Pallo, E., Zamora, J. (2026). Valoración y comercialización de productos forestales no maderables en Cofán
Bermejo, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 39-52. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2510
ABSTRACT
Non-timber forest products (NTFPs) are essential to the livelihoods of rural Amazonian communities and
to conserving their ecosystems. This study assessed the population structure, abundance, uses, and market
prices of NTFPs in the Cofán Bermejo Ecological Reserve (RECB) to inform commercial reforestation
three markets in Lago Agrio to document uses, parts harvested, and sale prices; economic valuation
was performed using the market price method. A total of 270 individuals were recorded, dominated by
smaller diameter classes, indicating a young population structure with high regeneration potential. The
most abundant species were Iriartea deltoidea Ruiz & Pav. (20.37 %) and Otoba parvifolia (Markgr.)
(21.5 %), and artisanal (19.1 %) uses. The family Arecaceae stood out for its multiple uses, while several
other species were valued for their dual food and medicinal functions, essential for local livelihoods
and health. Overall, NTFPs in the RECB exhibit high diversity and socioeconomic value, and their
population structure supports the implementation of sustainable management and conservation strategies
to strengthen the local bioeconomy.
Keywords: Market prices, sustainable management, Ecuadorian Amazon, use value, local bioeconomy.
INTRODUCCIÓN
La Región Amazónica Ecuatoriana (RAE) es
una de las zonas más biodiversas del planeta y
representa un entorno clave para el desarrollo de
estrategias sostenibles que integren conservación
ambiental y bienestar social. En este contexto, los
Productos Forestales No Maderables (PFNM) se
consolidan como una fuente esencial de ingresos,
alimentación, medicina y materiales para las
comunidades locales, desempeñando un rol
fundamental en su seguridad alimentaria, salud y
sostenibilidad económica (Beltrán-Rodríguez et
al., 2014; Ojeda et al., 2020).
Asimismo, el aprovechamiento responsable de los
recursos forestales, asegurando su disponibilidad
a largo plazo y contribuyendo a reducir la presión
sobre especies maderables. Estos productos no solo
amazónicas, sino que también fortalecen la
resiliencia económica de las comunidades frente a
al., 2015; Reyes-García et al., 2005)
En particular, la valoración económica y
comercialización de los PFNM ha cobrado
relevancia como herramienta para orientar
políticas de manejo forestal sostenible, fomentar
la conservación de la biodiversidad y promover
más aprovechadas, sus usos, precios y potencial
comercial, proporciona información estratégica
para el diseño de planes de aprovechamiento
sustentable y generación de ingresos (Mejía et al.,
2015)
La comunidad Cofán Bermejo, ubicada en la
provincia de Sucumbíos, alberga un ecosistema
forestal de notable biodiversidad y riqueza cultural.
Sin embargo, enfrenta amenazas crecientes como
la deforestación, la minería, la expansión agrícola
y la quema de cobertura vegetal (Guala et al.,
2022), lo que compromete la preservación de sus
tradiciones y la sostenibilidad de su bioeconomía.
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Beltrán, A., Pallo, E., Zamora, J. (2026). Valoración y comercialización de productos forestales no maderables en Cofán
Bermejo, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 39-52. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2510
En este contexto, el presente estudio se orienta a
los siguientes objetivos:
1. Evaluar la estructura y abundancia de los
PFNM en la Reserva Ecológica Cofán
diamétrica.
2. Determinar los usos, partes utilizadas y precios
de comercialización de las principales especies,
a través de encuestas aplicadas a comerciantes
locales en la ciudad de Lago Agrio.
3. Analizar el potencial de aprovechamiento de
vinculado a procesos de bioeconomía local.
MATERIALES Y MÉTODOS
Área de estudio
El estudio se realizó en la reserva ecológica
Cofán Bermejo, la reserva se encuentra ubicada
en la parroquia El Dorado, cantón Cáscales al
noroccidente de la provincia de Sucumbíos, tiene
un área de 55 451 ha (Ministerio del Ambiente
del Ecuador, 2014) (Figura 1). La reserva está
conformada por un área de transición entre el
bosque siempre verde montano de la Amazonía
y las tierras altas de los Andes, posee un rango
altitudinal que varía entre los 400 y 2 775 m s. n.
m., su clima es muy cambiante y la precipitación
es de 2 000 a 4 000 mm anuales (Guala et al., 2022)
Para la investigación se instaló una parcela en
la parte baja de la reserva, donde se presenta un
bosque secundario, resultado de la dinámica
sucesional tras disturbios del límite fronterizo,
previo a la declaratoria como reserva. Cabe
destacar que el principal uso de los recursos
forestales en la zona son las especies maderables
utilizados para la construcción de viviendas por
parte de los habitantes de las comunidades cofanes
como Chandia Na’en y Avié.
Figura 1. Localización de la comunidad Cofán
Bermejo y delimitación de la parcela de muestreo de
PFNM
Diseño de la investigación
Dentro de la reserva ecológica Cofán Bermejo
se estableció una parcela temporal de 100 x 100
m (1 ha), localizada en los siguientes puntos
264004E 33502N, P3) 18N 264033E 33595N
y P4) 18N 264120E 33562N UTM. Con una
subdivisión de 25 subparcelas de 400 m2 (20 x 20
m) debidamente delimitadas, en cada subparcela se
realizó el plaqueado de cada especie arbórea con
la colaboración de dos expertos locales.
Adicionalmente, se aplicaron encuestas, en los
principales puntos de expendio de PFNM de la
ciudad de Lago Agrio, donde se colectó información
de carácter descriptivo en relación con los usos,
parte utilizada y precios de los PFNM presentes en
la zona de estudio; y categorizadas (comestibles,
medicinales, tintóreas, artesanales, industriales) de
al., 2006).
Para el procesamiento de datos se utilizaron
herramientas como Microsoft Excel (versión
2019), para el ingreso de información a la base de
datos. Posteriormente, los datos fueron procesados
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mediante los programas estadísticos IBM SPSS
e InfoStat, aplicando análisis descriptivos de las
variables cuantitativas, enfocados en el cálculo de
medias con un mayor grado de precisión.
maderables
PFNM en la parcela de estudio se realizó mediante
observación directa, con el acompañamiento de
un técnico del Ministerio del Ambiente, Agua
y Transición Ecológica (MAATE), así como
del presidente y un miembro de la comunidad
Avié, quienes colaboraron activamente en la
se efectuó empleando claves dicotómicas y
descripciones morfológicas contenidas en la guía
de árboles y arbustos de la serranía Cofán (Pitman
et al., 2002). Esta información fue complementada
y validada con el Catalogue of the Vascular Plants
of Ecuador, publicado por el Missouri Botanical
Garden (Jorgensen & León Yánez, 1999), una
vascular del país.
Diseño y aplicación de la encuesta
Para recopilar la información sobre el uso, la
parte utilizada y el precio de venta de los PFNM
comercializados en los principales mercados
de Lago Agrio, se diseñó y aplicó una encuesta
estructurada Tabla 1. La construcción del
instrumento se basó en enfoques metodológicos
previamente aplicados en estudios similares,
como el de Guamán-Songor et al. (2021), quienes
analizaron la diversidad y comercialización
de PFNM en comunidades rurales del sur del
Ecuador, y la propuesta de (Rodríguez et al., 2019)
, que desarrollaron una encuesta para el estudio
etnobotánico de especies medicinales en contextos
amazónicos.
valor de uso y la unidad de venta de los principales
1). Su validez fue garantizada mediante juicio de
la tutora, docente-investigador de la Universidad
Estatal Amazónica, especializada en la rama
forestal y diseño de instrumentos, que evaluó la
pertinencia, claridad y coherencia de los ítems
conforme a los objetivos del estudio.
La aplicación de las encuestas se llevó a cabo de
forma presencial y se realizaron en los lugares de
expendio de PFNM, según la recomendación de
(Baltazar, 2011). Para ello se consideraron tres
mercados representativos del cantón Lago Agrio: el
Mercado Municipal, Mercado Indígena (Feria Agro
productiva Artesanal Gastronómica, y el mercado
de Medicina Ancestral y de Nacionalidades) y
Mercado Mayorista de Abastos y Productos de la
productos, detallados en la siguiente tabla 1.
Tabla 1. Mercados de expendio de productos de la zona
Mercados Localización No. Locales
Mercado Municipal
Lago Agrio
Cantón Nueva Loja 7
Mercado Indígena Cantón Nueva Loja 17
Mercado mayorista
de abastos y
productos de la zona
Cantón Nueva Loja 28
Total 52
Para el muestreo censal se aplicó una encuesta
por local dirigida a la persona responsable del
punto de venta, considerando los siguientes
criterios de inclusión: a) rango de edad entre 18
y 50 años, y b) participación indistinta de ambos
sexos. El instrumento incluyó preguntas orientadas
a registrar el nombre común del producto,
medicinal, tintóreo, artesanal e industrial), la parte
aprovechada, el valor de uso, la unidad de venta y
observaciones adicionales sobre su disponibilidad
o comercialización.
Estimación de la valoración económica de uso
con valor de uso directo, se procedió a aplicar el
de los métodos directos de valoración económica
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ambiental. Esta metodología permite estimar
el valor económico de los PFNM mediante la
ecuación:
(1)
Donde, Ni representa el número de individuos
de la especie, y Pri el precio promedio unitario
en dólares estadounidenses, obtenido a partir
de consultas a mercados locales, ferias y
actores comunitarios. Para esta investigación se
consideraron once especies de uso comestible con
precios de mercado reconocidos. Este enfoque
ha sido validado en investigaciones previas
como la de (Peralta-Kulik et al., 2018), quienes
aplicaron este método en la Ecorregión del Alto
Paraná para estimar el valor económico de bienes
Su elección en el presente estudio responde a su
el valor económico tangible de los recursos
naturales, y pertinencia en contextos rurales
donde existe conocimiento local sobre usos y
precios de los productos del bosque.
RESULTADOS
Reserva Ecológica Cofán Bermejo
Como se muestra en la Figura 2, la distribución
de individuos por clases diamétricas tanto para
productos forestales no maderables (PFNM) como
productos forestales maderables (PFM) varía
según el tipo de producto forestal, agrupándose en
cinco intervalos que van desde 10 a 19,9 cm hasta
más de 50 cm. Particularmente, se observa una
mayor concentración de individuos en las clases
poblacional joven y sugiere un alto potencial de
regeneración y aprovechamiento futuro.
Figura 2. Distribución del número de individuos por
clase diamétrica (DAP) según el tipo de producto
forestal (PFM y PFNM) en el bosque de la comunidad
Cofán Bermejo, Sucumbíos, Ecuador.
En lo referente a la abundancia de las especies
arbóreas presentes en el bosque de la comunidad
Cofán Bermejo, los resultados (Figura 3) evidencian
total de 270 individuos. La métrica utilizada para
como el número total de individuos por especie.
Las especies con mayor abundancia fueron Iriartea
deltoidea con 55 individuos (20,37 %), seguida de
Otoba parvifolia con 42 individuos (15,56 %) y
Matisia cordata con 21 individuos (7,78 %), lo que
indica su dominio relativo en la comunidad vegetal
evaluada.
También, se registró la presencia de otras especies
notables, como Matisia cordata (7,78 %), Inga
edulis (5,56 %), y Micropholis melinoniana
(5,56 %), entre otras. Por el contrario, especies
como Sloanea grandiora, Matisia ochrocalyx y
Dacryodes peruviana presentaron una abundancia
una baja representatividad.
Desde un enfoque ecológico, la distribución
desigual de individuos entre especies sugiere
una estructura composicional heterogénea,
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rasgo característico de los bosques tropicales
húmedos. Si bien el análisis se basa únicamente
especies con mayor dominancia ecológica, lo que
resulta fundamental para establecer prioridades en
las estrategias de manejo forestal y conservación.
Adicionalmente, el hecho de que un 26,30 % de
los individuos pertenezca al grupo denominado
«otras especies», resalta la necesidad de continuar
investigando y documentando la biodiversidad de
este bosque comunitario.
Figura 3. Abundancia de especies arbóreas maderables
registradas en el bosque de la comunidad Cofán
Bermejo, Sucumbíos, Ecuador. Se muestra el número
total de individuos por especie (n = 270), destacando
la dominancia de Iriartea deltoidea y Otoba
parvifolia.
Ecológica Cofán Bermejo
El análisis de la frecuencia de uso de PFNM en
la comunidad Cofán Bermejo revela una variedad
recursos forestales de este ecosistema. La Figura
4 muestra que la categoría de «Comestible» ocupa
el primer lugar, representando el 39,3 % de la
de este tipo de recursos como fuente de alimentos
en la comunidad. La categoría «Medicinal» se
encuentra en segundo lugar, con un 21,5 % de
la frecuencia de uso, indicando la relevancia de
los PFNM en la medicina tradicional y la salud
comunitaria.
La categoría “Artesanal” también muestra una
que los recursos forestales se utilizan para la
creación de artesanías y actividades culturales.
Por otro lado, la categoría “Industrial” representa
un 17,5 % de la frecuencia de uso, lo que indica
que algunos de estos PFNM pueden tener
aplicaciones en procesos industriales. Finalmente,
la categoría “Tintóreas” tiene una frecuencia del
2,5 %, señalando un uso más especializado en la
obtención de tintes naturales.
Figura 4. Distribución porcentual de las categorías de
uso de los PFNM de la RECB, Sucumbíos, Ecuador
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Categoría de usos y partes utilizadas de los
La Tabla 2 muestra que la comunidad Cofán
Bermejo tiene una amplia diversidad de especies
especies de plantas que se utilizan para una variedad
de propósitos, incluyendo usos comestibles,
medicinales, artesanales, industriales y tintoreros.
Los datos obtenidos evidencian que las
especies pertenecientes a la familia Arecacea,
Iriartea deltoidea, Oenocarpus
bataua, Bactris gasipaes y Euterpe precatoria,
presentan una alta frecuencia de uso,
destacándose por su versatilidad al estar asociadas
simultáneamente a las categorías comestible,
medicinal e incluso industrial. Este patrón de uso
estas especies dentro del ecosistema del bosque
de la comunidad Cofán Bermejo, sino también
su importancia etnobotánica en las prácticas
tradicionales de la población local.
Asimismo, especies como Otoba parvifolia
(Myristicaceae), Inga edulis (Fabaceae),
Micropholis melinoniana (Sapotaceae), Brownea
ariza (Fabacea) y Brosimum alicastrum (Moracea)
muestran una doble funcionalidad al ser empleadas
Este patrón de uso resalta la relevancia de dichas
especies en el sustento alimentario y de salud de
las comunidades indígenas, además de su valor
potencial en mercados locales.
Por lo tanto, la gestión adecuada de estas especies
es esencial para preservar su disponibilidad y
contribuir a los medios de vida de la comunidad.
Tabla 2. Usos y parte usada de las 20 especies PFNM de la RECB, Sucumbíos, Ecuador
N° Ab. Familia
Nombre común
Usos
Español Kichwa Cofán
1 55 Arecaceae
Iriartea deltoidea Ruz &
Pav.
Pambil shanka bo’mbo C, Me, Art
2 42 Myristicaceae
Otoba parvifolia
Sangre de gallina wapa yura shashafacco
C, Me, Art,
Ind.
3 21 Malvaceae
Matisia cordata Humb. &
Bonpl.
Sapote zapote muyu ----- C, Ind.
4 15 Fabaceae
Inga edulis
Guaba waska pakay C, Me
5 15 Sapotaceae
Micropholis melinoniana
Caimitillo aviyu ----- C, Me, Ind
6 11 Fabaceae
Brownea ariza
Palo cruz -----
Tsanda
mappi’cho
C, Me
7 11 Moraceae
Naucleopsis glabra
Spruce ex Pittier
Cauchillo ----- ----- -----
8 10 Moraceae
Brosimum alicastrum Sw.
Tillo ----- ----- C, Me, Ind
9 10 Sapotaceae
Pouteria caimito
Caimito tarpu aviyu sijica C, Art, Ind
10 9 Fabaceae
Dussia lehmannii
Porotillo ----- ----- C, Art
11 9 Arecaceae
Oenocarpus bataua
Ungurahua shiwa muyu nijo’cho
C, Me, Art,
T
12 7 Malvaceae
Apeiba membranacea
Speuce ex Benth.
Peine de mono ñachak kaspi ----- C, Art
13 7 Arecaceae
Bactris gasipaes Kunth.
Chonta uchu manka o’ma C, Me, T
14 6 Moraceae
Brosimum guianensis
Sandillo ----- ----- Art, Ind
15 6 Arecaceae
Euterpre precatoria Mart.
Palmito wasay di’va C, Me, Art
16 5 Moraceae
Ficus sp.
Higuerón de
Monte
----- ----- C, Me
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N° Ab. Familia
Nombre común
Usos
Español Kichwa Cofán
17 4 Bombacaceae
Pachira insignis
Pachira ----- ----- C
18 3 Moraceae
Brosimum utile (Kunth)
Oken.
Sande santi wiki ccovi ne’mba C, Me, Ind
19 3 Cecropiaceae
Pourouma cecropiifolia
Uva ----- ----- C
20 3 Fabaceae
Inga acreana
Guabillo ----- C
Categoría de uso: C: comestible, Me: medicinal, Art: Artesanal, Ind: Industrial, T: Tintoreas
mercados domésticos
El análisis de la forma de expendio y precios
de las 18 especies de PFNM en la comunidad
Cofán Bermejo (Tabla 3), proporciona una visión
detallada de las especies, las unidades de venta,
las partes usadas y los precios promedio en el
mercado local. Se observa una amplia variedad de
productos forestales con diferentes aplicaciones y
valores comerciales. Así vemos que el látex de la
especie Brosimum utile (Moraceae) se extrae en
mililitros (ml) y tiene un precio promedio de USD
6,25 por unidad de venta. Sin embargo, el látex de
producto conocido comúnmente como azufre de
la especie Symphonia globulifera (Clusiaceae) se
vende por libra a un precio promedio de USD 5,33
en el mercado local de Lago Agrio.
El palmito de Iriartea deltoidea se vende en
porciones a un precio promedio de USD 6 por
unidad. El aceite extraído de Oenocarpus bataua
se vende en presentaciones de mililitros, con un
precio promedio de USD 5,31 por unidad. Los
frutos de Bactris gasipaes, conocidos locamente
como “Chonta duro” se venden en racimos a un
precio promedio de USD 3,64. A su vez, la corteza
de Euterpre precatoria se vende en porciones con
un precio promedio de USD 2,65 por unidad de
venta. Todas estas especies, pertenecientes a la
económico tanto para el autoconsumo como para
la comercialización en mercados regionales y
nacionales.
Asimismo, las semillas de Apeiba membranacea
(Malvaceae) se venden por unidad a un precio
promedio de USD 4,33. Los frutos de la especie
Dacryodes peruviana (Burseraceae) se venden
por libra a USD 4,13. A diferencia de los tallos
de Matisia ochrocalyx (Bombacaceae) se venden
en ramas individuales a un precio promedio de
la diversidad de PFNM aprovechados por la
comunidad, así como las variaciones en sus valores
económicos promedio, determinados por la forma
de presentación y la demanda en los mercados
locales.
Tabla 3. Forma de expendio y precios de las 18 especies PFNM de la RECB, Sucumbíos, Ecuador
No. Familia Nombre Común
Unidad de
venta
promedio
USD
1 Moraceae
Brosimum utile (Kunth) Oken.
Sande ml Látex 6,25
2 Arecaceae
Iriartea deltoidea Ruz & Pav.
Pambil Porción Palmito 6
3 Clusiaceae
Symphonia globulifera
Azufre Libra Látex 5,33
4 Arecaceae
Oenocarpus bataua
Ungurahua ml Aceite 5,31
5 Malvaceae
Apeiba membranacea
Peine de mono Unidad Semilla 4,33
6 Burseraceae
Dacryodes peruviana
Copalillo Libra Fruto 4,13
7 Arecaceae
Bactris gasipaes Kunth.
Chonta Racimo Fruto 3,64
8 Bombacaceae
Matisia ochrocalyx K. Schum.
Chuculero Rama Tallo 2,92
47
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No. Familia Nombre Común
Unidad de
venta
promedio
USD
9 Arecaceae
Euterpre precatoria Mart.
Palmito Porción Corteza 2,65
10 Myristicaceae
Otoba parvifolia
Sangre de gallina ml Savia 2
11 Sapotaceae
Pourouma cecropiifolia
Uva Racimo Fruto 1,65
12 Fabaceae
Brownea ariza
Palo Cruz Corteza Rama 1,58
13 Loganiaceae
Strychnos panamensis
Huevo de toro Unidad Fruto 1,55
14 Fabaceae
Inga acreana
Guabilla Unidad Fruto 0,1
15 Sapotaceae
Pouteria multiora
Caimito Unidad Fruto 0,34
16 Fabaceae
Inga edulis
Guaba Unidad Fruto 0,3
17 Malvaceae
Quararibea cordata
Sapote Unidad Fruto 0,3
18 Elaocarpaceae
Sloanea grandiora
Achotillo de monte Unidad Fruto 0,1
Determinación del valor de uso directo de los
potencial uso no maderable, se priorizaron 11 con
base en su frecuencia de uso y relevancia comercial.
La mayoría de estas especies corresponde a usos
comestibles, seguidas por aplicaciones medicinales
y artesanales. La Tabla 4 presenta la estimación
del valor económico de uso directo para las once
especies priorizadas.
El valor económico total estimado para los bienes
de uso directo derivados de los productos forestales
no maderables (PFNM), calculado a partir de
precios de mercado local por unidad de venta,
umbral de referencia para la Reserva Ecológica
Cofán Bermejo (RECB), situada en una zona de
indirecta de los PFNM a la provisión de servicios
ecosistémicos esenciales para el bienestar humano,
y constituye un insumo clave para promover
enmarcadas en los principios de bioeconomía
local y dinámicas para valorar adecuadamente los
recursos forestales y contribuir a su conservación
y gestión sostenible.
Tabla 4. Valor económico estimado de uso directo de especies prioritarias de PFNM en los mercados locales de
la comunidad Cofán Bermejo, Sucumbíos, Ecuador.
No. Especie
Número de
individuos (Ni)
unidad (USD)
1
Brosimum utile
3 6,25 18,75
2
Iriartea deltoidea
55 6 330
3
Oenocarpus bataua
9 5,31 47,79
4
Apeiba membranacea
7 4,33 30,31
5
Bactris gasipaes
7 3,64 25,48
6
Euterpre precatoria
6 2,65 15,9
7
Otoba parvifolia
42 2 84
8
Pourouma cecropiifolia
3 1,65 4,95
9
Brownea ariza
11 1,58 17,38
10
Inga acreana
3 0,1 0,3
11
Inga edulis
15 0,3 4,5
1
) 579,36
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Beltrán, A., Pallo, E., Zamora, J. (2026). Valoración y comercialización de productos forestales no maderables en Cofán
Bermejo, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 39-52. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2510
DISCUSIÓN
En relación con los PFNM, se observa una
marcada concentración de individuos en las clases
diamétricas más jóvenes, destacándose que la
mayoría se ubica en el rango de 10 a 19,9 cm.
Este patrón sugiere una alta disponibilidad de
recursos en etapas tempranas de desarrollo, lo que
resulta relevante para el aprovechamiento futuro
comportamiento similar ha sido reportado en el
bosque subhúmedo del sur de Manabí, donde el
lote 2 presenta la mayor cantidad de individuos
en la clase diamétrica de 7 a 17 cm, mientras que
los diámetros mayores, como los de 27 a 37 cm,
muestran una menor representatividad (Pionce-
Andrade et al., 2018).
Estos hallazgos subrayan la importancia de
una gestión forestal sostenible enfocada en los
PFNM, dado su potencial para contribuir tanto a la
conservación de la biodiversidad como al desarrollo
económico local. La elevada presencia de especies
en clases diamétricas bajas evidencia la necesidad
de implementar estrategias de manejo que permitan
el aprovechamiento responsable de estos recursos,
En este contexto, resulta crucial vincular los
aspectos ecológicos con los económicos, mediante
iniciativas que promuevan sistemas de producción
ambientalmente sostenibles y económicamente
viables.
Tal como advierte Pionce-Andrade et al. (2018),
en ecosistemas similares como los bosques
subhúmedos del sur de Manabí, la presión sobre
especies con valor no maderable ha incrementado
el riesgo de extinción local. Por ello, se recomienda
desarrollar esquemas de uso y manejo sustentable
que garanticen la permanencia de los PFNM como
bienes estratégicos para la bioeconomía local.
En cuanto a la abundancia y distribución de
las especies arbóreas (Figura 3), el bosque de
la comunidad Cofán Bermejo presenta una
en comparación con ecosistemas de mayor altitud
como los Páramos de Sachaguayco, en la comunidad
registró un total de 398 individuos, de los cuales
solo 45 corresponden a especies arbóreas. Entre
ellas, Vallea stipularis (30 %), y Buddleja inca (22
baja diversidad arbórea en esta zona (Sula, 2011).
bosque amazónico estudiado, donde se evidencia
una estructura más compleja y un mayor potencial
para el aprovechamiento de los PFNM.
Por otra parte, el análisis de la frecuencia de uso
de los PFNM en Cofán Bermejo (Figura 4) revela
una tendencia consistente con otros estudios
desarrollados en la región. La categoría comestible
(alimenticia) representa el mayor porcentaje (38
%), seguida por el uso medicinal (24 %). Este
patrón coincide con lo reportado por Guamán-
Songor et al. (2021), en cinco comunidades del
cantón Palanda, donde los usos predominantes
también están vinculados a alimentos y bebidas,
seguidos por medicina humana.
Sin embargo, otros contextos amazónicos presentan
variaciones. Por ejemplo, Quito-Ulloa et al. (2021)
en comunidades de la parroquia Valladolid, registra
una mayor frecuencia en el uso medicinal (22,69
%), seguido por alimentos y bebidas (12,12 %).
De manera similar, López-Beltrán et al. (2021), en
que las categorías con mayor frecuencia de uso
corresponden a medicinal, seguidos por alimentos
y bebidas. Esta misma tendencia es respaldada por
Vivanco et al. (2021), quienes reportan un 32,6
% corresponde a la frecuencia de uso medicinal,
seguido por elaboración de bebidas (21,2 %) y
usos alimenticios (17,9 %).
Asimismo, Aguirre Mendoza et al. (2019), en cinco
comunidades del cantón Zapotillo, destacan que la
medicina humana concentra el mayor porcentaje
de uso (29,9 %), seguida del uso como forraje
(18,4 %) y, en menor valor de uso los colorantes
y tintes (1,1 %).
Todos estos resultados se alinean con lo señalado
por (Aguirre & Aguirre, 2021), quienes, en su
estudio en diversas comunidades y ecosistemas
del sur del Ecuador, atribuyen las tendencias
observadas al conocimiento local y percepción
de uso de la población, considerando parámetros
etnobotánicos como la frecuencia de uso, el valor
como las especies proveedoras de PFNM, en cada
territorio.
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Beltrán, A., Pallo, E., Zamora, J. (2026). Valoración y comercialización de productos forestales no maderables en Cofán
Bermejo, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 39-52. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2510
Cabe destacar que, estos hallazgos refuerzan la
relevancia de los PFNM no solo como elementos
clave para la subsistencia diaria, sino también
como componentes fundamentales de la identidad
cultural y de las dinámicas económicas locales,
particularmente en la comunidad Cofán Bermejo.
Esta evidencia subraya la necesidad urgente de
implementar estrategias de manejo sostenible que
aseguren la conservación y disponibilidad de estos
recursos a largo plazo (Figura 4).
Proponiéndose, como acción prioritaria, la
articulación interinstitucional y la integración de
esfuerzos orientados al desarrollo de Planes de
Manejo y aprovechamiento de los PFNM. Estos
planes deben incluir el inventario, valoración,
uso responsable y categorización formal,
equiparándolos en importancia a los productos
maderables. (Aguirre & Aguirre, 2021). Superando
así la visión tradicional que los ubica como
recursos secundarios del bosque, fundamentado
su gestión en principios de uso múltiple que
aseguren la provisión sostenible de productos y
servicios del bosque, en correspondencia con las
necesidades sociales, culturales y económicas de
las comunidades locales (González & Sans, 2007).
Históricamente, los PFNM han sido recolectados
y utilizados por las poblaciones rurales
asentados en zonas boscosas durante milenios,
constituyéndose en recursos esenciales para su
bienestar y supervivencia (López, 2008). Esta
tradición perdura en la comunidad Cofán Bermejo,
donde múltiples especies exhiben usos diversos y
complementarios.
La parroquia Nangaritza presenta una composición
comunidad Cofán Bermejo, particularmente
en cuanto a especies con alta representatividad
etnobotánica. En ambas localidades Iriartea
deltoidea, Oenocarpus bataua, Bactris gasipaes
y Euterpe precatoria (Arecaceae), se destacan por
su aprovechamiento múltiple, principalmente en
las categorías comestible “Alimentos y bebidas” y
medicinal (Zhiñin et al., 2021). Esta coincidencia
resalta la relevancia de la familia Arecaceae en
el uso tradicional de los recursos forestales en
la región amazónica, y sugiere la existencia de
patrones de uso compartidos entre comunidades,
probablemente asociados a su disponibilidad,
versatilidad funcional y alto valor sociocultural.
De forma similar, Otoba parvifolia (Myristicaceae)
es ampliamente aprovechada por sus múltiples
aplicaciones en categorías comestible, medicinal,
artesanal e industrial, con un alto “interés
comercial”, lo que refuerza su rol sociocultural
y económico local (López et al., 2017). De igual
manera Matisia cordata (Malvaceae) se destina al
uso artesanal, mientras que Inga edulis (Fabaceae)
y Micropholis melinoniana (Sapotaceae) presentan
usos tanto comestibles como medicinales.
En el caso de Inga edulis esta especie es relevante
por ser nativa de la Amazonía, es valorada por sus
frutos comestibles de alta calidad nutricional y
sus múltiples aplicaciones agroforestales, además
de su importancia en prácticas educativas y de
restauración ambiental (Oliveira et al., 2024)
persistencia de conocimientos etnobotánicos
arraigados y el valor de estos PFNM como bienes
estratégicos para el desarrollo sostenible y la
bioeconomía local.
En cuanto a la valoración y comercialización
económica de los productos forestales no
maderables (PFNM), se comparan los precios de
algunas especies que también se ofertan en otros
sectores, independientemente de su abundancia.
Entre ellas se encuentran: Otoba parvifolia (savia),
$2; Pourouma cecropiifolia (racimo), $1,65; e Inga
edulis (guaba), $0,30. A diferencia, el estudio de
Villavicencio et al. (2024), reporta valores distintos
para estos productos: Otoba parvifolia (látex), $15;
Pourouma cecropiifolia (racimo), $0,33; e Inga
edulis (guaba), $0,25. Estas diferencias, como
señala el autor, pueden atribuirse a factores como
el lugar de compra, el tipo de vendedor y la época
del año. En conjunto, estos hallazgos permiten
comprender mejor la complejidad del mercado de
los PFNM y constituyen una base para orientar
futuras investigaciones y decisiones de manejo
sostenible.
En la misma línea, al comparar el precio promedio de
las especies Bactris gasipaes (USD 3,64) y Euterpe
precatoria (USD 2,65) en la comunidad Cofán
respecto a los valores de uso reportados en las
comunidades de Valladolid, donde ambas especies
Ulloa et al., 2021). Esta variación podría atribuirse
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Beltrán, A., Pallo, E., Zamora, J. (2026). Valoración y comercialización de productos forestales no maderables en Cofán
Bermejo, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 39-52. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2510
a factores como la disponibilidad local, la demanda
regional o las condiciones de comercialización en
los respectivos mercados.
En relación al valor económico de uso directo de
los productos forestales no maderables (PFNM)
en la Reserva Ecológica Cofán Bermejo (Tabla
considerando once especies de uso comestible.
Valor que resulta considerablemente menor al
obtenido por Peralta-Kulik et al. (2023) en el
Bosque Atlántico del Alto Paraná, donde se
de uso ornamental. La diferencia puede atribuirse
al tipo de uso priorizado, ya que los productos
ornamentales suelen tener mayor valor comercial
unitario, así como a factores de acceso al mercado,
densidad poblacional y condiciones ecológicas
distintas entre ambas regiones. Estos contrastes
criterios de valoración económica en función del
uso y del contexto socioambiental (Peralta-Kulik
et al., 2023).
CONCLUSIONES
Los resultados obtenidos permitieron caracterizar
la estructura, abundancia y valor de uso de los
productos forestales no maderables (PFNM) en
la Reserva Ecológica Cofán Bermejo, destacando
especies clave como Iriartea deltoidea, Oenocarpus
bataua y Otoba parvifolia por su alta frecuencia
de uso y relevancia económica. La mayoría de
los individuos se concentra en clases diamétricas
jóvenes, lo que sugiere un buen potencial de
regeneración y aprovechamiento sostenible.
La estimación del valor económico directo por
hectárea evidencia la contribución tangible de
los PFNM a los medios de vida locales y a los
servicios ecosistémicos que ofrece el bosque,
constituyéndose en una base técnica para orientar
e implementar estrategias de manejo forestal
comunitario bajo principios de bioeconomía.
Aunque las estimaciones monetarias obtenidas
son sólidas, deben considerarse aproximaciones
que no abarcan la totalidad de bienes y servicios
provistos por el ecosistema. Aun así, los valores
del bosque y refuerzan la urgencia de que dicha
información económica sea conocida y utilizada
por los distintos actores sociales e institucionales.
Resulta fundamental que estos datos se traduzcan
en políticas públicas, programas de conservación
y decisiones concretas orientadas a la restauración
ecológica.
procesos de valoración económica integral del
bosque, que incluyan tanto los PFNM como otros
servicios ecosistémicos aún no abordados. Aplicar
metodologías comparables permitirá reducir vacíos
de información y generar herramientas útiles para
la toma de decisiones a nivel local, regional y
nacional.
basada en información técnica, valoración
económica y participación comunitaria es clave
para garantizar la sostenibilidad de los recursos
naturales y el bienestar de las poblaciones que
dependen de ellos.
AGRADECIMIENTO
Este trabajo forma parte de los resultados de un
proyecto de titulación dirigido por la autora Andrea
Beltrán desde la Universidad Estatal Amazónica
(UEA). Nuestro agradecimiento a la Comunidad
Cofán Bermejo por su apoyo durante la etapa
de trabajo de campo, así como a los propietarios
de los centros de venta de productos forestales
no maderables de Lago Agrio que compartieron
información valiosa sobre los precios de mercados
de los productos reportados en esta investigación.
CONTRIBUCIÓN DE AUTORES
A. B., Conceptualización, metodología, validación,
escritura, revisión y edición.
E. P., Conceptualización, metodología, validación,
investigación, recursos, escritura borrador.
J. Z., Conceptualización, metodología, validación,
investigación, recursos, escritura borrador.
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Bosques Latitud Cero 16(1), 53-66. 2026
https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2565
Publicado por la Universidad Nacional de Loja,
bajo licencia Creative Commons 4.0
Formulación de un herbicida ecológico a base de Theobroma cacao L. e hidróxido
de potasio
Formulation of an ecological herbicide based on Theobroma cacao L. and
potassium hydroxide
Davis Bonilla Luzón
1
*
1. Universidad Técnica de Machala, Carrera de Ingeniería Ambiental,
Machala, Ecuador
2. Universidad Técnica de Machala, Grupo de Investigación de Aplicaciones
Electroanalíticas y Bioenergía, Carrera de Ingeniería Química, Machala,
Ecuador
*Autor para correspondencia: asarmient3@utmachala.edu.ec
RECIBIDO: 26/08/2025 ACEPTADO: 23/10/2025
RESUMEN
El uso excesivo de herbicidas sintéticos genera impactos negativos en la salud humana, la biodiversidad
y la calidad del suelo. En Ecuador, la dependencia de estos productos ha ido en aumento, lo que plantea
la necesidad de generar alternativas sostenibles. Este estudio tuvo como objetivo formular un herbicida
ecológico a base de mucílago de Theobroma cacao L. fermentado y la incorporación de hidróxido
de potasio obtenido de cáscaras de banano. La metodología comprendió: recolección y fermentación
del mucílago con Saccharomyces cerevisiae; obtención de KOH mediante calcinación, extracción y
conversión química; formulación de distintos tratamientos combinando mucílago y KOH; y evaluación
en campo sobre tres especies de arvenses dominantes: Digitaria ciliaris (Retz.) Koeler, Centratherum
punctatum Cass., y Cuphea strigulosa Kunth. Se midió cobertura, biomasa, grado de afectación y
y T3 (75 % mucílago + KOH) fueron los más efectivos, alcanzando hasta 91 % de control en Digitaria
ciliaris (Retz.) Koeler, mientras que Cuphea strigulosa Kunth mostró mayor resistencia. Además, el
producto no afectó negativamente las propiedades del suelo y, en algunos casos, incrementó carbono y
representando una alternativa viable para el manejo agroecológico de arvenses y la reducción del uso de
herbicidas sintéticos.
Herbicida ecológico, Mucílago de cacao, Hidróxido de potasio, Theobroma cacao L, arvenses
PUBLICADO: 05/01/2026
54
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Bonilla, D., Sarmiento, A., Maza, J., Romero, H. (2026). Formulación de un Herbicida Ecológico a Base de Theobroma
cacao L. e Hidróxido de Potasio. Bosques Latitud Cero, 16(1), 53-66. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2565
ABSTRACT
biodiversity, and soil quality. In Ecuador, dependence on these products has increased, highlighting
the need for sustainable alternatives. This study aimed to formulate an ecological herbicide based on
fermented Theobroma cacao L. mucilage combined with potassium hydroxide derived from banana
peels. The methodology included: collection and fermentation of cacao mucilage with Saccharomyces
cerevisiae; extraction and chemical conversion of KOH from banana peel ash; formulation of treatments
Digitaria
ciliaris (Retz.) Koeler, Centratherum punctatum Cass., y Cuphea strigulosa
assessed through visual damage, weed coverage, biomass, and soil properties before and after application.
Results showed that fermented mucilage produced high levels of organic acids and potassium capable
of inducing phytotoxicity. Treatments T0 (100 % mucilage) and T3 (75 % mucilage + KOH) were
Digitaria ciliaris (Retz.) Koeler, whereas Cuphea
strigulosa
treatments increasing carbon and organic matter content. The study concludes that the ecological
alternative for weed management and reducing reliance on synthetic herbicides.
Keywords: Ecological herbicide, Cacao mucilage, Potassium hydroxide, Theobroma cacao L, Weeds
INTRODUCCIÓN
Los agroecosistemas integran componentes
bióticos y abióticos para la producción de
alimentos, incluyendo cultivos, suelo, agua y
clima. El manejo agroecológico busca reducir la
dependencia de agroquímicos y promover prácticas
sostenibles, como el reciclaje de nutrientes y la
conservación de la biodiversidad, enfocándose en
la transición hacia una agricultura sustentable que
mejora la salud del suelo y optimiza las funciones
de los ecosistemas. (Muentes Rodríguez et al.,
2023; Saenz Lituma, 2025)
La expansión de monocultivos y la agricultura
sintéticos, afectando negativamente a los
ecosistemas. En este contexto, los bioherbicidas
surgen como una alternativa sostenible, reduciendo
la dependencia de estos productos químicos y
contribuyendo a la preservación de la salud del
suelo, la calidad del agua y la biodiversidad,
elementos clave para el equilibrio ecológico (Nath
et al., 2024; Petraki et al., 2024).
A nivel mundial, los herbicidas representan el 47,5
% de los 2 millones de toneladas de pesticidas
aplicados anualmente (Sharma et al., 2019). El
glifosato, con ventas superiores a 1 500 millones
de dólares y una proyección de 2 000 millones en
cinco años, es el más utilizado, lo que equivale
a más de 40 000 toneladas de ingrediente activo
(Velasco Aguiar, 2024). Su uso ha aumentado
la productividad agrícola, pero se asocia con
problemas de salud como infertilidad y daños
renales y neurológicos. En Francia, los niveles de
glifosato en la orina de los agricultores pueden
Carmona et al., 2020).
En Ecuador, la FAO (2022) reporta que la
importación de herbicidas aumentó de 7 634
toneladas en 2000 a 14 215 en 2022, evidenciando
una creciente dependencia. El Instituto Nacional
de Estadística y Censos (2021) indica que el 79,6
% de los cultivos transitorios y el 56,5 % de los
permanentes utilizan insumos químicos. En la
provincia de El Oro, los pesticidas se aplican con
mayor frecuencia y toxicidad que la recomendada,
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lo que incrementa los riesgos ambientales y de
salud.
A pesar de las evidencias de impacto, los estudios
sobre estrategias sostenibles para el manejo
de malezas son limitados. Se han explorado
alternativas ecológicas como extractos de aceite
de clavo, vinagre de madera(Chu et al., 2022) y
productos derivados de subproductos agrícolas.
Un ejemplo relevante es el mucílago de cacao,
un residuo de Theobroma cacao L., que contiene
compuestos orgánicos y nutrientes con potencial
herbicida (Marín Cuevas et al., 2024).
Por otro lado, Pesticide Research Institute (2015),
indica que el hidróxido de potasio altera el
equilibrio ácido-base celular y provoca la muerte
de las malezas. Además, los compuestos fenólicos
y alelo químicos presentes en las cáscaras y hojas
de banano inhiben la germinación y el crecimiento
de especies indeseadas, contribuyendo a reducir la
dependencia de agroquímicos sintéticos, (Roy et
al., 2006; Wani y Dhanya, 2025).
Este estudio tiene como objetivo formular un
herbicida ecológico a base de mucílago de
Theobroma cacao L. e hidróxido de potasio,
para el control de arvenses en cultivos agrícolas.
Los resultados se centrarán en: i) caracterizar
el mucílago de Theobroma cacao L. como
ingrediente activo en la formulación del herbicida,
combinándolo con hidróxido de potasio derivado
de cobertura de malezas en transectos y la biomasa
verde, aplicando ANOVA y la prueba de Tukey
tratamientos, así como evaluar visualmente su
impacto sobre Digitaria ciliaris (Retz.) Koeler,
Centratherum punctatum Cass., y Cuphea
strigulosa Kunth, especies dominantes de la
zona; iii) analizar el efecto del herbicida sobre
aplicación.
MATERIALES Y MÉTODOS
Área de estudio
La investigación se desarrolló en dos escenarios.
El primero, correspondiente a la formulación del
herbicida ecológico, se realizó en el laboratorio
de electroquímica de la Facultad de Ciencias
Químicas y de la Salud de la Universidad Técnica
de Machala (UTMACH), ubicada en la Avenida
Panamericana Km 5½, vía a Pasaje, con un
clima cálido (temperaturas entre 26 °C y 31 °C
y precipitación anual de 257,7 mm). El segundo
escenario, para la aplicación y evaluación del
Tomás, a 700 metros de Galayacu, en la parroquia
Casacay, cantón Pasaje, con una temperatura media
anual de 24 °C, precipitación promedio de 943 mm
y humedad relativa del 73 % (Figura 1).
Tomas”
Materiales y reactivos
Entre los equipos y materiales empleados en la
investigación se incluyen: molino mecánico,
analítica, tamizador, mortero, vasos de
10, centrifugador, refractómetro digital y tubos de
ensayo. Los reactivos utilizados durante la fase
experimental fueron Saccharomyces cerevisiae,
agua destilada, azúcar, fosfato de amonio y ácido
clorhídrico.
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Metodología
La investigación se desarrolló con un enfoque
experimental y cuantitativo. El diseño experimental
evaluó el efecto de las variables concentración de
mucílago, tiempo de fermentación y proporción de
de arvenses. El enfoque cuantitativo permitió
medir parámetros clave, como la capacidad
de quema y el índice de control. Además, se
técnicas de análisis para caracterizar el producto
El proceso de producción y evaluación del
herbicida ecológico constó de las siguientes
etapas: Escenario de laboratorio: i) recolección y
selección de la materia prima; ii) formulación del
herbicida ecológico, que incluyó la fermentación
del mucílago de cacao y la obtención de hidróxido
de potasio a partir de cáscaras de banano.
del herbicida ecológico; e iv) análisis del efecto
continuación, se presenta un diagrama que ilustra
el proceso estructural de la investigación (ver
Figura 2).
Figura 2. Diagrama de Flujo del Proceso de
Producción y Evaluación del herbicida Ecológico
Recolección y selección de la materia prima
Para obtener el mucílago de cacao se utilizó la
variedad Colección Castro Naranjal 51 (CCN-
51). El proceso comenzó con la recolección de
frutos en su óptimo estado de madurez, lo que
garantiza un producto de alta calidad. Luego,
inclinada de decantación, permitiendo que el
mucílago se separara naturalmente por gravedad
hacia un sistema de tuberías, canalizándolo al
contenedor de recolección. A partir de 164 kg de
frutos frescos se obtuvieron 30 L de mucílago, que
fueron almacenados a 24 °C. El KOH se extrajo
de 13,23 kg de cáscaras de banano residual de la
de KOH.
Formulación del herbicida ecológico
Fermentación del mucílago de Theobroma
cacao L.
En esta fase se optimizaron las condiciones
para favorecer el crecimiento de Saccharomyces
cerevisiae, levadura clave en la transformación
de los compuestos del mucílago. Se preparó
una solución con 200 mL de agua destilada, 50
g de sacarosa como fuente de carbono y 1 g de
fósforo. Se incorporaron 5 g de S. cerevisiae,
un microorganismo no patógeno comúnmente
presentes en el mucílago. Según la normativa
ecuatoriana vigente, no fue necesaria aprobación
ética ni de bioseguridad, ya que no se emplearon
materiales de riesgo biológico. La mezcla se
homogeneizó con el mucílago y se incubó a 25
°C, con 70 % de humedad relativa y en oscuridad,
bajo condiciones controladas para garantizar
contaminación.
La fermentación se desarrolló en dos fases: una
anaeróbica de 72 horas seguida de una aeróbica de
96 horas, durante la cual el fermentador se cubrió
Se realizaron cuatro muestreos para evaluar
la dinámica temporal de los azúcares totales
(ATC) y la variación del pH durante la actividad
microbiana. Los muestreos se realizaron en tres
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momentos a lo largo de siete días consecutivos:
día 1 (29 de abril), día 2 (02 de mayo) y día 3
(05 de mayo), con intervalos de 24 horas. Esto
permitió registrar la evolución de las variables
bajo condiciones controladas de temperatura y
levadura y otros sólidos, obteniendo ácido acético
Estadísticamente, el procesamiento de datos
se efectuó en OriginPro 2022 (OriginLab
Corporation, USA), aplicando una regresión
polinómica cuadrática para el ajuste de curvas con
entre los días de muestreo se analizaron mediante
un ANOVA de una vía, complementado con la
prueba post hoc de Tukey (p < 0,05). Asimismo,
la relación entre el contenido de azúcares (ATC)
correlación de Pearson (r) para determinar la
fuerza y dirección de su asociación lineal.
Obtención de hidróxido de potasio (KOH) a
partir de cáscaras de banano
El proceso para obtener hidróxido de potasio
(KOH) comenzó con el secado de cáscaras de
banano a 103 °C durante 48 h, según la norma
ASTM (2024), para reducir su humedad. Luego, el
material seco se trituró en un molino, obteniéndose
1 114 g de polvo, que se calcinó a 450 °C durante
2 horas, produciendo 200 g de residuo sólido.
Este residuo se mezcló con 800 mL de HCl 2 M y
y concentró por evaporación a 140 °C durante 10
horas, obteniendo 250 g de cristales de carbonato
mediante hidrólisis, disolviendo los cristales en
223 mL de agua destilada. Durante esta reacción,
que se puede representar químicamente, según la
ecuación 1.
(1)
La reacción liberó CO
2
, evidenciando la
transformación. La solución resultante se evaporó
nuevamente a 140 °C durante 10 h, obteniéndose
20 g de cristales de KOH.
Finalmente, la reacción entre ácido acético
según la ecuación 2.
(2)
Donde el hidróxido de potasio neutraliza al ácido
Caracterización del mucílago de cacao
Para la caracterización, se analizaron las
propiedades físicas y químicas del mucílago,
incluyendo sólidos solubles (SS), conductividad
eléctrica (CE), pH, potasio (K) y magnesio (Mg),
06-002). No se realizaron réplicas debido a que
las muestras fueron homogenizadas previamente
bajo condiciones controladas, lo que asegura
su uniformidad y minimiza la variabilidad,
especialmente en materiales líquidos o semilíquidos
mantenidos en condiciones constantes (FAO,
2004).
La concentración de sólidos solubles se determinó
mediante refractometría, que mide el índice de
refracción de la muestra, el cual varía con la
concentración de solutos, especialmente azúcares,
siendo adecuada para soluciones líquidas como el
mucílago (Zentile et al., 2024). La conductividad
eléctrica (CE) se midió con un conductímetro
calibrado con soluciones patrón de KCl, expresada
sales disueltas y la capacidad de la solución para
conducir corriente (Rebello et al., 2020). El pH se
determinó con un potenciómetro digital calibrado
la acidez o alcalinidad, factores clave para la
K y Mg se realizó mediante espectrometría de
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masas con plasma acoplado inductivamente (ICP-
MS), técnica de alta sensibilidad que permite
detectar metales en concentraciones traza con
alta precisión (Ríos Lugo y Hernández Mendoza,
2020).
Evaluación del herbicida ecológico
Se establecieron cinco tratamientos experimentales:
(i) tratamiento testigo (T0), compuesto solo por
100 % de mucílago de cacao; (ii) T1, con 50 % de
mucílago y 50 % de agua, sin KOH; (iii) T2, con 50
% de mucílago, 50 % de agua y 50 mL de solución
diluida de KOH; (iv) T3, con 75 % de mucílago, 25
% de agua y 50 mL de solución diluida de KOH; y
(v) T4, con 25 % de mucílago, 75 % de agua y 50 mL
de solución diluida de KOH. La solución de KOH
se preparó disolviendo 5 g de cristales en 1 000 mL
de agua destilada, obteniendo una concentración al
0,5 % (p/v), para reducir su corrosividad y facilitar
su manejo seguro (Basori et al., 2023). De esta
solución se extrajeron 50 mL para los tratamientos
T2, T3 y T4, según lo indicado en la Tabla 1.
Tabla 1. Formulación del herbicida ecológico por
tratamientos
mientos
Mucílago de
cacao (mL)
KOH (mL) Agua (mL)
T0 1 000 0 0
T1 500 0 500
T2 500 50 500
T3 750 50 250
T4 250 50 750
Fuente: Los autores
Diseño experimental
Para el análisis experimental, se establecieron
cuatro repeticiones por tratamiento, totalizando 20
unidades experimentales. El número de repeticiones
se determinó según criterios estadísticos para
diseño completamente al azar (DCA) en estudios de
campo. Cada repetición correspondió a un transecto
de 1 metro2, seleccionado en áreas con distribución
homogénea de arvenses, predominando Digitaria
ciliaris (Retz.) Koeler, Centratherum punctatum
Cass., y Cuphea strigulosa Kunth. Las parcelas
para facilitar su reconocimiento y manejo durante
el experimento.
Se emplearon cinco bombas de fumigación manual
tipo pulverizador, asignadas individualmente a
cada tratamiento para evitar contaminación cruzada
entre soluciones. La dosis se aplicó conforme a la
formulación del herbicida ecológico, realizando las
aplicaciones a intervalos de siete días, completando
un ciclo de tratamiento de 21 días.
Para determinar la efectividad del herbicida,
se emplearon tres métodos complementarios:
(i) evaluación visual del grado de afectación
Digitaria
ciliaris (Retz.) Koeler, Centratherum punctatum
Cass., y Cuphea strigulosa Kunth, mediante una
tratamiento de control (Marín Cuevas et al., 2024);
(ii) método de cuadrantes para la estimación de la
cobertura de arvenses en los transectos (De Stefano
et al., 2021; Loza Del Carpio y Taype Huamán,
2021); e (iii) determinación del peso de la biomasa
aérea verde (Fonseca, 2017).
En la evaluación visual del grado de afectación,
se asignó un porcentaje de efectividad basado en
la apariencia de las arvenses tras la aplicación del
especies para observar su respuesta y determinar su
susceptibilidad en tres periodos de evaluación: a los
7, 14 y 21 días posteriores, con muestreo semanal.
En cada evaluación se registró el porcentaje de
mínimo y sin control visible; 20-40 % (Regular),
con signos de estrés y persistencia de la maleza;
40-60 % (Bueno), con daño parcial; 60-80 % (Muy
bueno), con alto daño o mortalidad completa; y 80-
100 % (Excelente), con eliminación casi total de la
maleza.
La cobertura total de arvenses en los transectos se
determinó mediante una metodología combinada.
Primero, siguiendo lo propuesto por Loza Del
Carpio & Taype Huamán (2021), se establecieron
transectos de 1 m
2
divididos en 16 secciones de
25 × 25 cm, lo que permitió una observación más
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precisa de la distribución espacial de las arvenses.
la estimación de la cobertura se realizó según lo
indicado por De Stefano et al. (2021), calculando
la cobertura como el porcentaje de unidades
ocupadas en relación con el total de unidades
evaluadas, como se detalla en (3).
Cobertura de arvenses % = (NC/ NTS) *100
(3)
Donde, NC, son los números de secciones cubiertas;
NTS, es el número total de secciones y 100 es el
factor porcentual.
Para la determinación de la biomasa verde, a los
21 días posteriores a la aplicación del tratamiento
se recolectaron hojas y tallos de las arvenses
sobrevivientes en cada transecto. El material
vegetal fue pesado considerando las cuatro
repeticiones de cada tratamiento. Con los datos
obtenidos se calculó el peso total y el promedio
por tratamiento.
El análisis estadístico de los tres métodos
de evaluación se realizó en OriginPro 2022.
normalidad (Shapiro–Wilk) y homogeneidad de
varianzas (Levene). Luego, se aplicó un ANOVA
de dos vías (tratamiento × tiempo) con un nivel de
comparaciones de medias se hicieron mediante
la prueba post hoc de Tukey HSD. El grado de
afectación se presentó con curvas de tendencia y
errores estándar, la cobertura total de arvenses con
diagramas de caja, y la biomasa aérea verde con
barras ±EE, utilizando letras distintas para señalar
Evaluación pre y post aplicación sobre las
propiedades edácas.
Se analizaron 10 muestras de suelo correspondientes
a cinco tratamientos en dos momentos de
muestreo (día 0 y día 30). En cada tratamiento se
recolectaron tres submuestras aleatorias a 0–30 cm
de profundidad, las cuales se homogenizaron para
formar una muestra compuesta por tratamiento y
momento.
Las condiciones del suelo medidas fueron el pH
y la CE, utilizando un medidor multiparámetro,
con una relación suelo:agua de 1:2 (10 g de suelo
de C se determinó mediante el método de ignición,
pesando la muestra, calentándola a 600 °C en
peso correspondió al contenido de C (Boyle et
al., 2024). La MO se estimó multiplicando el
valor de C (%) por el factor 1,724 para evaluar
los efectos de los tratamientos sobre la calidad y
composición del suelo (Izquierdo Bautista Jaime
y Arévalo Hernández, 2021). Para el análisis
estadístico, se aplicó un ANOVA de medidas
repetidas (tratamiento × tiempo) con un nivel de
y representación mediante curvas comparativas
Pre–Post, integrando los resultados inferenciales
y descriptivos para mostrar los efectos del
del suelo.
RESULTADOS
cacao fermentado
revela que la dinámica de consumo de azúcares
(ATC) durante la fermentación presenta patrones
contrastantes entre las muestras, correlacionados
con la variación del pH. En las muestras 3 y 4, se
observó una fase de máxima actividad fermentativa
entre los días 2 y 4, con reducciones de azúcares
del 60 % al 69 %, coincidiendo con la caída del pH
de 4 a 3, lo que indica alta producción de ácidos
contraste, las muestras 1 y 2 mostraron un consumo
más gradual (-2 % a -20 %), con disminuciones
una fermentación más lenta, posiblemente debido a
una menor concentración de azúcares fermentables
o a menor actividad enzimática. La correlación
temporal entre la reducción de azúcares y la
la etapa crítica del proceso.
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Figura 3. Evolución de azúcares y pH por muestra con
tasas de consumo (%); máxima actividad fermentativa.
Al término de la fermentación (Tabla 2), el extracto
disueltos derivados de la degradación de azúcares y
compuestos orgánicos del mucílago. El contenido
de SS alcanzó 5,5 °Brix, coherente con el consumo
de azúcares por Saccharomyces cerevisiae y la
para la fotosíntesis y funciones enzimáticas.
extracto fermentado de mucílago
Cantidad
CE (dS/m) 0,55
SS (°Brix) 5,5
<3 411
269,4
Fuente: Los autores
tratamientos sobre las arvenses
de afectación de Digitaria ciliaris (Retz.) Koeler,
Centratherum punctatum Cass. y Cuphea strigulosa
Kunth entre los tratamientos. La magnitud del
efecto varió según la especie y el momento de
evaluación, indicando una respuesta no uniforme
de las arvenses. Digitaria ciliaris mostró la mayor
susceptibilidad, alcanzando un 91,25 ± 1,26 % de
control con T3 a los 21 días, superando el umbral
del 70 %. Centratherum punctatum se acercó al
umbral con T0 y T3, registrando un máximo de
63,00 ± 1,83 % a los 21 días. Cuphea strigulosa
tuvo la menor respuesta, sin alcanzar el umbral
en ningún tratamiento, aunque T0 y T3 mostraron
incrementos progresivos, mientras que T4 registró
el valor más bajo, 5,00 ± 1,41 %. En términos
generales, los tratamientos T3 y T0 se destacaron
como los más efectivos en las tres especies,
Figura 4. Grado de afectación (media ± Error estándar)
por tratamientos, tiempo y especie
Evaluación de la reducción de cobertura de
arvenses en transectos
La evaluación de la cobertura de arvenses en la
0,05) indicó que las diferencias variaron según
el tiempo de evaluación. A los 7 días, T0 y T3
presentaron los valores más bajos de cobertura,
la mayor cobertura (>90 %). A los 14 días, T0
mostró una reducción marcada en comparación
con el resto, mientras que T1, T2 y T4 mantuvieron
niveles elevados y similares. A los 21 días, T0 fue
(letra “a”), con una cobertura <25 %, en contraste
con T1, T2, T3 y especialmente T4, que conservaron
arvenses depende tanto del tratamiento como del
61
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mostró la mayor persistencia de arvenses.
Figura 5. Cobertura de arvenses; Prueba post-hoc
de Tukey por día y tratamiento
Determinación de la biomasa verde
entre los tratamientos (ANOVA, F(4,15) = 68,50;
las plantas depende del manejo aplicado. La
T3 presentaron los valores más bajos de biomasa
(entre 11,5–29 g), sin diferencias estadísticas
la reducción de biomasa. En contraste, T1 alcanzó
57,8 g, mostrando menor capacidad de control,
y T4 presentó la mayor acumulación de biomasa
que T0, T2 y T3 fueron los más efectivos en limitar
el crecimiento de la biomasa verde, mientras que
efectividad de T4.
Figura 6. Peso de biomasa verde a los 21 días por
tratamiento
post aplicación del herbicida
y se mantuvo estable en T1–T4, dentro del rango
neutro–ligeramente ácido. La CE se mantuvo
El C aumentó en T2 (+0,2 %), mientras que T0
MO incrementó en T2 (+0,4 %) y T3 (+0,3 %),
de compuestos orgánicos derivados del herbicida,
lo que podría mejorar la fertilidad del suelo. En
general, los resultados indican que el producto no
que algunos tratamientos, como T2 y T3, podrían
post aplicación del herbicida
DISCUSIÓN
Los resultados de la evolución de azúcares y pH
durante la fermentación evidencian diferencias
marcadas en la cinética del proceso entre las
muestras evaluadas. Las muestras 3 y 4 mostraron
un mayor periodo de actividad fermentativa
entre los días 2 y 4, con una disminución notable
azúcares superiores al 60 %, coincidiendo con
una disminución del pH de 4 a 3. Este patrón
es consistente con una elevada producción de
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ácidos orgánicos, principalmente acético y
láctico, resultado de la actividad metabólica de
Saccharomyces cerevisiae y posibles bacterias
ácido-lácticas, que transforman los carbohidratos
en compuestos orgánicos de bajo peso molecular
(Mendes Ferreira y Mendes Faia, 2020). En
cambio, las muestras 1 y 2 presentaron una
reducción más lenta de azúcares, lo que podría
asociarse a menor carga microbiana inicial o a
limitaciones en la disponibilidad de sustratos
fermentables, prolongando la fase de adaptación y
et al., 2020).
de azúcares y el descenso del pH en las muestras
es un indicador robusto del progreso fermentativo,
en concordancia con estudios previos en matrices
ricas en carbohidratos (Kamal et al., 2020). Estos
resultados indican que la etapa crítica de control
y optimización del proceso se concentra en el
intervalo de 48 a 96 horas, donde ajustes en
la temperatura, oxigenación o inóculo podrían
tratamiento aplicado y el tiempo de evaluación, con
0,001). Digitaria ciliaris (Retz.) Koeler superó el
el día 14 y con T0 al día 21, lo que coincide con
reportes sobre la sensibilidad de gramíneas anuales
a extractos alcalinos y compuestos fenólicos
derivados de residuos agroindustriales (El
Metwally et al., 2022). Centratherum punctatum
Cass., presentó una respuesta moderada,
acercándose al umbral con T0 y T3 al día 21,
mientras que Cuphea strigulosa Kunth, alcanzó
valores máximos de 49–53 % y evidenciando
cuticular, densidad estomática y capacidad de
Asimismo, la dinámica temporal reveló que T0 y
T3 fueron los más consistentes en la reducción de
cobertura y biomasa de arvenses, en contraste con
T4, que mostró una elevada persistencia (>75 %).
Estos resultados coinciden con la investigación
de Muñoz Alcívar et al. (2024), el cual demostró
que la aplicación de mucílago de cacao al 100
% alcanzó hasta un 97 % de mortalidad tras la
tercera aplicación, evidenciando la capacidad de
este subproducto para suprimir el desarrollo de
malezas. Tal efecto se atribuye a la presencia de
En términos productivos, T4 favoreció el mayor
registro de biomasa verde, seguido de T1 como
alternativa intermedia, mientras que T0, T2 y T3
compuestos fenólicos y taninos han demostrado
inhibir el crecimiento de arvenses (Hipo et al.,
2017). En contraste, T1 y T4 registraron los valores
posiblemente por concentraciones inadecuadas o
formulaciones menos estables, lo que concuerda
con estudios que destacan la importancia de la
dosis, proporciones de ingredientes y tiempos
de aplicación para maximizar la efectividad del
bioherbicida (Marín Cuevas et al., 2024; Sulistiani
et al., 2021).
Se evidencia que la aplicación del herbicida
ecológico no generó alteraciones negativas en las
el pH en rangos neutros–ligeramente ácidos y la
CE en niveles estables, lo que descarta riesgos de
T3, lo que sugiere un posible aporte de compuestos
orgánicos provenientes del bioherbicida,
capacidad de retención de agua y la disponibilidad
de nutrientes. Estos hallazgos son coherentes
con estudios previos que indican que insumos
orgánicos o formulaciones biológicas, además de
ejercer control sobre las malezas, pueden mejorar
indicadores de calidad del suelo y favorecer la
actividad microbiana (Hefner et al., 2024).
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cacao L. e Hidróxido de Potasio. Bosques Latitud Cero, 16(1), 53-66. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2565
El K aumenta la capacidad de intercambio catiónico
(CEC), lo que favorece la retención de nutrientes
esenciales y mejora su disponibilidad. Su presencia
adecuada optimiza la estructura del suelo,
promoviendo una mejor aireación y retención de
agua, creando un ambiente más favorable para el
desarrollo de los sistemas radiculares (Poonpakdee
et al., 2025). Lo que resalta la innovación de
este estudio y lo diferencia de otros, como el de
Marín Cuevas et al. (2024) y Muñoz Alcívar et
al. (2024), al utilizar KOH como complemento
al mucílago de cacao, debido a que este altera el
equilibrio ácido-base celular y provoca la muerte
de los arvenses (Pesticide Research Institute,
2015). El presente estudio guarda similitudes con
investigaciones previas en las que se han empleado
aditivos químicos como el cloruro de sodio (NaCl)
mejora del rendimiento del cacao (Santos Imbago,
2020; Vera Montoya et al., 2025).
Los bioherbicidas ofrecen a los pequeños
productores una alternativa sostenible frente a los
herbicidas sintéticos, al reducir la contaminación,
conservar la microbiota del suelo y evitar la
resistencia en malezas. Su origen biológico y
biodegradabilidad disminuyen los riesgos para la
salud y el ambiente, favoreciendo la producción
orgánica y el acceso a mercados diferenciados
(Liang et al., 2025). Además, su elaboración local
promueve la autonomía productiva y la economía
circular rural (Islam et al., 2024).
Aunque esta investigación ha demostrado
limitaciones que deben ser consideradas, como la
restricción en la escala de los resultados, ya que
el herbicida se probó solo en 20 parcelas de 1 m²,
Además, el análisis de los efectos se limitó a 21
días, lo que impide evaluar su persistencia y los
impactos ambientales a largo plazo. Para futuras
investigaciones, sería necesario ampliar el periodo
de observación a 3 meses y realizar pruebas en
diferentes cultivos y arvenses, lo que proporcionaría
una mejor comprensión de su efectividad y de sus
efectos en el suelo. También sería útil realizar un
en producción a gran escala.
CONCLUSIONES
El mucílago fermentado de Theobroma cacao
L. presentó un comportamiento fermentativo
las 48 y 96 horas, evidenciando una marcada
asociada a una elevada actividad microbiana.
Estas condiciones, junto con la acumulación de
en formulaciones herbicidas de origen biológico,
capaces de inducir estrés osmótico y alteraciones
el prototipo demostró un control diferencial sobre
las arvenses evaluadas, siendo Digitaria ciliaris
(Retz.) Koeler, la especie más susceptible con
porcentajes de control superiores al 90 %, mientras
que Cuphea strigulosa Kunth mostró la mayor
resistencia, lo que evidencia que la efectividad
depende tanto de la especie como de la dosis y
el tiempo de exposición, destacando la necesidad
de optimizar la formulación para garantizar un
espectro de acción más amplio. Finalmente, la
aplicación del herbicida no generó efectos adversos
parámetros críticos como el pH y la conductividad
eléctrica y mostrando incrementos de carbono
y materia orgánica en algunos tratamientos, lo
la calidad del suelo y favorecer su sostenibilidad
agroecológica.
Este estudio revela que el herbicida formulado
tiene un gran potencial para los cultivos de cacao
tradicionales, donde el control de malezas es un
desafío. Al incorporar materiales orgánicos como
el mucílago de cacao y las cáscaras de banano, se
presenta una alternativa sostenible a los herbicidas
sintéticos, lo que mejora las condiciones del suelo.
Aunque las pruebas se llevaron a cabo en un clima
cálido y húmedo en Galayacu, Pasaje (Ecuador),
los resultados indican que podría ser aplicable en
otras regiones tropicales con condiciones similares.
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Bonilla, D., Sarmiento, A., Maza, J., Romero, H. (2026). Formulación de un Herbicida Ecológico a Base de Theobroma
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CONTRIBUCIÓN DE AUTORES
B.D., Conceptualización, metodología, validación,
análisis formal, investigación, recursos, curación
de datos, escritura borrador
S.A., Conceptualización, metodología, validación,
análisis formal, investigación, recursos, curación
de datos, escritura borrador.
M.J., Escritura revisión edición, visualización,
supervisión, administración del proyecto.
R.H., Escritura revisión edición, visualización,
supervisión, administración del proyecto.
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Publicado por la Universidad Nacional de Loja,
bajo licencia Creative Commons 4.0
ciudad de Loja, Ecuador
Symptomatological evaluation of the phytosanitary status of the urban trees in the
city of Loja, Ecuador
*
1. Carrera de Ingeniería Agronómica, Universidad Nacional de Loja, Loja,
Ecuador
2. Carrera de Ingeniería Forestal, Universidad Nacional de Loja, Loja, Ecuador
*Autor para correspondencia: paulina.fernandez@unl.edu.ec
RECIBIDO: 21/10/2025 ACEPTADO: 14/12/2025
RESUMEN
longevidad y la provisión de servicios ecosistémicos. Por ello, este estudio tuvo como objetivo realizar
una evaluación sintomatológica en los árboles urbanos de la ciudad de Loja. Para ello, se evaluaron
en fuste, hojas y ramas. Se comparó la incidencia sintomatológica según la procedencia de las especies
y se analizó la relación entre familias botánicas y los tipos de síntomas observados. Los resultados
mostraron una mayor frecuencia de síntomas en especies exóticas (72,67 %) respecto de las nativas
(61,69 %), destacándose tumores, cancros, exudados y muerte regresiva. Las plagas más frecuentes
fueron hormigas, cochinillas y barrenadores. El fuste fue el órgano más afectado, seguido por hojas y
Salicaceae, Fabaceae y Malvaceae registraron mayor presencia de síntomas relacionados con pudriciones
y muerte regresiva. En contraste, Euphorbiaceae, Proteaceae y Juglandaceae mostraron menor frecuencia
de síntomas bajo las condiciones evaluadas. En conclusión, las especies con mayor presencia de síntomas
fueron Salix babylonica, Leucaena leucocephala, Pinus radiata, Syzygium jambos, Prunus serotina y
Salix humboldtiana, mientras que Caesalpinia spinosa, Myrcianthes hallii, Castilla elastica, Tecoma
stans, Acnistus arborescens y Ficus benjamina registraron valores más bajos. Los hallazgos resaltan la
priorizando aquellas con mejor desempeño sanitario para reducir riesgos, además optimizar la gestión
del arbolado.
nativas, especies exóticas.
PUBLICADO: 05/01/2026
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Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
tosanitario del arbolado urbano de la ciudad de Loja, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 67-89. https://doi.
org/10.54753/blc.v16i1.2638
ABSTRACT
The phytosanitary condition of urban trees is essential to ensure structural stability, longevity, and the
provision of ecosystem services. Therefore, this study aimed to conduct a symptom-based evaluation
symptoms associated with potential pests and diseases in the trunk, leaves, and branches. Symptom
incidence was compared according to species origin, and the relationship between botanical families
and the types of observed symptoms was analyzed. The results showed a higher frequency of symptoms
in exotic species (72.67 %) compared to native species (61.69 %), with tumors, cankers, exudates, and
dieback being the most notable. The most frequent pests were ants, scale insects, and wood-boring beetles.
greater presence of symptoms related to wood decay and dieback. In contrast, Euphorbiaceae, Proteaceae,
and Juglandaceae displayed lower symptom frequency under the evaluated conditions. In conclusion,
the species with the highest symptom presence were Salix babylonica, Leucaena leucocephala, Pinus
radiata, Syzygium jambos, Prunus serotina, and Salix humboldtiana, whereas Caesalpinia spinosa,
Myrcianthes hallii, Castilla elastica, Tecoma stans, Acnistus arborescens and Ficus benjamina showed
species selection for urban tree planting, prioritizing those with better sanitary performance to reduce
risks and optimize tree management.
Keywords: Symptomatology, forest pathology, urban trees, pest and disease management, native species, exotic
species.
INTRODUCCIÓN
constituye un indicador fundamental de su
estabilidad estructural, longevidad y funcionalidad
para proveer servicios ecosistémicos. Este estado
bióticos como plagas y patógenos, condiciones
abióticas y prácticas de manejo urbano (Coto,
2007; Saltos, 2019). En los últimos años, la
ambientales que contribuyen al cambio climático
(Georgescu et al., 2014). En este contexto, el
arbolado urbano desempeña un rol clave en las
estrategias de adaptación y mitigación, al generar
población (Romero et al., 2025).
No obstante, los árboles en entornos urbanos
enfrentan múltiples desafíos que comprometen su
salud y funcionalidad. La selección inadecuada
la incidencia de plagas y enfermedades y las
condiciones ambientales adversas del entorno
urbano contribuyen al deterioro del arbolado urbano
(Castillo Rodríguez y Ferro Cisneros, 2015). En
América Latina, diversos estudios reportan una alta
al., 2020), mientras que, en Popayán, Colombia,
especies nativas como Quercus humboldtii y
Juglans neotropica fueron afectadas por hongos
patógenos e insectos de distintos órdenes (Giraldo
Aristizábal et al., 2022). En Ecuador, Garrido
Aguilar et al. (2023) registraron que el 33,6 % del
arbolado de Ibarra presentó síntomas de plagas o
enfermedades. Sin embargo, en la ciudad de Loja no
existen evaluaciones recientes pese a su relevancia
ecológica y acelerado crecimiento urbano.
sintomatología visible constituye una herramienta
manifestaciones externas asociadas a factores
bióticos y abióticos sin necesidad de análisis
etiológicos directos (Coto, 2007). Síntomas
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Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
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org/10.54753/blc.v16i1.2638
como clorosis, resinación, marchitez, exudados,
2005). Aunque los hongos representan uno de los
grupos de patógenos más frecuentes, el concepto
de sanidad vegetal abarca también la acción de
insectos, bacterias, virus, daños mecánicos y
condiciones ambientales adversas (Urbina, 2022).
En Loja, el rápido crecimiento urbano ha
generado presiones adicionales sobre el arbolado,
evidenciadas en la falta de mantenimiento, podas
inadecuadas y ausencia de diagnósticos sanitarios
actualizados (Tello, 2012). Por lo tanto, este
estudio tuvo como objetivo realizar exclusivamente
patrones visibles de daño y establecer tendencias
de afectación entre especies, órganos, especies y
familias botánicas. Por ello, es necesario continuar
las sintomatologías encontradas no permiten
que muchos síntomas como clorosis, necrosis,
exudados o pudriciones pueden originarse tanto
por factores bióticos (hongos, bacterias, insectos)
como abióticos (estrés hídrico, compactación del
suelo, daños mecánicos o contaminación). Estos
resultados deben interpretarse como un insumo
preliminar para la gestión y el monitoreo del
arbolado urbano de Loja.
MATERIALES Y MÉTODOS
Área de estudio
La investigación se desarrolló en la zona urbana
de la ciudad de Loja, ubicada al sur del Ecuador
de 2 100 m s. n. m. El cantón Loja posee una
extensión de 1 895 km², mientras que el área
urbana abarca aproximadamente 41 km². El
clima corresponde a un régimen mesotérmico
semihúmedo, con temperatura media anual de
15 °C y una precipitación promedio de 900 mm,
alcanzando hasta 2 000 mm en sectores puntuales
(Mendieta, 2020). La ciudad presenta 91 especies
arbóreas entre nativas y exóticas, distribuidas en
parques, avenidas y campus universitario (Pucha
et al, 2023), área óptima para evaluar el estado
Figura 1. Mapa de ubicación de los parques, avenidas
y campus universitario evaluada en el estudio en la
ciudad de Loja, Ecuador
Muestreo de especies arbóreas
Para caracterizar la sintomatología visible
asociada a plagas y enfermedades en el arbolado
urbano de Loja, Ecuador, se desarrolló un estudio
observacional transversal en tres ambientes de
localización: parques, avenidas y el campus de la
Universidad Nacional de Loja donde se concentra
una parte representativa del arbolado de la
ciudad. Este enfoque se basó en metodologías
internacionales de evaluación sintomatológica y
diagnóstico visual aplicadas en sanidad vegetal
urbana (Ferrini & Fini, 2011; Paap et al., 2017).
El inventario general del arbolado urbano de la
ciudad de Loja reportó 91 especies (Pucha et
al., 2023). Para este estudio se seleccionaron
las 50 especies más abundantes, incluyendo
la representatividad del análisis. Esta decisión
metodológica respondió a dos criterios: La
frecuencia relativa de cada especie dentro del
inventario, priorizando aquellas que conforman la
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Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
tosanitario del arbolado urbano de la ciudad de Loja, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 67-89. https://doi.
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mayor parte del arbolado urbano; y, la necesidad
de contar con poblaciones mínimas que permitan
realizar comparaciones entre grupos taxonómicos.
Las especies con muy pocos individuos (<10
árboles en toda la ciudad) fueron excluidas, dado
que tamaños muestrales reducidos limitan la
interpretación estadística y pueden generar sesgos
en la estimación de la incidencia sintomatológica.
En cada una de las 50 especies seleccionadas
se evaluó aproximadamente el 30 % de los
individuos censados; en aquellas con poblaciones
pequeñas, pero dentro del grupo seleccionado
(<10 árboles por sitio), se inspeccionó el 100 %
de los ejemplares disponibles.
En total se evaluaron 5 129 individuos,
distribuidos en parques (2 884), avenidas (1 798)
y campus universitario (447). La Tabla 1 presenta
el número de individuos muestreados por especie,
procedencia (nativa o exótica) y el ambiente de
localización.
La selección de los árboles se realizó mediante
números aleatorios reproducibles, estableciendo
una distancia mínima de 50 metros entre individuos
seleccionados para evitar autocorrelación espacial
(Fortin y Dale, 2005). Este procedimiento responde
a la necesidad de cubrir las especies con mayor
peso ecológico y social en la ciudad y se ajusta a
estándares que priorizan la evaluación de taxones
(Paap et al., 2017; Tubby & Webber, 2010).
Además, el enfoque sintomatológico adoptado
presencia y distribución de daños visibles sin
coherente con los objetivos y alcances del estudio.
Tabla 1. Lista de especies seleccionadas del arbolado urbano de la ciudad de Loja.
Nro . Código Familia Origen N° Individuos
1
Acacia dealbata A. Cunn.
acde Fabaceae Exótica 28
2
Acacia mearnsii De Wild.
acmea Fabaceae Exótica 11
3
Acacia melanoxylon R. Br.
acmel Fabaceae Exótica 176
4
Acnistus arborescens (L.) Schltdl.
acar Solanaceae Nativa 11
5
Alnus acuminata Kunth
alac Betulaceae Nativa 410
6
Caesalpinia spinosa (Molina) Kuntze
casp Fabaceae Nativa 7
7
Callistemon lanceolatus (Sm.) Sweet
cala Myrtaceae Exótica 210
8
Callistemon salignus Sm.
casa Myrtaceae Exótica 8
9
Castilla elastica Cerv.
cael Moraceae Exótica 12
10
Casuarina equisetifolia J.R. Forst. & G. Forst.
caeq Casuarinaceae Exótica 55
11
Cedrela montana Moritz ex Turcz.
cemo Meliaceae Nativa 100
12
Cedrela odorata L.
ceod Meliaceae Nativa 39
13
Ceiba trischistandra (A.Gray) Bakh.
cetr Malvaceae Nativa 26
14
Chionanthus pubescens Kunth
chpu Oleaceae Nativa 55
15
Cupressus macrocarpa Hartw.
cuma Cupressaceae Exótica 310
16
Eriobotrya japonica (Thunb.) Lindl.
erja Rosaceae Exótica 35
17
Erythrina edulis Pos.-Arang.
ered Fabaceae Nativa 30
18
Eucalyptus globulus Labill.
eugl Myrtaceae Exótica 46
19
Eucalyptus saligna Sm.
eusa Myrtaceae Exótica 39
20
Eucalyptus sp.
eusp Myrtaceae Exótica 11
21
Euphorbia cotinifolia L.
euco Euphorbiaceae Nativa 8
22
Ficus benjamina Willd.
Moraceae Exótica 14
71
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
tosanitario del arbolado urbano de la ciudad de Loja, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 67-89. https://doi.
org/10.54753/blc.v16i1.2638
Nro . Código Familia Origen N° Individuos
23
Fraxinus americana L.
fram Oleaceae Exótica 30
24
Fraxinus chinensis Roxb.
frch Oleaceae Exótica 388
25
Grevillea robusta A.Cunn. ex R.Br.
grro Proteaceae Exótica 31
26
Handroanthus chrysanthus (Jacq.) S.O.Grose
hach Bignoniaceae Nativa 7
27
Inga edulis Mart.
ined Fabaceae Nativa 11
28
Jacaranda mimosifolia D.Don
jami Bignoniaceae Nativa 476
29
Juglans neotropica Diels
june Juglandaceae Nativa 10
30
Lafoensia acuminata (Ruiz & Pav.) DC.
laac Lythraceae Nativa 94
31
Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit
lele Fabaceae Exótica 65
32
Magnolia grandiora L.
magr Magnoliaceae Exótica 28
33
Morus alba L.
moal Moraceae Exótica 41
34
Myrcianthes hallii (O.Berg) McVaugh
myha Myrtaceae Nativa 9
35
Phoenix canariensis Chabaud
phca Arecaceae Exótica 46
36
Pinus patula Schiede ex Schltdl. & Cham.
pipa Pinaceae Exótica 13
37
Pinus radiata D.Don
pira Pinaceae Exótica 10
38
Populus nigra L.
poni Salicaceae Exótica 36
39
Pouteria lucuma (Ruiz & Pav.) Kuntze
polu Sapotaceae Nativa 17
40
Prunus serotina Ehrh.
prse Rosaceae Exótica 15
41
Psidium guajava L.
psgu Myrtaceae Nativa 10
42
Salix babylonica L.
saba Salicaceae Exótica 26
43
Salix humboldtiana Willd.
sahu Salicaceae Exótica 1178
44
Sambucus nigra L.
sani Adoxaceae Exótica 31
45
Sapindus saponaria L.
sasa Sapindaceae Nativa 12
46
Schinus molle L.
scmo Anacardiaceae Nativa 360
47
Syzygium jambos (L.) Alston
syja Myrtaceae Exótica 18
48
Tecoma stans (L.) Juss. ex Kunth
test Bignoniaceae Nativa 18
49
Vachellia macracantha Humb. & Bonpl. ex Willd.
vama Fabaceae Nativa 407
50
Washingtonia robusta H.Wendl.
waro Arecaceae Exótica 101
observación visual sistemática y estandarizada,
registrando la presencia o ausencia de síntomas
en tres órganos principales: hojas, ramas y fuste.
descripciones estandarizadas (Sinclair & Lyon,
2005; Paap et al., 2017), complementada con la
Guía ilustrada de salud de árboles (Boa, 2008) y
Las categorías de síntomas evaluadas incluyeron
clorosis y manchas foliares (decoloración
interveinal, generalizada o necrosis delimitada
con o sin halo), tumores y agallas, cancros,
pústulas y exudados, muerte regresiva de ramas,
pudrición del tronco y pudrición de ramas, las
cuales corresponden a manifestaciones visibles
comúnmente asociadas a factores bióticos y
únicamente en función de la sintomatología
causal, en concordancia con el enfoque del estudio.
Las especies se agruparon de acuerdo con su
procedencia (nativa o exótica) con el propósito de
evaluar diferencias en la frecuencia y distribución
de síntomas, manteniendo la coherencia con los
estandarizada en la que se registró la especie, el
número de individuos, el órgano afectado, el tipo
de síntoma observado, la descripción morfológica,
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Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
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Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
tosanitario del arbolado urbano de la ciudad de Loja, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 67-89. https://doi.
org/10.54753/blc.v16i1.2638
imágenes por individuo: copa completa, detalle del
síntoma y contexto del sitio). Este procedimiento
aseguró uniformidad en la evaluación visual y
permitió validar la consistencia de los registros
durante el análisis.
Determinación de la incidencia
La incidencia de cada síntoma se calculó como la
proporción o porcentaje de individuos afectados
respecto al total evaluado, aplicando la ecuación 1:
I (%) = x100
(1)
Donde:
I: incidencia del síntoma visible;
n: número de árboles con el síntoma o daño;
N: número total de árboles evaluados (James,
1971; Saltos, 2019).
En los casos en que un mismo árbol presentó
múltiples síntomas, se construyó una matriz binaria
árbol × síntoma (0 = ausencia; 1 = presencia), lo
que permitió analizar patrones de coocurrencia
sintomatológica y las asociaciones entre especies,
órganos afectados y categorías sintomáticas
(Legendre & Legendre, 2012). Este procedimiento
se ajusta al enfoque sintomatológico del estudio,
evitando la interpretación etiológica directa y
centrando el análisis en la distribución y frecuencia
de manifestaciones visibles.
Análisis de datos
El análisis de la información se desarrolló de forma
descriptiva, comparativa y multivariada. En primer
lugar, se calcularon estadísticas descriptivas de la
incidencia de síntomas y presencia de plagas por
especie, procedencia (nativa o exótica), órgano
afectado (fuste, ramas, hojas) y familia botánica.
Para analizar la relación entre la sintomatología
registrada y las familias botánicas, se aplicó un
Análisis de Componentes Principales (PCA, por
sus siglas en inglés), con el propósito de reducir
la dimensionalidad de los datos y facilitar la
interpretación de los patrones de asociación. Se
elaboró una matriz de presencia/ausencia (0 =
ausencia; 1 = presencia) y frecuencia relativa, que
vinculó los tipos de síntomas y plagas observados
con las familias botánicas presentes en el área de
estudio. Previo al ordenamiento, los datos fueron
estandarizados para compensar la variabilidad en
el número de individuos (n) por especie, evitando
así sesgos derivados de la abundancia desigual de
las muestras.
los ejes principales de variación y agrupar las
familias que compartieron similitudes en cuanto
a la frecuencia sintomatológica, evidenciando
patrones de asociación entre grupos taxonómicos y
las familias botánicas más relacionadas con
la presencia de ciertos grupos de plagas. Los
biplot y de la proporción de varianza explicada por
cada componente, sin inferencias etiológicas, lo
que contribuyó a comprender mejor la distribución
de síntomas y su relación con la diversidad
taxonómica del arbolado urbano.
El análisis de datos se realizó con Microsoft Excel
para la organización y depuración inicial de la
base de datos, y con el entorno de programación
estadística R (R Core Team, 2021) para los análisis
multivariados.
Finalmente, se determinaron los patrones de
afectación en función de la procedencia de la
especie (nativa o exótica), el tipo de síntoma
registrado, el órgano afectado y la familia
botánica, lo que permitió comparar diferencias
en la incidencia y describir tendencias ecológicas
agentes causales.
RESULTADOS
Incidencia general
En el arbolado urbano de la ciudad de Loja se
observó que las especies exóticas registraron
una mayor incidencia de síntomas asociados a
enfermedades (72,67 %), en comparación con
las especies nativas (61,69 %). De igual manera,
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Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
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la incidencia de síntomas asociados a plagas fue
más alta en las especies exóticas (71,27 %) frente
a las nativas (64,49 %) (Figura 2). Estos resultados
indican una mayor frecuencia de sintomatología
visible en las especies exóticas, lo que sugiere una
respuesta diferencial frente a los factores bióticos
presentes en el entorno urbano, sin implicar
diagnóstico etiológico.
Figura 2. Incidencia de síntomas asociados a
enfermedades y plagas en las especies nativas y exóticas
del arbolado urbano de la ciudad de Loja.
En lo concerniente a los tipos de sintomatología
asociada a posibles enfermedades, los resultados
muestran que los tumores y la clorosis o
decoloración foliar fueron las manifestaciones
visibles más frecuentes en el arbolado urbano
de la ciudad de Loja (Figura 3). Estos síntomas
fueron seguidos por exudados, muerte regresiva y
pudrición de ramas, aunque en menor proporción.
Salix babylonica presentó la mayor frecuencia de
sintomatología, con 49 % de individuos afectados.
Le siguieron Leucaena leucocephala, Pinus
radiata, Syzygium jambos, Prunus serotina y
Salix humboldtiana, las cuales registraron valores
superiores al 20 %. En contraste, Eriobotrya
japonica, Alnus acuminata y Psidium guajava
mostraron frecuencias inferiores al 10 %. La
categoría “Otras” también presentó una incidencia
reducida (menor al 10 %), mientras que el promedio
general para todas las especies se situó alrededor
del 15 %.
Estos resultados evidencian una marcada
variabilidad en la frecuencia y tipo de síntomas
entre especies, lo que señala una respuesta
diferencial frente a los factores bióticos presentes
en el entorno urbano, sin implicar diagnóstico
Figura 3. Frecuencia de categorías sintomatologías asociadas a enfermedades en especies del arbolado urbano
de la ciudad de Loja.
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Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
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La Figura 4 muestra la distribución de la
sintomatología asociada a posibles enfermedades
en distintas especies arbóreas urbanas de la ciudad
de Loja, diferenciada según la localización de los
síntomas (fuste, hojas y ramas) y su incidencia
porcentual. Se observó que Salix babylonica
presentó la mayor frecuencia de sintomatología
registrada (88 %), con manifestaciones visibles
localizadas predominantemente en el fuste. Otras
especies como Syzygium jambos, Populus nigra y
Morus alba también mostraron valores elevados
Tecoma
stans y aquellas agrupadas en la categoría “Otras”
registraron incidencias bajas, inferiores al 30 %.
En la mayoría de las especies analizadas, los
síntomas se localizaron principalmente en el fuste,
seguido por las hojas y en menor proporción por las
ramas. El promedio general de incidencia para todas
las especies evaluadas fue de aproximadamente
sintomatología visible en el arbolado urbano, sin
implicar diagnóstico etiológico.
Figura 4. Localización e incidencia de sintomatología asociada a posibles enfermedades en los árboles urbanos
de la ciudad de Loja.
En cuanto a la localización e incidencia de
sintomatología asociada a posibles enfermedades
en los árboles urbanos nativos, se observó que
Chionanthus pubescens y Erythrina edulis
registraron las mayores frecuencias, con valores
superiores al 40 %. En contraste, Handroanthus
chrysanthus y Ceiba trischistandra presentaron
incidencias bajas, cercanas o inferiores al 10 %.
En términos de localización, los síntomas se
registraron principalmente en el fuste, seguido
por las ramas y, en menor medida, por las hojas.
sintomatología visible en estructuras leñosas de
las especies nativas, sin implicar diagnóstico
etiológico. El promedio general de incidencia en
este grupo fue de aproximadamente 23 %, lo que
indica una presencia baja a moderada de síntomas
en comparación con el promedio global del
arbolado urbano (Figura 5a).
En cuanto a las especies exóticas, Salix babylonica
y Syzygium jambos presentaron las mayores
frecuencias de sintomatología registrada, con
valores cercanos al 90 % y 55 %, respectivamente.
En general, el fuste fue la parte más frecuentemente
afectada en la mayoría de las especies, seguido por
las hojas y, en menor proporción, por las ramas.
La incidencia tendió a disminuir progresivamente
en las especies restantes, con valores inferiores
al 40 % en la mayoría de los casos. La categoría
“Otras” presentó una incidencia baja, cercana
al 20 %, mientras que el promedio total para
todas las especies exóticas analizadas fue de
aproximadamente 30 % (Figura 5b).
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Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
tosanitario del arbolado urbano de la ciudad de Loja, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 67-89. https://doi.
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Figura 5. Localización e incidencia de sintomatología asociada a posibles enfermedades en los árboles urbanos,
según la procedencia: a) especies nativas y, b) especies exóticas, de la ciudad de Loja.
Asociación entre sintomatología de posibles
enfermedades y familias botánicas
El análisis de componentes principales (PCA)
aplicado para examinar la asociación entre la
sintomatología registrada y las familias botánicas
presentes en el arbolado urbano de la ciudad de
Loja mostró una distribución diferenciada de los
grupos taxonómicos en función de los síntomas
visibles. Las dos primeras dimensiones explicaron
conjuntamente el 56,2 % de la varianza total (Dim1
= 35,3 % y Dim2 = 20,9 %) (Figura 6).
La familia Pinaceae presentó una asociación
marcada con los exudados, evidenciando que
este tipo de sintomatología fue relativamente más
frecuente dentro del grupo. De manera similar, las
familias Fabaceae y Malvaceae se relacionaron
con la presencia de muerte regresiva y pudrición
del tronco, mientras que Salicaceae se asoció
principalmente con la pudrición de ramas.
Por otro lado, síntomas como pústulas foliares,
tumores y decoloración de hojas se vincularon
con diversas familias, entre ellas Betulaceae,
Moraceae, Myrtaceae, Rosaceae y Lythraceae.
Es notable que Lythraceae mostró una asociación
particularmente fuerte con la decoloración foliar,
mientras que Casuarinaceae se relacionó con la
presencia de pústulas.
En contraste, algunas familias como Euphorbiaceae,
Proteaceae y Juglandaceae se ubicaron más
alejadas de los vectores de sintomatología, lo
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Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
tosanitario del arbolado urbano de la ciudad de Loja, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 67-89. https://doi.
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que sugieren una menor frecuencia de síntomas
visibles detectados en estas familias bajo las
condiciones evaluadas. Este patrón no implica
representación de síntomas en el conjunto de datos.
La pudrición de ramas presentó la mayor
contribución dentro del PCA, con un valor
superior al 34 %, seguida de muerte regresiva
(27 %) y pudrición del tronco (19 %). Estas
categorías sintomatológicas están asociadas con
manifestaciones visibles compatibles con deterioro
del tejido leñoso. En contraste, síntomas como
tumores (9 %), decoloración foliar (6 %), exudados
(6 %) y pústulas foliares (0,5 %) mostraron una
contribución menor al patrón general de variación.
Estos resultados sugieren que la distribución
de la sintomatología no es aleatoria, sino que
familias evaluadas. En particular, las familias
predominantemente leñosas tienden a estar más
representadas en categorías relacionadas con daños
una mayor representación de síntomas foliares. No
patrones de frecuencia sintomatológica y no
etiológico (Figura 6).
Figura 6. Análisis de componentes principales (PCA) de la relación entre las enfermedades con las: a) familias
botánicas y b) especies, presentes en el arbolado urbano de la ciudad de Loja
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Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
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Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
tosanitario del arbolado urbano de la ciudad de Loja, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 67-89. https://doi.
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En lo referente a la incidencia y tipo de plagas en
los árboles urbanos de la ciudad de Loja, se registró
una alta frecuencia relativa de síntomas asociados
a la presencia de hormigas, observándose en más
del 70 % de los individuos evaluados en especies
como Psidium guajava, Caesalpinia spinosa,
Sambucus nigra e Inga edulis. El escarabajo
barrenador y los minadores de hojas también
mostraron una presencia notable, especialmente
en Leucaena leucocephala, Salix babylonica y
Syzygium jambos (Figura 7).
Por otro lado, síntomas vinculados con plagas
como cochinillas, orugas o gusanos, mosca
blanca, ácaros y pulgones presentaron frecuencias
más bajas y distribuciones más restringidas.
Las cochinillas se observaron principalmente
en Sambucus nigra, Syzygium jambos, Juglans
neotropica y Eriobotrya japonica, mientras que
las orugas y gusanos fueron registradas en Inga
edulis, Salix babylonica, Erythrina edulis, Juglans
neotropica y Eriobotrya japonica. La mosca blanca
se detectó en Erythrina edulis y Alnus acuminata;
los ácaros en Sambucus nigra, Syzygium jambos y
Eriobotrya japonica; y los pulgones en Syzygium
jambos y Salix humboldtiana (Figura 7).
La incidencia promedio general de plagas se
mantuvo relativamente baja, con un 14,5 %, siendo
Psidium guajava la especie con mayor incidencia
de menor incidencia (7 %). En conjunto, los
resultados muestran una considerable diversidad
de plagas presentes en el arbolado urbano, aunque
su manifestación visible, evaluada a través de la
incidencia sintomatológica, fue moderada.
Figura 7. Frecuencia e incidencia de sintomatología asociada a plagas en las especies del arbolado urbano de la
ciudad de Loja.
La sintomatología asociada a plagas en los
árboles urbanos de la ciudad de Loja se concentró
principalmente en el fuste, con frecuencias
superiores al 50 % en todas las especies analizadas,
alcanzando valores cercanos al 80 % en Ceiba
trischistandra, Psidium guajava y Vachellia
macracantha (Figura 8). En menor medida,
también se registraron síntomas en hojas y ramas,
aunque con menor representación relativa.
Salix babylonica presentó la mayor incidencia
de sintomatología asociada a plagas (superior
al 60 %), seguida por Inga edulis y Leucaena
leucocephala, ambas con valores por encima
del 50 %. En contraste, especies como Juglans
neotropica y aquellas agrupadas en la categoría
“Otras” registraron incidencias más bajas, con
valores inferiores al 30 %.
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Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
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El promedio general de incidencia para todas las especies estudiadas fue de aproximadamente 33 %, lo
que indica que la presencia de sintomatología vinculada a plagas es común, aunque su frecuencia varía
de manera considerable entre especies.
Figura 8. Localización e incidencia de sintomatología asociada a plagas en los árboles urbanos de la ciudad de
Loja.
Figura 9. Localización e incidencia de sintomatología asociada a plagas en los árboles urbanos, según la
procedencia: a) especies nativas y, b) especies exóticas, de la ciudad de Loja.
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Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
tosanitario del arbolado urbano de la ciudad de Loja, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 67-89. https://doi.
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En cuanto a la localización e incidencia de
sintomatología asociada a plagas en los árboles
urbanos nativos, se observó que Inga edulis,
Chionanthus pubescens y Acnistus arborescens
registraron las mayores incidencias, con valores
superiores al 48 %. En contraste, Morus alba y
Cedrela montana presentaron las incidencias más
bajas, cercanas o inferiores al 15 %. En términos de
localización, los síntomas vinculados a plagas se
registraron principalmente en el fuste, seguido por
las ramas y, en menor medida, las hojas. Este patrón
indica una mayor concentración de sintomatología
visible en las estructuras leñosas de las especies
nativas. El promedio general de incidencia en
este grupo fue de aproximadamente 34 %, lo
que representa una presencia baja a moderada de
síntomas en comparación con el promedio global
del arbolado urbano (Figura 9a).
En el caso de las especies exóticas, Salix
babylonica y Leucaena leucocephala presentaron
las incidencias más altas, con valores cercanos
al 63 % y 51 %, respectivamente. De manera
general, el fuste fue la parte del árbol donde se
registró con mayor frecuencia la sintomatología
asociada a plagas, seguido por las ramas y, en
menor proporción, por las hojas. El promedio
de incidencia para todas las especies exóticas
fue de aproximadamente 30 %, lo que evidencia
variaciones relevantes entre taxones y una
distribución no uniforme de los síntomas en este
grupo (Figura 9b).
Asociación entre las plagas y familias botánicas
El análisis de componentes principales (PCA)
aplicado para evaluar la asociación entre los
diferentes tipos de plagas y las familias botánicas
presentes en el arbolado urbano de la ciudad
de Loja mostró una distribución diferenciada
de los grupos taxonómicos en función de la
sintomatología registrada. Las dos primeras
dimensiones explicaron conjuntamente el 53,2 %
de la variabilidad total (Dim1 = 30,8 % y Dim2 =
22,4 %) (Figura 10).
Plagas como el escarabajo barrenador, la mosca
blanca y la cochinilla presentaron una mayor
contribución en la separación de las familias
Adoxaceae, Juglandaceae y Salicaceae a lo largo
del eje Dim1, lo que indica una mayor frecuencia
relativa de estos tipos de síntomas en dichas
familias. Por su parte, las hormigas y los pulgones
se asociaron principalmente con la familia
sintomatológica más marcada en este grupo.
En contraste, los minadores de hojas, ácaros y
larvas (orugas/gusanos) se ubicaron cerca del
centro del biplot, lo que sugiere una distribución
más homogénea de estos síntomas entre distintas
familias. No obstante, las larvas mostraron una
y Sapotaceae. Adicionalmente, familias como
Magnoliaceae, Euphorbiaceae, Bignoniaceae y
menor representación de sintomatología asociada
a estos grupos de insectos bajo las condiciones
evaluadas.
Las plagas que mostraron mayor contribución
relativa en el PCA fueron las hormigas (30 %), las
cochinillas (29 %) y el escarabajo barrenador (21
%), siendo las que más aportaron a la diferenciación
de las familias botánicas. Plagas como los pulgones
y la mosca blanca presentaron contribuciones
moderadas (10 % y 6 %, respectivamente). En
cambio, las larvas, los ácaros y los minadores de
hojas registraron contribuciones bajas (<5 %),
conjunto de datos (Figura 10).
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Figura 10. Análisis de componentes principales (PCA) de la relación entre las plagas: a) con las familias
botánicas y b) especies, presentes en el arbolado urbano de la ciudad de Loja.
DISCUSIÓN
incidencia de plagas y enfermedades
Los resultados muestran diferencias marcadas en la
incidencia de síntomas asociados a enfermedades
y plagas entre especies nativas y exóticas presentes
en el arbolado urbano de la ciudad de Loja. Las
especies exóticas registraron valores más elevados
tanto para enfermedades (72,67 %) como para
plagas (71,27 %), en comparación con las especies
nativas (61,69 % y 64,49 %, respectivamente).
Si bien estas diferencias no permiten inferir
especies introducidas bajo las condiciones del sitio
de estudio evaluado.
Patrones similares han sido reportados en estudios
mayor diversidad y frecuencia de síntomas
al., 2016; Hernández et al., 2021). Estas diferencias
han sido asociadas a factores como el estrés por
establecimiento, la ausencia de historial ecológico
compartido con los agentes bióticos locales y las
condiciones microclimáticas urbanas, más que
Rodríguez, 2021).
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Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
tosanitario del arbolado urbano de la ciudad de Loja, Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 67-89. https://doi.
org/10.54753/blc.v16i1.2638
En particular, se ha documentado que muchas
especies introducidas pueden responder de manera
variable al estrés urbano, dependiendo de sus
rasgos funcionales y de su capacidad de ajuste
temperaturas o compactación del suelo (Pepe
et al., 2022; Ruas et al., 2022). Estas respuestas
heterogéneas explican por qué algunas especies
introducidas muestran un desempeño adecuado,
mientras que otras presentan una mayor recurrencia
de síntomas en ambientes urbanos andinos.
El patrón observado en Loja coincide con la
hipótesis del desajuste ecológico planteada por
Tubby & Webber (2010) y retomada por Reséndiz
et al. (2024), según la cual las especies exóticas
pueden experimentar un mayor nivel de afectación
de organismos asociados es distinta a aquella
con la que han evolucionado. Aunque en este
estudio no se evaluaron mecanismos de defensa
ni procesos coevolutivos, la mayor incidencia de
síntomas en especies exóticas sugiere la existencia
de interacciones bióticas menos equilibradas en
comparación con las especies nativas.
Asimismo, investigaciones como las de Giraldo
Aristizábal et al. (2022) señalan que la expresión
de síntomas en especies introducidas suele
ser más notoria durante las primeras fases de
forma considerable de su área de distribución
original, lo cual coincide con lo observado en
varias de las especies exóticas evaluadas en Loja.
Estos resultados tienen implicaciones relevantes
especies exóticas podría afectar su desempeño a largo
plazo, incrementar los costos de mantenimiento y
elevar el riesgo de fallas estructurales. Por ello, es
funcionales y antecedentes de desempeño urbano
en la selección de especies para programas de
arborización, priorizando aquellas que muestren
buenos niveles de estabilidad y menor recurrencia
de síntomas en el contexto local.
Sintomatología de enfermedades
Las sintomatologías de cancros, clorosis,
exudados, muerte regresiva y pudrición de ramas;
son asociados a la presencia de patógenos que
producen daños en tejidos leñosos constituyen las
manifestaciones más recurrentes en el arbolado
urbano evaluado.
como una respuesta típica en árboles debilitados,
resultado de diversos factores asociados al entorno
urbano donde se desarrollan las especies (Cibrián
et al., 2001; Hernández et al., 2022). El avance de
la enfermedad afecta tanto tejidos jóvenes como
ramas de mayor edad (Alexopoulos & Mims,
1985). Además, los cancros no solo deterioran la
apariencia del arbolado, sino que comprometen
seriamente su estabilidad estructural: pueden
provocar quiebres en los puntos afectados,
levantamiento de la corteza o formación de
cavidades, aumentando el riesgo de fallas en la
madera próxima a la lesión (Boa, 2008).
Los resultados muestran coincidencias con estudios
realizados en otras ciudades latinoamericanas.
En el arbolado urbano de Ciudad de México,
los síntomas predominantes fueron manchas
foliares, clorosis, cenicillas, royas, cancros y
muerte regresiva en ramas y fuste (Reséndiz et al.,
2024). De igual manera, Posada y Ramos (2012)
reportaron que la quemazón, la clorosis y las
manchas fueron los síntomas más frecuentes en el
arbolado urbano de Bogotá, superando algunos de
ellos el 5 % de presencia.
El fuste y las hojas, tanto en especies nativas
como exóticas, mostraron mayor presencia de
y Rodríguez (2021) señalan que el follaje urbano
suele presentar numerosas afecciones fúngicas
responsables de necrosis, tizones y manchas,
Tattar (1978) y Agrios (2005) destacan que los
cancros son uno de los daños más comunes en
las ramas y el fuste de árboles sometidos a estrés
urbano. Asimismo, Arguedas (2007) documentó
severas defoliaciones provocadas por hongos en el
arbolado urbano de San José, Costa Rica, lo cual
coincide con lo observado en este estudio.
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La sintomatología registrada en el fuste (cancros)
y en las hojas (clorosis) puede presentar orígenes
tanto bióticos como abióticos. Los cancros se
asocian con frecuencia a infecciones fúngicas o
bacterianas que se desarrollan cuando el árbol ha
sido debilitado por estrés hídrico, compactación
del suelo o daños mecánicos (Arguedas y
Rodríguez, 2021). Por su parte, la clorosis foliar
de sales, contaminación atmosférica o la acción de
Thomas et al., 2016; Lodh et al., 2020). Esta
precisa del agente responsable, por lo que es
importante considerar el contexto ecológico, las
prácticas de manejo urbano y el historial sanitario
del árbol al interpretar la sintomatología.
Sintomatología según procedencia
La incidencia de sintomatología asociada a
enfermedades en el arbolado urbano mostró
diferencias marcadas según la procedencia de las
especies. Entre las nativas, Chionanthus pubescens
presentó una incidencia relativamente baja (40 %),
mientras que entre las exóticas Salix babylonica
registró la sintomatología más elevada (90 %), lo
que evidencia una mayor susceptibilidad de las
especies introducidas bajo las condiciones urbanas
de Loja.
Estos resultados coinciden con diversos estudios
que indican que las especies nativas tienden
a mostrar mayor resiliencia frente a factores
bióticos como plagas y enfermedades, debido a su
coevolución con la biota local y su adaptación a
las condiciones ambientales propias de la región.
En este sentido, Mihai et al. (2023) señalan
que Chionanthus pubescens, especie nativa
del Ecuador, presenta una elevada actividad
antioxidante y un alto contenido fenólico en hojas
y frutos, características que pueden contribuir a su
tolerancia frente al estrés biótico y abiótico.
En contraste, la susceptibilidad de Salix
babylonica especie exótica ampliamente utilizada
en arborización urbana ha sido documentada en
diversos entornos, especialmente en condiciones de
humedad elevada, compactación del suelo y daños
mecánicos, los cuales facilitan el establecimiento
de patógenos fúngicos y bacterianos (Jim, 2005).
Este patrón concuerda con lo observado en Loja,
donde esta especie presentó una alta frecuencia de
síntomas leñosos y foliares.
De forma complementaria, Sjöman et al. (2012)
y Alvey (2006) destacan que las especies nativas
suelen estar mejor adaptadas al clima, los suelos
una ventaja frente a estresores urbanos. En cambio,
las especies exóticas pueden carecer de resistencia
genética frente a los patógenos predominantes en
el nuevo ambiente, aumentando su vulnerabilidad
y la probabilidad de manifestar sintomatología
caracterizada por daños en fuste, hojas y ramas
(Nowak et al., 2004).
Asociación entre enfermedades y familias
botánicas
El análisis de componentes principales (PCA)
aplicado a la relación entre las enfermedades y
las familias botánicas del arbolado urbano de la
ciudad de Loja evidenció que la susceptibilidad
que responde a características estructurales
taxonómicos. Estos patrones refuerzan la existencia
de una organización no aleatoria en la asociación
entre síntomas y familias, lo cual coincide con
el comportamiento esperado en comunidades
vegetales sometidas a condiciones urbanas (Saltos,
2019; Legendre & Legendre, 2012).
Entre los hallazgos más relevantes se observó
que Pinaceae presentó una alta contribución al eje
principal del PCA, asociándose estrechamente con
la presencia de exudados, lo cual sugiere respuestas
frecuentes a daños vasculares y heridas exudativas,
típicas de especies con elevados contenidos
resinosos. De manera similar, las familias
Salicaceae, Fabaceae y Malvaceae mostraron
pudrición del tronco y muerte regresiva, síntomas
relacionados con deterioro avanzado del tejido
leñoso y con la acción de patógenos fúngicos y
bacterianos que afectan la conducción de savia
(Coto, 2007; Araya, 2005; Boa, 2008).
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Fernández, P., Lozano, D., Armijos-Montaño, A., Jumbo, N., Pucha, D. (2026). Evaluación sintomatológica del estado
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Por su parte, los síntomas foliares tumores, pústulas
y decoloración de hojas se registraron con mayor
frecuencia en Rosaceae, Betulaceae, Moraceae,
Myrtaceae y Lythraceae, lo que podría deberse
a particularidades morfoanatómicas del follaje,
tales como la disposición estomática, grosor de la
cutícula o tipos de compuestos fenólicos (Tattar,
1978; Agrios, 2005). En particular, Lythraceae se
relacionó estrechamente con la decoloración foliar,
la aparición de pústulas, evidenciando patrones
sintomáticos diferenciados entre familias.
En contraste, familias como Euphorbiaceae,
Proteaceae y Juglandaceae presentaron una baja
incidencia de sintomatología detectable, lo que
podría indicar una resistencia relativa asociada a
adaptaciones anatómicas de la madera, presencia
de tejidos con propiedades antifúngicas o una
menor exposición a factores predisponentes en
condiciones urbanas (Perilla-Henao y Franco-
Lara, 2013; Reséndiz et al., 2024; Martínez et al.,
2020).
Estos resultados refuerzan la idea de que las
de manera importante en la predisposición de las
especies arbóreas a ciertos tipos de enfermedades,
planteando desafíos relevantes para la gestión
preventiva en entornos urbanos diversos. La
en la susceptibilidad familiar permite seleccionar
especies con menor propensión a enfermedades
estructurales severas, favoreciendo la longevidad
del arbolado urbano, la provisión sostenida de
servicios ecosistémicos y la seguridad del espacio
público (Sjöman et al., 2012; Raum et al., 2023).
Finalmente, la agrupación de familias observada
en el PCA podría explicarse también por
taxonómica estricta. Estudios sobre la relación
entre la anatomía de la madera y la vulnerabilidad
al estrés urbano (Barotto et al., 2018; Monteoliva et
al., 2016) demuestran que especies con vasos más
pequeños y mayor densidad leñosa toleran mejor
las condiciones adversas, mientras que aquellas
con maderas más porosas como varias especies de
Salicaceae son más susceptibles a pudriciones y
daños vasculares, lo cual coincide con los patrones
registrados en este estudio.
Loja evidenció que las plagas más determinantes
fueron las hormigas, con más del 70 % de frecuencia
relativa en varias especies, seguidas de cochinillas
y barrenadores. Aunque la incidencia promedio
general se mantuvo en rangos moderados (7–22
%), el peso desproporcionado de unos pocos grupos
la diversidad de plagas, sino de su capacidad de
interacción, persistencia y asociación con factores
predisponentes del entorno urbano.
Las hormigas desempeñan un doble rol en el
arbolado: actúan como plagas directas mediante
defoliación y formación de galerías en el fuste, y
a la vez facilitan el establecimiento de cochinillas
obtener melaza. Este mutualismo insecto–insecto
fumagina (Capnodium spp.). Estos resultados
coinciden con estudios realizados en entornos
urbanos de Colombia (Herrera Clavijo, 2021)
y México (Martínez et al., 2020), donde se ha
las infestaciones de hemípteros, aumentando la
Las cochinillas se presentaron principalmente en
especies como Sambucus nigra, Syzygium jambos
y Juglans neotropica, generando deformaciones
y clorosis en ramas jóvenes. Este patrón coincide
con lo observado en Cuenca, Ecuador, donde
Planococcus citri es persistente en áreas urbanas
(Saldaña y Vera, 2019). A su vez, el escarabajo
barrenador y los minadores de hojas mostraron
mayor incidencia en especies sensibles como
Leucaena leucocephala y Salix babylonica, lo
que resalta la importancia de considerar el daño
estructural en fuste y ramas como un eje crítico de
riesgo. Hallazgos similares han sido documentados
en Juglans neotropica y Quercus humboldtii en
Colombia (Giraldo Aristizábal et al., 2022). De
igual forma, se ha señalado que Fabaceae es una
de las familias más afectadas por organismos
Hernández Guanche et al., 2022).
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el fuste fue el órgano más afectado, registrándose
más del 50 % de incidencia y alcanzando cerca del
80 % en especies como Psidium guajava y Ceiba
trischistandra. Esto refuerza que los daños leñosos
constituyen la principal amenaza estructural en
ambientes urbanos. Estudios internacionales
señalan que la compactación del suelo, la
impermeabilización, la contaminación y el calor
urbano predisponen a los árboles a infecciones y
2023). En este contexto, incluso incidencias
moderadas pueden evolucionar hacia brotes
severos cuando coexisten con factores abióticos
adversos, como advierte Raum et al. (2023).
Finalmente, la evidencia de múltiples estudios
(Gil-P et al., 2004; Samaniego-Gaxiola et al., 2008;
barrenadores no solo dañan el tejido leñoso, sino
como Fusarium solani y F. oxysporum. Este
mecanismo explica las altas incidencias de
pudrición y muerte regresiva registrada en familias
como Juglandaceae y Salicaceae, donde las heridas
generadas por los insectos facilitan la colonización
fúngica y aceleran el deterioro del tejido.
Asociación entre plagas y familias botánicas
El análisis de componentes principales (PCA)
de plagas no es aleatoria, sino que responde a
patrones asociados a las familias botánicas y
sus rasgos funcionales. Hormigas, cochinillas
y el escarabajo barrenador explicaron cerca
del 80 % de la diferenciación entre las familias,
destacándose mayor vulnerabilidad en Adoxaceae,
Juglandaceae y Salicaceae. Por otro lado, las
Solanaceae se asociaron a la interacción hormigas–
de mutualismo en la dinámica de infestaciones
urbanas.
Al ampliar la comparación con estudios regionales,
familias. En Anacardiaceae, especies como Schinus
molle (Herrera Clavijo, 2021) y S. terebinthifolia
han sido reportadas con infestaciones de psílidos
(Calophya schini) y de la avispa Megastigmus
transvaalensis, lo que evidencia la fragilidad de
especies ornamentales ampliamente plantadas en
ciudades andinas (Ferreira-Filho et al., 2015).
En Arecaceae, que dominan el arbolado urbano
de Puyo, se han documentado plagas como el
ácaro rojo (Raoiella indica) (Sarmiento Rosero,
2020) y la escama blanca del cocotero (Parlagena
bennetti), ambas consideradas amenazas crecientes
Pardey et al., 2015).
En el caso de Juglandaceae, particularmente
Juglans neotropica, los resultados coinciden con
los reportes de Colombia, donde la especie es un
hospedero sensible a hongos como Colletotrichum
y Fusarium, así como a plagas perforadoras
(Giraldo Aristizábal et al., 2022). Esta evidencia
entrada de patógenos a través de heridas.
Asimismo, Malvaceae (por ejemplo, Hibiscus)
ha sido reportada en Cuba con afectaciones
individuos (Hernández Martínez et al., 2021), un
patrón coherente con su asociación en nuestro
PCA a insectos hemípteros. De forma similar,
Myrtaceae (Syzygium jambos, Eucalyptus)
presenta susceptibilidad a psílidos, avispas de
agallas y hongos de la corteza, con incrementos
documentados en múltiples regiones de Colombia
(Herrera Clavijo, 2021).
Otras familias reportadas en la literatura
internacional, aunque no registradas en Loja, son
Oleaceae, afectada por el barrenador esmeralda
del fresno (Agrilus planipennis) (Raum et
al., 2023), y Sapindaceae/Hippocastanaceae,
susceptibles al minador de la hoja Cameraria
ohridella (Dziêgielewska et al., 2017). Estos
casos constituyen advertencias preventivas frente
al riesgo de introducción accidental de plagas
invasoras capaces de alterar drásticamente la
composición del arbolado urbano.
Factores ambientales, de manejo y
vulnerabilidad ecológica
La presencia de plagas y enfermedades en el
arbolado urbano de Loja no responde únicamente
a las características biológicas de las especies,
sino también a una combinación de factores
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ambientales y de manejo que condicionan su estado
por la compactación del suelo, la contaminación
atmosférica, la impermeabilización y el efecto
de isla de calor debilita la capacidad natural de
defensa de los árboles, haciéndolos más propensos
al ataque de insectos y patógenos (Del-Rosario et
al., 2023). A ello se suman prácticas inadecuadas
de manejo, como podas mal ejecutadas, cortes sin
sellado y ausencia de mantenimiento preventivo,
que generan heridas abiertas y facilitan la entrada
de organismos dañinos (Garrido Aguilar et al.,
2023).
Otro factor determinante es la selección poco técnica
de especies, especialmente exóticas, sin considerar
criterios sanitarios, rasgos funcionales o niveles de
adaptación ecológica. Esta problemática, también
documentada en otras ciudades latinoamericanas,
incrementa la vulnerabilidad colectiva del arbolado
y reduce su resiliencia frente a perturbaciones
urbanas (Reséndiz Martínez et al., 2024).
patrones de temperatura, precipitación y humedad,
favorece la proliferación y dispersión de plagas y
enfermedades, además de facilitar la introducción
y establecimiento de patógenos no autóctonos en
ambientes urbanos (Tubby & Webber, 2010; Paap
et al., 2017).
Estos resultados refuerzan la hipótesis del
desajuste ecológico, según la cual muchas especies
exóticas carecen de defensas coevolutivas frente
a los organismos locales, lo que incrementa su
susceptibilidad a infecciones fúngicas, daños
vasculares y ataques de insectos perforadores. En
consecuencia, su permanencia a largo plazo en el
ecosistema urbano puede verse comprometida,
afectando tanto la estabilidad estructural del
arbolado como los servicios ecosistémicos que
este proporciona.
El análisis de componentes principales (PCA)
complementa esta interpretación, al evidenciar que
hormigas, cochinillas y escarabajos barrenadores
en la vulnerabilidad de las familias botánicas. La
presencia de estos grupos explica gran parte de la
variabilidad observada en la incidencia de daños,
recomienda que estos tres grupos sean prioritarios
en los programas de monitoreo, prevención y
manejo urbano, considerando tanto su impacto
directo sobre el tejido leñoso como su capacidad
para favorecer infecciones fúngicas secundarias en
árboles debilitados.
CONCLUSIONES
Las especies exóticas presentaron una mayor
incidencia de enfermedades y plagas que las
del arbolado urbano de la ciudad de Loja.
Las enfermedades estructurales, como tumores,
pudriciones y muerte regresiva, fueron más
frecuentes en especies exóticas, incrementando
su riesgo biomecánico y, con ello, la probabilidad
de caídas, fracturas y mayores costos de manejo y
mantenimiento urbano.
El fuste fue el órgano más afectado, seguido de
las hojas y las ramas, lo que evidencia que los
daños leñosos representan el principal foco de
vulnerabilidad sanitaria en el arbolado urbano.
Los síntomas más frecuentes registrados fueron
tumores, clorosis y exudados, mientras que las
plagas predominantes correspondieron a hormigas,
cochinillas y escarabajos barrenadores, grupos
que mostraron un papel central en la afectación
en la susceptibilidad a plagas y enfermedades
entre familias botánicas. Salicaceae, Fabaceae,
Malvaceae y Magnoliaceae se asociaron con
pudriciones y muerte regresiva; Pinaceae con
exudados; y Lythraceae, Rosaceae y Betulaceae
con síntomas foliares. En contraste, Euphorbiaceae,
Proteaceae, Juglandaceae y Sapotaceae mostraron
menor susceptibilidad general.
Las especies más susceptibles a plagas y
enfermedades fueron Salix babylonica, Leucaena
leucocephala, Pinus radiata, Syzygium jambos,
Prunus serotina y Salix humboldtiana, todas con
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altos niveles de incidencia y síntomas estructurales
recurrentes.
Las especies con menor incidencia y mayor
estabilidad sanitaria fueron Caesalpinia spinosa,
Myrcianthes hallii, Castilla elastica, Tecoma
stans, Acnistus arborescens y Ficus benjamina,
posicionándolas como alternativas adecuadas para
programas de arborización urbana en Loja.
AGRADECIMIENTOS
Los autores agradecen a la Dirección de
Investigación de la Universidad Nacional de Loja por
17-DI-FARNR-2021 y 52-DI-FARNR-2025,
al personal técnico y al Laboratorio de Sanidad
Vegetal de la Carrera de Agronomía, además de los
estudiantes de la carrera de Ingeniería Forestal por
la recolección de información en campo.
CONTRIBUCIÓN DE AUTORES
Conceptualización: PF y DL; Metodología: PF
y DL; Análisis formal: DL; Investigación: PF,
DL, DP, NJ, AA; Curación de datos: DL y DP;
Redacción, preparación del borrador original: PF,
DL, DP, NJ, AA; Redacción revisión y edición: PF,
NJ, AA; Visualización: AA; Supervisión: PF, DL,
NJ. Todos los autores han leído y aceptado la versión
publicada del manuscrito. Paulina Fernández: PF.
Deicy Lozano: DL. Nohemí Jumbo: NJ. Darwin
Pucha: DP. Andrés Armijos Montaño: AA
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Publicado por la Universidad Nacional de Loja,
bajo licencia Creative Commons 4.0
AgroBacillus: Lixiviado de raquis de banano para el manejo agroecológico de
Ralstonia solanacearum
AgroBacillus: Banana rachis leachate for the agroecological management of
Ralstonia solanacearum
*
1. Carrera de Ingeniería Agrícola, Facultad Agropecuaria y de Recursos
Naturales Renovables, Universidad Nacional de Loja, Loja, Ecuador
2. Xenon misioneros, Thinos, Grecia
*Autor para correspondencia: edison.vasquez@unl.edu.ec
RECIBIDO: 24/07/2025 ACEPTADO: 11/09/2025
RESUMEN
El moko del banano, causado por Ralstonia solanacearum
que afecta el cultivo de Musa spp. Hasta la fecha, no se ha desarrollado un tratamiento efectivo para su
erradicación. Esta investigación evaluó la reducción de la carga bacteriana mediante la aplicación de
lixiviado de raquis de banano (AgroBacillus), caracterizado por su contenido en sustancias húmicas,
Bacillus subtilis, en combinación con un tratamiento
térmico al suelo. El experimento se desarrolló en el cantón Vinces, Ecuador (Hacienda San Antonio),
bajo un esquema bifactorial en un diseño completamente al azar con tres repeticiones, considerando
dos niveles de quema (2 y 4 horas) y dos dosis de lixiviado aplicadas de manera gradual durante 90
tanto para las dosis de AgroBacillus como para la interacción entre los factores. El tratamiento térmico
población de R. solanacearum a 90 UFC/g de suelo, lo que representa una reducción del 74 %. Estos
AgroBacillus, utilizado como biofertilizante, en sinergia con un tratamiento
del banano. Su aplicación no solo reduce la carga bacteriana del patógeno, sino que también favorece la
valorización de residuos agrícolas y contribuye a mejorar la salud del suelo.
Bacillus subtilis, biofertilizantes, moko del banano, residuos agrícolas, sustancias húmicas.
PUBLICADO: 05/01/2026
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Vásquez, E., Stavrinouidis-Xenon, A. (2026). Reducción de la Carga Bacteriana de Ralstonia solanacearum mediante
Lixiviado de Banano con Potencial Bactericida. Bosques Latitud Cero, 16(1), 90-98. https://doi.org/10.54753/blc.
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ABSTRACT
Banana moko, caused by Ralstonia solanacearum Race 2, is one of the most devastating diseases
Musa spp., for which no curative treatment is currently available. This study evaluated the
reduction of bacterial load through the application of AgroBacillus, characterized by its content of
Bacillus subtilis, in combination with soil
thermal treatment. The experiment was conducted in Vinces, Ecuador (Hacienda San Antonio), under a
completely randomized bifactorial design with three replications. Two heating levels (2 and 4 hours) and
two leachate doses applied gradually over 90 days (from 7.5 to 2.5 L and from 10.0 to 5.0 L) were tested.
factors. The treatment consisting of 4 hours of soil heating combined with the 10.0 L dose reduced to
AgroBacillus, used as a biofertilizer in synergy with
management of banana moko. Its application not only reduces the pathogen’s bacterial load but also
promotes the valorization of agricultural residues and contributes to improving soil health.
Keywords: Bacillus subtilis, biofertilizers, banana moko, agricultural residues, humic substances
INTRODUCCIÓN
El uso intensivo de agroquímicos en sistemas
agrícolas tropicales ha generado efectos negativos
como pérdida de biodiversidad, degradación del
suelo y contaminación de fuentes hídricas (FAO,
2012; Cárdenas-Calvachi & Sánchez-Ortíz, 2013;
Vivas-Cedeño et al., 2022; Khan et al., 2022).
Estos impactos están directamente asociados
al desequilibrio de comunidades microbianas
patógenos como Ralstonia solanacearum Raza
2, agente causal del moko del banano (Villarreal-
Delgado et al., 2018; Yánez-Guzmán, Pérez-
Martínez & Grijalva-Endara, 2021; Saquicela-
Cruz et al., 2023).
Como alternativa a este modelo productivo,
la agroecología promueve sistemas resilientes
mediante la conservación de la agrobiodiversidad,
el reciclaje de nutrientes y el aprovechamiento de
residuos orgánicos (Glick, 2012; Alzate-Acevedo
et al, 2021). En este marco, la aplicación de
bioinsumos derivados de subproductos agrícolas
ha mostrado efectos positivos: incremento de más
del 40 % en la biomasa microbiana del suelo,
mayor disponibilidad de nutrientes y reducción
del uso de fertilizantes sintéticos en hasta un 30 %
(López-Gutiérrez et al., 2012).
En el caso de Ecuador, principal exportador
mundial de banano, se generan más de 4 millones de
toneladas anuales de biomasa residual, equivalente
al 60 % (Alzate-Acevedo et al, 2021), de las cuales
el raquis constituye uno de los subproductos más
abundantes y menos aprovechados (Chávez-
Estudillo et al., 2017). Este tejido vegetal se
caracteriza por su riqueza en potasio (4 800 a
7 500 mg/L), nitrógeno (205 a 392 mg/L), fósforo
(124 a 131 mg/L), además de ácidos húmicos y
compuestos fenólicos con reconocida actividad
antimicrobiana (Blanco et al., 2013; Andrade-
Quiñones, Hidalgo & Herrera, 2019; Fonseca et
al., 2024). A nivel microbiológico, el lixiviado
de raquis alberga comunidades dominadas por
Bacillus spp., cuya presencia lo convierte en un
sustrato natural con propiedades biofertilizantes y
de biocontrol (Pedraza et al., 2020).
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Lixiviado de Banano con Potencial Bactericida. Bosques Latitud Cero, 16(1), 90-98. https://doi.org/10.54753/blc.
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Estudios internacionales señalan que el lixiviado
de raquis, incluso sin enriquecimiento, puede
reducir la población de R. solanacearum en suelos
contaminados hasta en un 32 % (Arenas et al.,
2004). Este efecto se atribuye tanto a compuestos
fenólicos y metabolitos secundarios presentes en el
lixiviado, como a la acción de bacterias antagónicas
como Bacillus subtilis (Yánez-Guzmán et al., 2021;
Parra-Cota et al., 2024). A su vez, experiencias con
enriquecimiento microbiano han demostrado que
la incorporación de Trichoderma harzianum, B.
subtilis
(EM) potencia las propiedades biofertilizantes y el
efecto de supresión de patógenos (González-León
et al., 2022; Tanaka et al., 2024).
En este contexto, el presente estudio evaluó la
reducción de la carga bacteriana de Ralstonia
solanacearum Raza 2 mediante la aplicación
combinada de un tratamiento térmico al suelo
y AgroBacillus (lixiviado de raquis de banano),
con énfasis en el papel de Bacillus subtilis como
agente antagonista. La investigación busca aportar
evidencia empírica para el manejo agroecológico
del moko del banano, promoviendo el
aprovechamiento de residuos agrícolas y la mejora
de la salud del suelo en sistemas de producción
sostenible.
MATERIALES Y MÉTODOS
Área de estudio
El experimento se realizó en la Hacienda San
Antonio (Figura 1), ubicada en la parroquia
Antonio Sotomayor, cantón Vinces, provincia de
son UTM 9 824 448,38 N y 636 634,75 E, a una
altitud de 14 m s.n.m. La zona presenta un clima
tropical húmedo, con temperatura media anual de
26 °C, precipitaciones entre 2 000 y 3 000 mm y
humedad relativa promedio del 85 %. Los suelos
son de textura arcillo-limosa, con buen drenaje,
adecuados para el cultivo de musáceas (Musa
spp.), variedad Cavendish valery (INIAP, 2023).
Figura 1. Hacienda San Antonio, parroquia Antonio
Sotomayor, cantón Vinces.
Diagnóstico de la enfermedad y manejo
El área experimental posee antecedentes
Ralstonia
solanacearum Raza 2, reportados por el INIAP
moko se efectuó mediante inspección visual en
campo bajo condiciones de bioseguridad, siguiendo
y Ganadería (MAG, 2022). El personal técnico
empleó indumentaria esterilizada tipo quirúrgico,
incluidos guantes y calzado de protección. La
síntomas característicos en pseudotallo y fruto,
como decoloraciones vasculares lineales y
circulares (Figura 2), además de una prueba rápida
tiempo de lectura de 5 minutos y sensibilidad del
95 %.
Las plantas diagnosticadas fueron eliminadas
raíces fueron extraídas, embolsados y trasladados
a una estructura de descomposición controlada de
2,0 m³, donde se aplicó cloro al 10 % para acelerar
la degradación (MAG, 2022).
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Vásquez, E., Stavrinouidis-Xenon, A. (2026). Reducción de la Carga Bacteriana de Ralstonia solanacearum mediante
Lixiviado de Banano con Potencial Bactericida. Bosques Latitud Cero, 16(1), 90-98. https://doi.org/10.54753/blc.
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Figura 2. Síntomas de Ralstonia solanacearum:
decoloraciones vasculares en pseudotallo y fruto.
Diseño experimental
Se empleó un diseño completamente al azar con
arreglo bifactorial y tres repeticiones. Los factores
fueron:
Factor A (Tratamiento térmico del suelo):
f
1
: 2 horas de quema en un solo día.
f
2
: 4 horas de quema distribuidas en dos días.
El tratamiento térmico se aplicó con cuatro
lanzallamas alimentados por GLP (Gas Licuado
de Petróleo), alcanzando temperaturas de 1 500 a
1 700 °C (Figura 3). Posteriormente, se removió una
hacia el perímetro del área de tratamiento (círculo
de 6,0 m de diámetro).
Figura 3. Área tratada térmicamente y muestreo de
suelo infectado.
Factor B (Lixiviado de raquis de banano):
r
1
: Dosis inicial de 7,5 L, reducida progresivamente
a 2,5 L en 90 días.
r
2
: Dosis inicial de 10,0 L, reducida progresivamente
a 5,0 L en 90 días.
La aplicación se realizó durante un periodo de 90
días (Figura 4) mediante aspersión manual tipo
diámetro empleando mochilas de aspersión con
boquilla cónica.
Elaboración y caracterización del AgroBacillus
El AgroBacillus se obtuvo a partir de raquis
frescos, procesados mecánicamente y sometidos
a descomposición aeróbica (temperatura máxima
de 60 a 80 °C) controlada durante 60 días en
condiciones de temperatura de 25 a 40 °C y pH
inicial de 6,5 a 7,0 y enriquecido con bacterias
Bacillus subtilis. Durante el proceso se recirculó
el lixiviado colectado dos veces por semana para
acelerar la fermentación.
Figura 4. Aplicación de AgroBacillus.
Muestreo y análisis microbiológico
Cada 15 días, durante un periodo de 60 días, se
recolectaron muestras compuestas de suelo de
500 g por parcela experimental, obtenidas a partir
de cinco submuestras recolectadas al azar a una
profundidad de 15 a 20 cm mediante barreno
manual. Este procedimiento correspondió a un
cual permitió obtener una muestra representativa
de cada unidad experimental. Las muestras fueron
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homogenizadas y trasladadas al laboratorio en
condiciones de bioseguridad para su análisis
microbiológico.
Las muestras fueron analizadas en el Laboratorio
de Sanidad Vegetal de la Universidad Nacional
de Loja. Se emplearon medios selectivos SMSA
(Selective Medium South Africa) y técnicas de
conteo de unidades formadoras de colonias
Ralstonia
solanacearum (Elphinstone et al., 1996).
Análisis estadístico
Los datos de reducción de la carga bacteriana
fueron sometidos a análisis de varianza para un
diseño factorial. Cuando se detectaron diferencias
realizó con el software estadístico InfoStat versión
estudiantil.
RESULTADOS
Caracterización del AgroBacillus
El AgroBacillus (Tabla 1) presentó un pH de
5,3 y una elevada concentración de potasio (14
000 mg/L), nitrógeno (245 mg/L) y fósforo (183
mg/L). El análisis microbiológico (Tabla 2)
mostró predominancia de bacterias Gram positivas
del género Bacillus, particularmente B. subtilis,
reconocidas por su efecto antagonista frente a
patógenos del suelo (Khan et al., 2022; Parra-Cota
et al., 2024).
Reducción de la carga bacteriana
La población de Ralstonia solanacearum en
0,05) entre tratamientos térmicos y dosis de
AgroBacillus, así como en su interacción (Tabla 3).
El tratamiento con 4 horas de quema distribuidas
en dos días con aplicación de 10,0 L reducidos
progresivamente a 5,0 L de AgroBacillus, presentó
la mayor efectividad, alcanzando una reducción
de los 60 días de evaluación (Figura 5).
En contraste, el tratamiento térmico de 2 horas con
AgroBacillus de 7,5 L reducidos progresivamente
a 2,5 L mostró la menor efectividad (reducción de
agrupar los tratamientos en diferentes categorías
estadísticas, señaladas con letras distintas en las
Figura 5. Reducción exponencial de Ralstonia
solanacearum en el suelo.
Comportamiento en el tiempo
La dinámica de reducción bacteriana evidenció
una tendencia descendente exponencial (R² > 0,94)
a lo largo de los muestreos quincenales (Figura
5). Durante los primeros 15 días, los tratamientos
que combinaron calor y AgroBacillus presentaron
una mayor disminución de UFC/g, especialmente
con 4 horas de exposición al fuego, alcanzando
pendientes más pronunciadas. En contraste, los
tratamientos con menor tiempo de calor mostraron
una reducción más lenta, manteniendo valores más
elevados de la población bacteriana a lo largo del
ensayo.
AgroBacillus
La combinación de 4 horas de quema y 10,0
L reducidos a 5,0 L de AgroBacillus generó
condiciones favorables para la supresión de R.
solanacearum, al reducir la población inicial
del patógeno y, simultáneamente, favorecer la
colonización del suelo por microorganismos
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más altas que las observadas en tratamientos
aplicados de forma individual (Figura 6).
Tabla 1. Análisis químico del AgroBacillus elaborado
en Vinces, Provincia de los Ríos
pH
mg/L
N K Ca Mg S B Fe Mn Zn
5,3 245 183 14000 54 32 71 1,1 4,2 2,2 0,3
Fuente: Laboratorio de Alemania, 2021
Tabla 2. Aislamiento bacteriano mediante tinción de
Gram
Colonia Color Morfología
Colonia 1 Amarillo Cocos, Gram +
Bacillus spp.
Colonia 2 Crema Cocos, Gram +
Bacillus spp.
Colonia 3 Blanca Cocos, Gram +
Bacillus spp.
Fuente. Laboratorio de Sanidad Vegetal, Universidad
Nacional de Loja, junio, 2024
Tabla 3. Efecto de los tratamientos térmicos y AgroBacillus sobre la población de Ralstonia solanacearum en
suelo.
Tratamiento Descripción
UFC/g Reducción G. Estadístico
Inicial Final %
f1r1 2 horas de quema + AgroBacillus 7,5 L a 2,5 L 330 172 48 a
f1r2 2 horas de quema + AgroBacillus 10,0 L a 5,0 L 301 109 64 b
f2r1 4 horas de quema + AgroBacillus 7,5 L a 2,5 L 304 185 39 a
f2r2 4 horas de quema + AgroBacillus 10,0 L a 5,0 L 343 90 74 c
Figura 6. Recuento de R. Solanacearum para la
interacción tratamiento térmico por AgroBacillus
DISCUSIÓN
Caracterización del AgroBacillus
El AgroBacillus utilizado (Tabla 1) presentó un pH
ácido (5,3) y elevadas concentraciones de potasio,
nitrógeno y fósforo, lo que explica su acción como
biofertilizante. El aislamiento microbiológico
(Tabla 2) evidenció la predominancia de B. subtilis,
reconocida por la producción de metabolitos
antimicrobianos (iturina, fengicina, bacitracina)
y su capacidad para inducir resistencia sistémica
Khan et al., 2022; Parra-Cota et al., 2024). En
consecuencia, la reducción de R. solanacearum
observada puede atribuirse tanto a la acción directa
de estos compuestos antibacterianos como a la
Reducción de la carga bacteriana
El tratamiento combinado de 4 h de quema y
10 L reducidos a 5 L de AgroBacillus alcanzó
una reducción del 74 % (90 UFC/g de suelo),
superando lo reportado en estudios internacionales
donde lixiviados no enriquecidos disminuyeron la
población de R. solanacearum en un 32 % (Arenas
entre el efecto térmico y el lixiviado, que no solo
reduce la carga inicial del patógeno, sino que
como Bacillus subtilis y actinomicetos (Pedraza et
al., 2020; Yánez-Guzmán et al., 2021; Fonseca et
al., 2024; Ali et al., 2025). De manera similar, en
cultivos como tomate, lechuga y pimiento, el uso
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Vásquez, E., Stavrinouidis-Xenon, A. (2026). Reducción de la Carga Bacteriana de Ralstonia solanacearum mediante
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de lixiviados ha demostrado mejorar la estructura y
funcionalidad biológica del suelo (Cordero-Rojas,
2023; Ortiz-Villavicencio, 2023).
Comparación con otros estudios
El efecto supresor del calor coincide con lo
señalado por Bonanomi et al. (2008) y Speranza
temperatura y la duración de la exposición en la
la interacción tratamiento térmico-AgroBacillus
concuerda con Caicedo et al. (2020) y Vásquez et al.
(2025), quienes documentaron un mejor desarrollo
radicular y menor incidencia de enfermedades tras
aplicar bioinoculantes en hortalizas, café y tomate.
Desde una visión agroecológica, la combinación
de tratamientos térmicos y AgroBacillus
constituye una estrategia sostenible y de bajo
impacto ambiental, ya que aprovecha residuos
agrícolas, disminuye la dependencia de
agroquímicos sintéticos y fortalece la capacidad
supresiva del suelo (FAO, 2012; Parra-Cota et
al., 2024; Vásques et al., 2024). Estos resultados
refuerzan el potencial del lixiviado como
bioinsumo multifuncional, al integrar propiedades
biofertilizantes, bioestimulantes y de biocontrol.
CONCLUSIONES
El tratamiento térmico de 4 horas, combinado
con AgroBacillus en dosis de 10,0 L reducidos
a 5,0 L, logró la mayor reducción de Ralstonia
solanacearum Raza 2 (74 %), superando
presentes en el AgroBacillus, principalmente
Bacillus subtilis, que favorecen la supresión
del patógeno y la recuperación de la microbiota
AgroBacillus y tratamiento térmico constituye una
alternativa agroecológica viable para el manejo del
moko del banano, contribuyendo a la valorización
de residuos agrícolas y a la sostenibilidad de los
sistemas productivos.
AGRADECIMIENTO
De manera especial a Don Fernando Coello,
Técnico especialista en banano con 35 años de
experiencia y propietario de la Hacienda San
Antonio, donde se desarrolló el experimento.
CONTRIBUCIÓN DE AUTORES
E.R.V.: Conceptualización, Investigación,
Metodología, Análisis formal, Curación
de datos, Escritura y Supervisión; A.S.X.:
Conceptualización, Investigación, Metodología.
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Bosques Latitud Cero 16(1), 99-113. 2026
https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2633
Publicado por la Universidad Nacional de Loja,
bajo licencia Creative Commons 4.0
Inducción de estructuras callogénicas en explantes in vitro y ex vitro de Cinchona
ocinalis L
Induction of callogenic structures in in vitro and ex vitro explants of Cinchona
ocinalis L
1. Carrera de Ingeniería Forestal, Universidad Nacional de Loja, Loja, Ecuador
2. Laboratorio de Micropropagación Vegetal, Universidad Nacional de Loja,
Loja Ecuador
*Autor para correspondencia: marcia.manchay@unl.edu.ec
RECIBIDO: 24/10/2025 ACEPTADO: 18/12/2025
RESUMEN
Cinchona ocinalis L., especie emblemática del sur del Ecuador sobreexplotada históricamente y con baja
capacidad de regeneración natural, fue objeto del presente estudio en donde se evaluó la desinfección de
material vegetal ex vitro (invernadero) y, la interacción de auxinas y citoquininas para inducir estructuras
callogénicas con material in vitro y ex vitro. En ambos casos se aplicó un diseño completamente al
azar. En la primera fase se probó cuatro concentraciones de NaClO (10-15-20-25 % por 10 minutos),
respectivamente, la fenolización del T3 fue del 80 %. En la segunda fase se evaluaron cinco tratamientos
inoculó explantes de 1 cm de nervadura central/hojas, se incubaron en oscuridad total por 90 días; los
resultados mostraron ser superiores en T1-T4 (76-100 %) con relación al 13-33 % obtenido a partir de
material ex vitro, la contaminación fue nula (excepto 7 % en T3) en in vitro, frente al 60-80 % en ex vitro,
la rizogénesis en T3-T4 (46-70 raíces/callo in vitro vs. 28-33 ex vitro). La fenolización elevada (72 % in
vitro, 92 % ex vitro
vitroplantas
la callogénesis y micropropagación de cinchona.
Cinchona ocinalis, desinfección, callogénesis, micropropagación.
ABSTRACT
Cinchona ocinalis L., an emblematic species of southern Ecuador that has been historically overexploited
and has a low capacity for natural regeneration, was the subject of this study. The study evaluated the
disinfection of plant material ex vitro (greenhouse) and the interaction of auxins and cytokinins to induce
callus-forming structures using both in vitro (laboratory) and ex vitro material. A completely randomized
PUBLICADO: 05/01/2026
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Armijos-Montaño, A., Manchay-Loaiza, M., Yaguana-Arévalo, M. (2026). Inducción de estructuras callogénicas
en explantes in vitro y ex vitro de Cinchona ocinalis L. Bosques Latitud Cero, 16(1), 99-113. https://doi.
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% for 10 minutes). The greatest contamination control results were obtained with T3 and T4, with 93 %
structures. Explants with 1 cm midribs/leaves were inoculated and incubated in total darkness for 90
days. The results showed superiority in T1-T4 (76-100 %) compared to the 13-33 % obtained from ex
vitro material. Contamination was negligible (except for 7 % in T3) in vitro, versus 60-80 % ex vitro.
Rhizogenesis was higher in T3-T4 (46-70 roots/callus in vitro vs. 28-33 ex vitro). High phenolic content
(72 % in vitro, 92 % ex vitro
in vitro plantlets was shown to be
Keywords: Cinchona ocinalis, disinfection, callus formation, micropropagation.
INTRODUCCIÓN
Cinchona ocinalis L., especie es una
representativa de los valles de Loja, distribuida
entre zonas tropicales y ecuatoriales (700 y 2900
m s.n.m.) (Garmendia, 2005). Conocida como
cascarilla o quina, posee un valor histórico por sus
alcaloides presentes en su corteza y raíz (quinidina
y quinina), compuestos químicos utilizados
históricamente en el tratamiento de la malaria y el
paludismo (Arbizu et al., 2021; Medina y Catari,
2022; Parveen et al., 2024). La intensa explotación
a la que fue sometida ocasionó impactos severos
sobre sus poblaciones naturales, que actualmente
presentan bajas tasas de regeneración natural
(Eras-Guamán et al., 2020), y se restringen a
relictos boscosos dispersos (Caraguay et al., 2016;
González et al., 2018), generalmente ubicados en
lugares irregulares con acceso limitado y suelos
degradados (López, 2016; Romero, 2015). A
pesar de su capacidad de producir semillas, sus
bajos niveles de germinación mediante métodos
de propagación tradicionales han mostrado ser
al., 2019; Sánchez et al., 2023).
Ante ello, la biotecnología mediante el cultivo de
tejidos vegetales se presenta como una alternativa
clave para restablecer la funcionalidad ecológica
y conservación de especies amenazadas como la
cascarilla (López, 2019; Oran et al., 2022). La
obtención de plántulas en menor tiempo, libres de
patógenos representa una estrategia fundamental
(Duque, 2010; Levitus et al., 2010). No obstante, en
la organogénesis indirecta es necesario establecer
protocolos que minimicen la variación somaclonal
y aseguren una adecuada formación de las
estructuras callogénicas (Armijos-González et al.,
2021). Además, el éxito de estas técnicas depende
del establecimiento de condiciones asépticas
rigurosas especialmente cuando el material vegetal
ha estado expuesto o almacenado por periodos
prolongados, incrementando la carga endofítica y
explante (Gu et al., 2022).
En este contexto, el presente estudio evaluó la
implantación de explantes y el efecto de diferentes
balances auxina/citoquinina sobre la inducción de
estructuras callogénicas comparando explantes
ex vitro (invernadero) e in vitro bajo condiciones
de oscuridad. La investigación propone como
hipótesis que el establecimiento aséptico de C.
ocinalis
desinfección y protección antioxidante capaz de
mitigar la fenolización; y que los explantes in vitro
presentan mejor desarrollo morfogénico frente a
los ex vitro, cuya respuesta estaría limitada por el
estrés oxidativo y la carga endofítica.
MATERIALES Y MÉTODOS
El estudio se llevó a cabo en el Laboratorio de
Micropropagación Vegetal de la Universidad
Nacional de Loja, Ecuador, y comprendió dos
fases independientes basadas en el uso de material
vegetal de Cinchona ocinalis L.
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Armijos-Montaño, A., Manchay-Loaiza, M., Yaguana-Arévalo, M. (2026). Inducción de estructuras callogénicas
en explantes in vitro y ex vitro de Cinchona ocinalis L. Bosques Latitud Cero, 16(1), 99-113. https://doi.
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En la primera fase, se evaluó la desinfección
e implantación de material de invernadero
(explantes ex vitro). El diseño de esta etapa
se planteó a partir de los resultados previos
reportados por Eras-Guamán et al. (2020),
buscando optimizar los protocolos de asepsia
para este tipo de tejido. Por su parte, la segunda
fase se centró en la formación de estructuras
callogénicas, fundamentada en los hallazgos
de Camacho (2023). En esta etapa se utilizaron
explantes tanto de origen ex vitro como in vitro
(laboratorio) para comparar su competencia
morfogénica bajo condiciones controladas.
Las fases 1 y 2 o compartieron frascos ni
material biológico reutilizado; se trabajó con
implantación vs. callogénesis). Se utilizó un
diseño completo al azar (DCA) en ambas fases.
La unidad experimental fue el frasco con dos
explantes, con asignación aleatoria a tratamientos
y condiciones de incubación idénticas. Esta
estructura garantiza la independencia estadística
y la atribución inequívoca de los efectos a los
tratamientos (NaClO o ANA–KIN) y, cuando
corresponde, al origen.
Para la fase 1, se elaboró un medio de cultivo basal
de Murashige y Skoog MS (1962) suplementado
5,8 ± 0,2. Por el contrario, en la fase 2 al medio
de cultivo basal se emplearon dos reguladores
de crecimiento: ácido naftalenacético (ANA)
(C12H10O2) y kinetina (KIN) (C10H9N5O) en
diferentes concentraciones. En ambos casos se
distribuyeron 20 mL por frasco y se esterilizó en
autoclave (121 °C, 15 psi, 20 min), conjuntamente
con los materiales de disección.
Fase de desinfección e implantación
Se recolectaron hojas de C. ocinalis en estado
juvenil, provenientes de plántulas del invernadero
adjunto al Laboratorio, tratadas previo al corte
2 meses con intervalos de aplicación de 8 días.
Los explantes ex vitro ingresados al laboratorio
inmersión en alcohol al 70 % por 1 minuto,
enjuague con agua destilada estéril, luego
se aplicaron las concentraciones de solución
desinfectante a base de hipoclorito de sodio
(NaClO) según correspondió a su tratamiento, por
eliminó la solución desinfectante con 3 enjuagues
de agua destilada estéril más antioxidantes (250
ácido cítrico).
Tabla 1. Tratamientos de NaClO para la desinfección
de explantes ex vitro de Cinchona ocinalis (Fase 1).
Tratamientos
Concentración
del desinfectante
NaClO (%)
Tiempo de
inmersión
(minutos)
T1 10 10
T2 15 10
T3 20 10
T4 25 10
Cada tratamiento incluyó 30 explantes (15 frascos
por tratamiento), alcanzando un total de 60 frascos
y 120 explantes en la Fase 1. Los explantes
se inocularon en condiciones asépticas y se
llevaron al cuarto de incubación en condiciones
de oscuridad total a 23 °C durante 45 días. Las
variables evaluadas fueron: número de explantes
contaminados y con oxidación fenólica, y número
de días a la contaminación y oxidación.
Fase de inducción de estructuras callogénicas
Se inocularon explantes consistentes en segmento
de la nervadura central de la hoja (1 cm
2
) de
plántulas ex vitro (invernadero) y vitroplantas (in
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Armijos-Montaño, A., Manchay-Loaiza, M., Yaguana-Arévalo, M. (2026). Inducción de estructuras callogénicas
en explantes in vitro y ex vitro de Cinchona ocinalis L. Bosques Latitud Cero, 16(1), 99-113. https://doi.
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vitro). Las plántulas ex vitro se sometieron al mismo
protocolo de desinfección descrito anteriormente.
Ambos grupos de plantas donantes se originaron a
homogéneas: 4 meses de edad (estado juvenil)
y crecimiento activo. En este caso se siguió el
composición del medio de cultivo para incorporar
reguladores de crecimiento en diferentes dosis. Se
evaluaron 5 tratamientos × 3 repeticiones (Tabla
2); la unidad experimental fue un frasco con 2
explantes. Cada tratamiento reunió 15 frascos (30
explantes), para un total de 75 frascos dando un
total de 150 explantes de origen ex vitro e in vitro
respectivamente.
Tabla 2. Tratamientos hormonales (ANA/KIN) para
la inducción in vitro de estructuras callogénicas en
Cinchona ocinalis (Fase 2).
Tratamientos
Regulador de crecimiento
ANA
KINETINA
T0 (control) 0 0,0
T1 5 0,0
T2 10 0,0
T3 5 0,5
T4 10 0,5
Los explantes de origen ex vitro e in vitro se
inocularon en condiciones asépticas y se llevaron
a incubación en condiciones de oscuridad total a
23 °C durante 90 días. Las variables evaluadas
fueron: número de explantes contaminados y
fenolizados, y número de días a la contaminación
y fenolización, número de explantes con callo y de
días a la formación del callo, color y friabilidad,
número de raíces y/o brotes por callo.
Análisis estadístico
Para las variables binarias de la Fase 1
(contaminación y fenolización) y Fase 2
(formación de callo), se ajustaron Modelos
Lineales Generalizados Mixtos (GLMM) con
distribución binomial y función de enlace logit.
Se incluyó la ‘Repetición’ como efecto aleatorio
para controlar la variabilidad experimental por
bloques. En la Fase 2, debido a la presencia de
separación completa de datos (tratamientos
con 0 % o 100 % de respuesta en callogénesis),
se aplicaron modelos Beta-binomiales
para gestionar la sobredispersión y obtener
estimaciones robustas de los errores estándar.
El análisis de los tiempos hasta el evento (días
a la contaminación y fenolización) se realizó
mediante curvas de Kaplan-Meier y modelos de
supuesto de proporcionalidad mediante residuos
de Schoenfeld.
Para el conteo de raíces por callo (Fase 2), se
descartó el modelo de Poisson tras detectar
a la media). En su lugar, se ajustó un Modelo
de Regresión Binomial Negativa, validando su
bondad de ajuste mediante la reducción del Criterio
de Información de Akaike (AIC). Las medias
marginales estimadas (EMMs) se calcularon
sobre los modelos ajustados y las comparaciones
múltiples se realizaron mediante la prueba de
Los análisis se realizaron en el software R (R Core
Team), usando survival (Kaplan–Meier y Cox
“45 días”), MASS (binomial negativo, glm.nb),
glmmTMB (beta–binomial) y emmeans (medias
marginales y comparaciones con Tukey).
Cabe mencionar que, las principales limitaciones
de esta investigación radicaron en la alta carga
endofítica y la severa sensibilidad a la oxidación
fenólica inherentes al material ex vitro, factores
que redujeron el tamaño muestral efectivo en
ciertos tratamientos de la fase de inducción. Si
bien esta pérdida de unidades experimentales
restringe la potencia estadística para algunas
los patrones observados fueron consistentes y
validan la necesidad crítica de una fase previa
de saneamiento y estabilización in vitro para
garantizar la viabilidad en la micropropagación de
especies leñosas recalcitrantes como C. ocinalis.
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Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Armijos-Montaño, A., Manchay-Loaiza, M., Yaguana-Arévalo, M. (2026). Inducción de estructuras callogénicas
en explantes in vitro y ex vitro de Cinchona ocinalis L. Bosques Latitud Cero, 16(1), 99-113. https://doi.
org/10.54753/blc.v16i1.2633
RESULTADOS
Fase de desinfección e implantación (explantes
ex vitro)
Sobrevivencia de explantes
Luego de 45 días de evaluación, el tratamiento 3
(20 % NaClO) presentó el mayor porcentaje de
sobrevivencia, con 10 explantes vivos (33,33 %).
Por su parte, en el tratamiento 4 (25,00 % NaClO)
se evidenció un total de 5 explantes sobrevivientes
(16,77 %); mientras que, los tratamientos 1 (10,00
% NaClO) y 2 (15,00 % NaClO) mostraron, los
valores más bajos con un total de 3 explantes vivos
(10,00 %) en cada caso.
Contaminación
El análisis logístico mostró que la probabilidad
NaClO. El tratamiento T1 (10 % NaClO) presentó
la mayor proporción de frascos contaminados (67
%), mientras que T3 (20 % NaClO) y T4 (25 %
NaClO) redujeron drásticamente este riesgo (7
% y 20 %, respectivamente). En comparación
con T3, los frascos tratados con T1 tuvieron 28
veces más probabilidad de contaminarse (p =
0,023). Aunque T4 también mostró una tendencia
a menor contaminación, la diferencia frente a T1
Estos resultados sugieren que T3 representa
la concentración más efectiva de NaClO para
reducir la contaminación de explantes ex vitro a
condiciones in vitro (Figura 1).
Las curvas de Kaplan–Meier (Figura 2) mostraron
rank test, p < 0,0001). El tratamiento T1 presentó
la mayor proporción de contaminación temprana,
mientras que T3 mantuvo el 93 % de los explantes
libres hasta el día 45. Según el modelo de Cox,
los tratamientos T2 (HR = 0,37; IC95 %: 0,17–
0,80), T3 (HR = 0,064; IC95 %: 0,015–0,27) y
T4 (HR = 0,23; IC95 %: 0.094–0,59) redujeron
comparación con T1 (Tabla 3).
Figura 1. Probabilidad de frasco contaminado por
tratamiento (NaClO). Medias marginales (emmeans)
del modelo logístico a nivel de frasco con IC95 %. T1
p = 0,023.
Figura 2. Curvas de Kaplan–Meier de contaminación
por tratamiento (NaClO, Fase 1).
Tabla 3. Riesgo de contaminación por tratamiento (modelo de Cox; referencia T1).
Tratamiento
Mediana de días libres de
contaminación
HR (vs, T1) IC95 % HR
T1
12 días (contaminación
temprana)
1,00 (ref) — — Mayor contaminación temprana
T2 14 días 0,37 0,17 – 0,80 0,011 **
63 % menos riesgo de
contaminarse
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Fenolización
El análisis logístico indicó diferencias en la
probabilidad de fenolización según el tratamiento
de NaClO. Los tratamientos T2 (15 % NaClO)
y T3 (20 % NaClO) mostraron las mayores
probabilidades de fenolización (80 %), seguidos
de T4 (25 % NaClO) con 73 %, mientras que
T1 (10 % NaClO) presentó la menor incidencia
(40 %). Aunque las comparaciones múltiples no
del ajuste, la tendencia general muestra que
concentraciones intermedias-altas de NaClO (T2
y T3) incrementan la probabilidad de oxidación
fenólica en los explantes. (Figura 3). Las curvas
de Kaplan–Meier (Figura 4) mostraron diferencias
tratamientos (log-rank, p = 0,0053). El tratamiento
T1 mantuvo la mayor proporción de explantes
libres de fenolización, mientras que T2, T3 y
T4 presentaron una aceleración en el inicio del
proceso. Según el modelo de Cox, el riesgo de
fenolización fue 3,28 veces mayor en T2 (IC95
%: 1,43–7,51), 3,84 veces mayor en T3 (IC95%:
1,69–8,74) y 3,09 veces mayor en T4 (IC95 %:
1,35–7,07), en comparación con T1. (Tabla 4).
Figura 3. Probabilidad de fenolización por tratamiento
(NaClO, Ensayo 1). Medias marginales (emmeans) del
Figura 4. Curvas de Kaplan–Meier de fenolización por
tratamiento (NaClO, Fase 1).
Tratamiento
Mediana de días libres de
contaminación
HR (vs, T1) IC95 % HR
T3
>45 días (solo 2 explantes
contaminados)
0,064 0,015 – 0,27
< 0,001
***
94 % menos riesgo de
contaminarse
T4 20 días 0,23 0,094 – 0,59 0,002 **
77 % menos riesgo de
contaminarse
Tabla 4. Riesgo de fenolización por tratamiento (modelo de Cox; referencia T1).
Tratamiento
Mediana de días libres de
fenolización
HR (vs. T1) IC95% HR
T1
>45 días (muchos explantes
sin fenolizar)
1,00 (ref) — — Menor fenolización
T2 28 días 3,28 1,43 – 7,51 0,0049 ** 3× más riesgo de fenolizar
T3 23 días 3,84 1,69 – 8,74 0,0013 ** 4× más riesgo de fenolizar
T4 25 días 3,09 1,35 – 7,07 0,0075 ** 3× más riesgo de fenolizar
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Fase de inducción de estructuras callogénicas
en explantes in vitro y ex vitro
Contaminación
El análisis mostró que en la condición in vitro
no se registró contaminación en ninguno de los
tratamientos, salvo un evento aislado (7 %) en
Mientras que, en explantes de origen ex vitro la
probabilidad de contaminación fue alta en todos
los tratamientos, alcanzando entre 60 % y 80 % de
los frascos evaluados. Estas diferencias resultaron
estadísticamente evidentes al comparar el origen de
los explantes obtenidos, aunque no se observaron
diferencias claras entre tratamientos dentro de cada
condición (Figura 5).
Figura 5. Probabilidad de contaminación por
tratamiento y condición (Fase 2). Medias marginales
(emmeans) del modelo logístico (puntos) con IC95
% (líneas). In vitro: sin contaminación en T0, T1,
Ex vitro:
probabilidades altas y similares (60–80 %) en todos
los tratamientos.
Fenolización
La fenolización de los explantes fue elevada en
todos los tratamientos, tanto en explantes de origen
in vitro como ex vitro. En explantes in vitro se
observaron probabilidades ajustadas de 73 % en
el 100 %. Por otra parte, en explantes ex vitro la
incidencia fue aún más alta, con valores de 93 %
en T0, T1 y T4, 80 % en T2 (10,0 ANA + 0,0 KIN)
Figura 6. Probabilidad de fenolización por tratamiento
y condición (Fase 2). Medias marginales (emmeans)
del modelo logístico con IC95 %. In vitro: T0 = 100
Ex vitro:
Formación de callos
La formación de callos mostró un contraste
marcado entre el origen de los explantes. En
explantes in vitro, la callogénesis fue muy alta en
todos los tratamientos que incluyeron reguladores
(T1–T4), los cuales abarcaron dosis de 5,0–
porcentajes de respuesta del 80 % al 100 %. Por el
contrario, el control T0 (0,0 ANA + 0,0 KIN) mg
binomial presentó separación completa (0/100 %),
por lo que se ajustó un modelo beta–binomial para
obtener estimaciones estables. Las probabilidades
múltiples no detectaron diferencias entre T1–T4
(Tukey, p > 0,05).
En cuanto a explantes de origen ex vitro, la
probabilidad de formación de callo fue baja y
homogénea (0–33 %), con T3 (5,0 ANA + 0,5 KIN)
Debido al ajuste singular del modelo binomial, se
entre tratamientos (Tukey, p > 0,05). En conjunto,
la Figura 7 muestra que los reguladores auxina–
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citoquinina inducen callogénesis de forma
consistente in vitro, mientras que ex vitro la
callogénesis es escasa y sin efecto diferencial de
los tratamientos.
Figura 7. Probabilidad de formación de callo por
tratamiento y condición. Puntos/barras = medias
marginales (emmeans) a nivel de frasco con IC95 %.
In vitro
estimado con beta–binomial). Ex vitro: 0–33 %,
con T3 como tendencia más alta; sin diferencias
Raíces por callo
sobredispersión en los conteos (ex vitro
in vitro: ajuste adecuado), por lo que se estimaron
medias marginales ajustadas (EMMs) por
tratamiento. En explantes in vitro, T3 (5,0 ANA +
respuesta.
Por su parte, en explantes ex vitro, los tratamientos
IC95%: 0,5–15), mientras que T3 y T4 (5,0–10,0
6–134, respectivamente). Las comparaciones
> 0,05), afectadas por la variabilidad y el tamaño
muestral, y algunos contrastes con T0/T1 fueron
no informativos por ceros estructurales; aun así,
el patrón biológico es consistente y claro: T3 yT4
son los únicos tratamientos con enraizamiento
robusto en ambas condiciones, T1 y T2 muestran
respuestas marginales o nulas según el ambiente, y
T0 actúa como control sin respuesta.
Figura 8. Efecto del tratamiento sobre el número
de raíces por callo en explantes in vitro y ex vitro
(EMMs, modelo binomial negativo). Barras = medias
marginales ajustadas; barras de error = IC95%
mostradas solo cuando la media > 2 y los IC son
ex vitro, gris claro = in vitro.
DISCUSIÓN
Dentro de los desafíos inherentes en la desinfección
e implantación de explantes ex vitro de Cinchona
ocinalis L., la contaminación representa una
barrera principal para la micropropagación, con un
promedio global del 31,67 % debido a la presencia
de hongos (Colletotrichum sp., Alternaria sp.) y
NaClO evaluadas (10-25 % por 10 minutos). Este
comportamiento es consistente con lo reportado
por Eras-Guamán et al. (2020), quienes al trabajar
con explantes de invernadero de la misma especie,
registraron tasas de contaminación superiores al 40
%, incluso utilizando concentraciones de NaClO
mucho más altas (50 % y 75 %).
tanto en la probabilidad de contaminación por frasco
aparición de contaminación entre tratamientos (log-
et al. (2020)3, quienes requirieron altas dosis de
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desinfectante para reducir la contaminación al 40
%, nuestro tratamiento T3 (20 % NaClO) logró una
contaminados (OR=28 vs. T1; p = 0,023). Este
resultado sugiere que la estrategia de pretratamiento
alineada con las recomendaciones de García et al.
(2015), permitió optimizar el protocolo utilizando
concentraciones intermedias de NaClO, logrando
un mejor equilibrio entre capacidad desinfectante
y menor daño tisular.
tiempo libre de contaminación (HR=0,064 vs.
T1; IC 95 %: 0,015-0,274; p < 0,001). Por el
contrario, el tratamiento T4 (25 % NaClO) mostró
una contaminación temprana y mayor incidencia
la liberación de exudados que favorecen la
proliferación bacteriana residual, un fenómeno de
estrés tisular también observado en otros estudios
de la especie.
en otras especies de la familia Rubiaceae. Por
ejemplo, Martínez et al. (2007) redujeron la
contaminación al 8 % en explantes de campo de
Borojoa patinoi Cuatr. utilizando NaClO al 3 %
por 25 minutos; mientras que, Rodríguez-Layza et
al. (2021) destacan la importancia del tiempo de
inmersión prolongado (30 minutos con NaClO al
1,3 % + Tween 20), controlando la contaminación
en café (Coea arabica) var. Caturra roja. Estos
antecedentes ponen en evidencia la variabilidad
protocolos, tal como se propone en la estrategia
de doble desinfección descrita por Sharry et al.
(2015): inmersión inicial en etanol al 70 % (20-
60 segundos) seguida de NaClO (3-30 minutos),
adaptándola al tipo de explante y especie.
La oxidación fenólica alcanzó un promedio del 55
de C. ocinalis a este tipo de estrés. Los resultados
observados en el tratamiento con 20 % de NaClO
T3 (66,67 %) son comparables al 60 % reportado
por Eras-Guamán et al. (2020) en la misma
especie en explantes de invernadero sometidos a
NaClO, respectivamente. Sin embargo, este tipo de
resultados también puede responder a factores como
tipo de explante, concentraciones de desinfectantes
y la exposición lumínica postinoculación (Eras-
Guamán et al., 2019). Dado que la liberación
producción de alcaloides, complica notablemente
el establecimiento in vitro de explantes ex vitro
(Azofeifa, 2009).
Por otro lado, la incorporación al medio MS de
atenuar la oxidación, actuando teóricamente como
quelantes de las especies reactivas de oxígeno
(ROS) e inhibiendo la polimerización de quinonas
(López et al., 2015). No obstante, se registró un
efecto marginal (15–20 % NaClO [T2 y T3] vs.
10 % [T1]; p = 0,032), las comparaciones post-hoc
Tukey), lo que sugiere que el NaClO induce
respuestas enzimáticas (peroxidasa, polifenol
oxidasa) independientemente de la dosis, patrón
frecuente en especies de la familia Rubiaceae.
Finalmente, el análisis Kaplan-Meier mostró que la
menor concentración de NaClO (T1, 10 %) retrasó
la fenolización en explantes de C. ocinalis (26,7
% de eventos a 45 días), minimizando el daño
celular inicial. En cambio, T2 y T3 aceleraron el
proceso (63,3-66,7 % de eventos), triplicando el
riesgo de fenolización temprana y necrosis por
quinonas tóxicas de hasta 3,84 veces mayor en T3
(IC 95 %: 1,689-8,744, p = 0,001),
Estos hallazgos destacan la elevada vulnerabilidad
de material ex vitro de C. ocinalis y proponen
optimizar concentraciones intermedias de NaClO
(15-20 %) combinadas con antioxidantes más
potentes (cisteína, carbón activado) para mitigar
pérdidas y facilitar callogénesis. La inclusión de
la oxidación en Handroanthus heptaphyllus (Díaz
et al., 2020), y podrían integrarse para absorber
fenoles y mejorar la viabilidad, elevando la
supervivencia más allá del 25 % observada en T3
(10 explantes vivos).
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Estos resultados sentaron las bases para la Fase 2, en
la que se comparó cómo el origen de los explantes
(ex vitro vs. in vitro) bajo diferentes balances
hormonales indujeron la generación de callos y
raíces bajo balances hormonales en periodos de
oscuridad. La contaminación presentó diferencias
explantes in vitro no hubo contaminación en los
tratamientos T0, T1, T2 y T4 (0,0–10,0 ANA +
6,7 % en el tratamiento T3 (5,0 ANA + 0,5 KIN)
Camacho (2023), quien al trabajar con vitroplantas
de C. ocinalis logró tasas de sobrevivencia
patógenos.
Por el contrario, en explantes ex vitro, la
contaminación osciló entre 60 % y 80 %, siendo el
con mayor incidencia (80 %, IC 95 %: 53,0-93,4 %;
p = 0,033 vs. T3 in vitro), incluso tras la aplicación
en la Fase 1 (T3, 20 % NaClO). Estos resultados
se alinean con los resultados presentados por Eras-
Guamán et al. (2020), quienes reportaron pérdidas
superiores al 40 % en material de invernadero
debido a la carga microbiana endógena, resistente
incluso a dosis elevadas de desinfectantes.
En cuanto a la fenolización, la incidencia fue
elevada en todos los tratamientos, tanto en los
ensayos in vitro como ex vitro, sin diferencias
según el origen del material, siendo la media global
en explantes in vitro (72 %), y en explantes ex vitro
(92 %); por ejemplo, en el tratamiento T3, pasó de
53 % en in vitro a 100 % en ex vitro. Destacando
una susceptibilidad oxidativa mucho mayor en
esta especie comparada con otras leñosas como
Grevillea robusta, cuyas tasas suelen ser inferiores
al 17 % (Bogado et al., 2016).
Esta diferencia según el origen coincide con lo
señalado por Liu et al. (2024), quienes indican
que los tejidos jóvenes, con menor contenido de
fenoles y menor actividad de polifenol oxidasa
(PPO), son menos susceptibles al pardeamiento
enzimático. Adicionalmente, la alta intensidad del
pardeamiento puede explicarse por la naturaleza
del proceso; según Camacho (2023) y Hernández
y González (2010), la fenolización es un fenómeno
de luz y oxígeno. Esto sugiere que las condiciones
de incubación lumínica pudieron potenciar la
liberación de fenoles, afectando la viabilidad de los
tejidos, especialmente en los tratamientos con solo
auxinas (T1 y T2) que mostraron mayor afectación
en la fase in vitro.
Durante la Fase 2 sobre la inducción de estructuras
callogénicas, es importante resaltar la variación
de rasgos morfológicos presentada por los
callos observados consistentes con la respuesta
hormonal; en la que, la variación cromática que
en callos de material in vitro mostró predominio
de color crema (58,6 %), en el tratamiento T1 (5,0
de color café (37,4 %, 37/99; 53-58 % en T3 (5,0
solo en T1), obtenida con balances ANA/KIN en
oscuridad total, donde T3-T4 favorecieron tonos
oscuros por PPO activada. Probablemente debido
a una mayor oxidación enzimática activada por el
balance hormonal.
En ex vitro, la coloración crema (55,6 % en T1
y 100 % en T4) y café (100 % en T2, 50 % en
T3) equilibraron en T3/T4, resultados similares a
los reportados por Camacho (2023) con > 60 %
crema en fotoperiodo/oscuridad en C. ocinalis.
por luz, explante y balance A/C (Espinosa et al.,
2012); mientras que, Eras et al. (2019) reportaron
con una alta viabilidad en callos inducidos con
auxinas, alineándose con la respuesta observada
en los tratamientos con ANA.
De igual forma, la friabilidad esencial para la
división celular, fue superior en explantes in vitro
(66,7 %) (50-90 % en T1-T4, máximo 90 % en T4)
vs. 12,5 % explantes ex vitro (3,33-20 % en T1-
T4), mejorada por oscuridad pese a estrés residual
(fenolización 72 % vs. 92 %). Este bajo desempeño
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en los explantes ex vitro sugiere que la oscuridad
actuó como un factor ambivalente: si bien era
necesaria para inducir la friabilidad morfológica,
simultáneamente exacerbó la actividad de la PPO
en los tejidos estresados, resultando en una alta tasa
de fenolización (92 %) que terminó inhibiendo la
división celular.
Estudios como el de Martínez et al. (2007) hallaron
una friabilidad similar (~16 callos) en borojó con
2,4-D en oscuridad/luz, sin diferencias; por otro
lado, Eras-Guamán et al. (2020) logró 100 %
friables en explantes ex vitro de C. ocinalis con
auxinas sintéticas para mitigar la no friabilidad
coincidiendo con Setiawan et al. (2020), quienes
requirieron 2,4-D para lograr un 100 % de callos
friables en Coea arabica. El 2,4-D no solo
aumenta la plasticidad celular, sino que también
retrasa la síntesis de polifenoles, lo que respalda su
uso para superar la oxidación en material de campo
(Armijos-González y Pérez-Ruiz, 2016).
La callogénesis alcanzó el 76 % global en
vitroplantas a 90 días (80-100 %) en T1 (5,0 mg
material in vitro es consistente con lo reportado
por Camacho (2023), quien obtuvo un desarrollo
de estructuras callogénicas del 86,5 % en explantes
de vitroplantas bajo oscuridad total utilizando una
tratamientos bajo fotoperiodo (69 %). Permitiendo
que el tejido juvenil en condiciones asépticas (in
vitro
ANA.
Por el contrario, la respuesta en explantes ex vitro
fue marginal (18,7 % global), esto contrasta con
de Sánchez-Calvo et al. (2015) con 2,4-D + AIB
en Uncaria tomentosa, pero se alinea con el 73,3
% de Eras-Guamán et al. (2020) en explantes ex
vitro de C. ocinalis
2,4-D podrían potenciar respuestas en tejidos ex
vitro al superar inhibiciones por fenoles residuales.
reportada por Armijos-González y Pérez-Ruiz
(2016), quienes lograron inducir brotes indirectos
(vía callo) y proliferación de brotes utilizando una
que C. ocinalis posee plasticidad morfogenética
frente a distintos balances de auxina/citoquinina.
Finalmente, en el proceso de inducción de
rizogénesis el balance hormonal ANA/KIN indujo
diferencias descriptivas en el número de raíces
por callo, con el material in vitro exhibiendo tasas
globales superiores (media ajustada 24,2 raíces/
callo, IC 95 %: 9,1-66,7 en T3/T4) comparado
con material ex vitro (13,9 raíces/callo, IC 95 %:
6,3-33,3). Este comportamiento se alinea con lo
observado por Camacho (2023) en la misma especie,
quien reportó que, si bien la rizogénesis puede
iniciarse en fotoperiodo, las raíces desarrolladas
bajo condiciones de oscuridad presentan mayor
vitalidad y robustez, características críticas para
la viabilidad del callo. En explantes ex vitro, los
generaron 33,3 (IC 95%: 10,0-111) y 28,0 (IC
95 %: 8,4-94) raíces por callo, respectivamente,
superando al T2 (2,7, IC 95 %: 0,7-11) y T0/T1 (0),
sugiriendo que dominancias auxínicas intermedias
parcialmente la fenolización elevada de fase 1 (92
% global ex vitro).
Por su parte, en explantes in vitro, el tratamiento
T4 mostró la mayor respuesta (69,7 raíces/callo,
IC 95 %: 21,1-230), seguido de T3 (46,0, IC
95 %: 13,9-153) y T1 (5,7, IC 95 %: 1,6-20),
mientras que en T0 y T2 no se observó formación
donde citoquininas bajas promueven rizogénesis
en vitroplantas
material in vitro (OR >5 implícito para raíces >10
en T3/T4 vs. ex vitro), validando la propagación
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secuencial para escalar enraizamiento. La
variabilidad en longitudes radiculares (predominio
corto <2 cm en explantes ex vitro, 47 %) indica
hormonas y origen (Rodríguez et al., 2014), similar
a Eras-Guamán et al. (2020), aunque la oscuridad
favorece raíces compactas y fáciles de separar
(66,7. % in vitro vs. 12,5 % ex vitro), limitando
tasas de supervivencia postrasplante a ~70 % en el
tratamiento T4 en explantes in vitro.
CONCLUSIONES
El tratamiento con NaClO al 20 % durante 10
minutos proporcionó el mejor balance entre
explantes de Cinchona ocinalis L. Sin embargo,
el origen ex vitro favoreció tanto la fenolización
como la pérdida de tejido viable, lo que evidencia
la inviabilidad de la inducción directa en material
de establecimiento in vitro para garantizar la
competencia morfogénica.
una callogénesis elevada (entre 80 y 100 % en
explantes in vitro
(máximo de hasta 70 raíces por callo en T4),
asociada a la formación de callos claros y texturas
friables, indicadores de alta viabilidad morfogénica
y potencial para la regeneración de tejidos en fases
posteriores de organogénesis o embriogénesis
somática.
En conjunto, los resultados demuestran que el
material procedente de vitroplantas presenta un
desempeño superior frente al ex vitro, y destacan que
la interacción entre la intensidad de la desinfección
con NaClO, el manejo de antioxidantes y el balance
hormonal ANA/KIN constituye el eje clave para
el desarrollo de protocolos de micropropagación
C. ocinalis.
El protocolo propuesto constituye una base
técnica preliminar para la micropropagación y
conservación ex situ de C. ocinalis L., con
potencial aplicación en programas de restauración,
mejoramiento genético y aprovechamiento
sostenible de metabolitos quinolínicos. Además,
los resultados evidencian una alta sensibilidad
oxidativa y dependencia hormonal en los tejidos de
la especie, abriendo nuevas líneas de investigación
sobre mecanismos redox, metabolismo fenólico
y procesos de diferenciación celular en especies
leñosas tropicales.
CONTRIBUCIÓN DE AUTORES
A, A: Conceptualización, Análisis formal,
Curación de datos, Escritura – Revisión y edición,
Visualización;
M. M.: Metodología, Investigación, Curación de
datos, Escritura – Borrador original;
M.Y.: Conceptualización, Metodología, Escritura
– Borrador original.
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Publicado por la Universidad Nacional de Loja,
bajo licencia Creative Commons 4.0
El Oso Andino: ciencia, mito y emblema de identidad
de la Universidad Nacional de Loja, Ecuador
The Andean Bear: science, myth, and an emblem of identity of the
Universidad Nacional de Loja, Ecuador
Nikolay Aguirre
CITIAB, Universidad Nacional de Loja.
nikolay.aguirre@gmail.com
Tania Salinas Ramos
Universidad Nacional de Loja
tania.salinas@unl.edu.ec
RESUMEN
El oso andino Tremarctos ornatus, único úrsido sudamericano, habita los Andes hace cinco millones de
años y su linaje habría ingresado al subcontinente en dos oleadas (Pleistoceno temprano y Holoceno).
Podocarpus (Loja – Zamora Chinchipe). Morfológicamente alcanza ~2 m de longitud, pelaje negro
denso, cuello corto y musculoso, orejas pequeñas y hocico pardo. Su sentido predominante es el olfato;
en etapas seniles presenta visión binocular con mayor profundidad de campo. Destaca la variabilidad
de manchas crema alrededor de ojos, mejillas, garganta y pecho, rasgos únicos por individuo que
Puya spp.), conocida comúnmente como
“achupalla” y se reporta reproducción continua con posible sincronización estacional. Más allá de su
historia natural, el oso de anteojos es un importante símbolo biocultural: mediador entre naturaleza
sagrada y humanidad en narrativas andinas, incluso reconocido como “ancestro” por su bipedestación.
En Loja, su imagen articula pertenencia territorial y académico-deportiva: inspira la barra “La garra
del oso”, que es la mascota de la Universidad Nacional de Loja y protagoniza relatos locales (p. ej., la
leyenda del “estudioso universitario”) que integran ciencia, ética y formación, reforzando su valor para
la conservación con identidad.
El oso andino Tremarctos ornatus ha poblado
América del Sur por más de cinco millones de
años (Burgos et al., 2014). Sin embargo, autores
como Rodríguez y Soibelzon (2011) expresan
que “América del Sur fue invadida al menos
dos veces por osos, la primera en el Pleistoceno
temprano y la segunda durante el Holoceno,
siendo el único Ursidae que habita América del
que se ha asentado esta población corresponden,
según Camacaro y del Moral (2008), a los “Andes
orientales venezolanos, pasando por Colombia,
Ecuador, Perú, Bolivia hasta el noroeste argentino”.
Esta especie llega a medir hasta dos metros, su
pelaje es de un espléndido color negro, grueso y
abundante. En medio de su apariencia monumental
asoma un cuello corto y musculoso, también se
observa un par de orejas cortas y un hocico de
color pardo oscuro. Su visión no es su sentido
más destacado, como sí lo es su olfato. Stucchi y
Figueroa (2013) dan a conocer que el oso adulto
senil tiene una “visión binocular con mayor
profundidad de campo, lo que le permite establecer
distancias adecuadamente”. Esta característica le
ayuda a cazar con mayor facilidad. La visión de
los osos jóvenes está mayormente desarrollada en
los laterales, así detecta con precisión a predadores
y otros peligros.
NOTA CIENTÍFICA
RECIBIDO: 18/10/2025
ACEPTADO: 05/12/2025
PUBLICADO: 05/01/2026
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Aguirre, N., Salinas, T. (2026). El Oso Andino: ciencia, mito y emblema de identidad de la Universidad Nacional de Loja,
Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 114-117. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2602
Más allá de estas características, lo que llama
la atención del oso andino es la coloración que
presenta alrededor de los ojos. Sandoval y Yánez
(2019) señalan que estas suelen ser “manchas
blancas o café claras alrededor de los ojos, que
pueden extenderse hasta la quijada, garganta y
pecho”. Para Peyton (1999), González-Maya et
al. (2017), Vela-Vargas et al. (2021), como se cit.
en Montoya-Osorio et al. (2025), “las manchas
color crema o blanca que poseen alrededor de los
ojos, mejillas, garganta y pecho […] son únicas
en cada individuo, por lo que pueden considerarse
homólogas a las huellas dactilares en los humanos”.
Las creencias señalan que debido a la densidad de
los territorios en los que habita el oso, la naturaleza
sabia le aclara el pelaje alrededor de los ojos,
como intentando obsequiarle un par de anteojos
para que lograra ver con mayor precisión. Por eso
al oso andino también lo conocen como el oso de
anteojos, y también le dicen achupallero, porque
entre sus platos preferidos está el corazón de la
achupalla (Puya spp.). Además, se dice que el oso
de anteojos se reproduce de forma continua durante
todo el año, y se especula que podría sincronizar
sus tiempos de gestación para adaptarse mejor a las
condiciones ambientales y llevar a cabo procesos
de crianza en épocas con abundancia de alimentos
(Montoya-Osorio et al., 2025).
A partir de los mitos que se han creado en torno
al oso andino, se precisa que este animal llegó a
este mundo para ser el equilibrio entre la fuerza
y la razón. A su vez, para ser mediador entre la
naturaleza sagrada y la humanidad (Camacaro
y Del Moral, 2008; Lanata, 2019). Además, las
comunidades indígenas han reconocido en el oso
un ancestro a raíz de la cualidad de caminar en dos
patas que este posee (Burgos et al., 2014).
En un contexto más cercano, el oso de anteojos
de la región, ya que habita entre otros lugares,
en el Parque Nacional Podocarpus y su zona de
amortiguamiento, el mismo que se encuentra
ubicado en el límite fronterizo de las provincias de
Loja y Zamora Chinchipe.
habita el oso de anteojos, este pasa a ser emblema
de los lojanos en el ámbito deportivo. En 1979 se
crea Liga Deportiva Universitaria de Loja, que nace
adscrita al primer centro de estudios superiores de
la región Sur del país, la Universidad Nacional
de Loja. En el seno de este equipo deportivo, el
oso de anteojos toma representatividad ya que
se convierte en el nombre de la barra brava del
equipo, la misma que se conoce como “La garra
del oso” con la consigna “un solo aliento, un solo
sentimiento, una sola garra. Por ti nacimos, por ti
moriremos, desde siempre y hasta siempre”.
los lojanos, su imagen también se convierte en la
mascota de la Universidad Nacional de Loja, ya que
simboliza la fuerza, la valentía y la perseverancia
que caracterizan al Alma Máter de los lojanos.
MaNu: La leyenda del esTUdioso
universitario
Se dice que una vez, un niño había prometido a
su madre y a sí mismo ser el mejor en todo. Por
eso empezó a estudiar para dominar la ciencia.
Su madre le había dicho que también tiene que
aprender a ser buena persona, que todo debe
estar en equilibrio. El niño creció y se estaba
convirtiendo en un joven que olvidó su promesa.
Su ideal parecía fracturado, así como el corazón de
su madre, que cada vez veía lejos aquello que en
otro tiempo su hijo había anunciado.
Una noche mientras dormía, el ahora joven tuvo
un sueño. Sintió que una nariz fría le olfateaba
las manos y un leve gruñido le traía un recuerdo
lejano. Estas imágenes se conjugaban con la mirada
triste de su madre. El sueño era confuso, en él se
superponía en diferente orden la imagen de la madre,
la sensación del hocico y una promesa. Cuando el
joven despertó se incorporó y permaneció sentado
en su cama tratando de entender el sueño. Cuando
pensó en su madre todo se aclaró en su memoria.
De pequeño le había prometido ser el mejor y no
lo estoy cumpliendo, susurró. Con el dorso de su
mano limpió las lágrimas que brotaron de sus ojos.
Se levantó, pero el recuerdo de sus aspiraciones
truncadas lo acompañó toda la jornada.
Durante una temporada el sueño fue recurrente: un
hocico le olfateaba la mano. A veces eran gruñidos
los que se escurrían en el sopor de la noche, otras
116
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
Aguirre, N., Salinas, T. (2026). El Oso Andino: ciencia, mito y emblema de identidad de la Universidad Nacional de Loja,
Ecuador. Bosques Latitud Cero, 16(1), 114-117. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2602
veces sentía que un pelaje tibio le acariciaba
los brazos. Constantemente estas sensaciones
estaban presentes en el sueño, pero lo que más lo
descolocaba era imaginar el rostro de su madre
cada vez más triste. Así transcurrieron los días
hasta contagiado de optimismo para trabajar por
había manifestado. En medio de adversidades, que
a veces lo hacían dudar, empezó a estudiar en la
primera universidad de la región Sur del Ecuador.
Se dedicó a leer, a aprender, a investigar, y a
preguntar acerca de cómo funciona la naturaleza
y descubrir a ese misterioso personaje que salía
en sus sueños. Con ello, ese joven empezó a darle
forma y a guiarse por el anhelo que tenía desde la
infancia.
a los estudiantes de aquella universidad, el
bosque, la selva y las montañas se volvieron sus
lugares seguros. Cada vez salía a recorrer estos
ecosistemas, a colectar muestras, iba y venía
imbuido de una decisión inquebrantable. Quería
saber cuál era su alimento preferido para proteger
su hábitat. Quería conocerlo en su totalidad, saber
sus hábitos y su conducta. Por eso había empezado
a habitar asiduamente estos paisajes como si
fuera un oso de anteojos más. Se repetía para sí
mismo que para conocer al animal debía estudiar
los libros, pero también debía recoger indicios
para entenderlo casi por completo. Una mañana
de tantas avanzó por los caminos conocidos, se
internó entre el follaje de los matorrales y siguió
sin interrupción, procuraba hacer todo a tiempo,
ni en un segundo más ni en un segundo menos.
En esa experiencia, se sobresaltó cuando su bota
se hundió en excremento fresco de un oso, en ese
instante su corazón latió emocionado, sus ojos se
cubrieron de una telita de rocío, respiró hondo y
caminó sigiloso.
Estaba frente a lo que tantas veces se había
imaginado: el prodigioso, el inmenso, el negrísimo,
el majestuoso oso andino. El animal estaba con su
hocico pegado al sebo que un día antes le había
dejado. Se frotaba la nariz contra el follaje de los
arbustos y huicundos como si fueran una mano
inmensa que leyera sus poros. El joven lo miró
sin moverse y sin parpadear. El oso también miró
alrededor y sin más se fue en dirección opuesta.
El joven lentamente se aproximó al lugar que
antes estuvo lleno por la presencia del animal. Se
puso en cuclillas y acarició con su mano las hojas
donde aún estaba tibia la sombra de esa nariz, la
acarició y un escalofrío hizo que los vellos de
las extremidades se le erizaran. La sensación que
experimentó no era desconocida, antes ya había
sentido en la palma de su mano el hocico de un
oso.
Sonrió con los ojos humedecidos de alegría y supo
que su futuro estaba escrito desde su infancia.
Comprendió que lo que anunció cuando era niño,
y estuvo a punto de olvidar, se hizo realidad
porque el oso lo visitó en sueños para recordarle
que tenía una promesa que cumplir. Mientras
acariciaba la hoja donde quedó esculpida la nariz
del oso, el unelino recordó una antigua lectura en
la que se decía que los osos suben a los árboles
para alimentarse o descansar. Al subir doblaban
las ramas con su peso, lo que provocaba que estas
el agua y la luz. De esta manera era posible que
plantas que necesitaban de estos elementos
pudieran desarrollarse mejor. El joven pensó que el
oso había venido a sus sueños para romper ramas
que como obstáculos estaban en su cabeza y no le
del bosque.
En algún lugar se divisa la imagen de un oso de
anteojos al que todos acuden para acariciar su nariz.
Algunas leyendas dicen que esa es la parte más
sensible del animal y al parecer es verdad. Una vez
un muchacho frotó la nariz de un oso de anteojos
y sintió que el equilibrio que necesitaba para ser
excelente y bueno lo acompañó para siempre. Se
dice que este joven había prometido ser el mejor y
que cuando estuvo a punto de olvidar su promesa
el oso se le aparecía en los sueños para recordarle
aquello que estaba pendiente. Gracias a ello dedicó
su vida a estudiar las ciencias naturales y sus
hallazgos reposan en museos de historia natural
en distintos lugares del mundo. Es evidente que,
al igual que ese joven, al acariciar la nariz del oso
se comprende que no basta con dominar la ciencia;
también es necesario cultivar la fuerza interna para
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Publicado por la Universidad Nacional de Loja,
bajo licencia Creative Commons 4.0
Sistemas Agroforestales (SAFs), una alternativa para
la restauración del paisaje
Agroforestry System (SAFs), an alternative for the landscape restoration
Leonardo González
Parque Universitario “Francisco Vivar Castro”, Universidad Nacional de
Loja.
lpgonzalezn@unl.edu.ec
Zhofre Aguirre-Mendoza
Docente, Universidad Nacional de Loja
zhofre.aguirre@unl.edu.ec
RESUMEN
Ecuador, entre 1985 y 2023 perdió 1,1 millones de hectáreas de cobertura natural. La pérdida de bosques
y degradación de la tierra provoca efectos globales preocupantes y es necesario conocer y promover
alternativas de mitigación. La Agroforestería es una alternativa técnica-social apropiada y considerada
como una Solución Basada en la Naturaleza (SBN), aplicando los principios de la Restauración
culturales. El objetivo del presente estudio es destacar la importancia de la implementación de sistemas
agroforestales (SAFs) como alternativa para promover la restauración del paisaje y para ello se evaluó
servicios ecosistémicos como: conectividad del paisaje, hábitat y refugio de fauna silvestre, captura
de CO
2
, retención de materia orgánica y soporte del suelo, recurso no maderable (leña, materiales)
y maderable a futuro. Las principales especies forestales maderables y no maderables asociadas son:
Cordia alliodora, Schizolobium parahyba, Cedrela odorata, Clarisia biora, Quararibea cordata, Inga
edulis, Pouteria caimito, Pouroma cecropiifolia y Guadua angustifolia
productivo asociado es clave para la subsistencia familiar y económica, con especies como: Theobroma
cacao, Mussa x paradisiaca, Mussa sapientum y Manihot esculenta. La investigación destaca que los
sistemas productivos pueden ser más sostenibles e integrales a través de la inclusión de árboles nativos
climático, así como, mejorar la resiliencia de las personas.
Sistemas Agroforestales, restauración del paisaje, bienes y servicios ecosistémicos, degradación,
biodiversidad.
ABSTRACT
Between 1985 and 2023, Ecuador lost 1.1 million hectares of natural cover. Forest loss and land
alternatives. Agroforestry is an appropriate technical and social alternative and is considered a Nature-
Based Solution (NBS), applying the principles of Landscape Restoration. These systems promote a
the importance of implementing agroforestry systems (AFS) as an alternative to promote landscape
NOTA CIENTÍFICA
RECIBIDO: 18/10/2025
ACEPTADO: 15/12/2025
PUBLICADO: 05/01/2026
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inclusion of trees provides ecosystem goods and services such as: landscape connectivity, wildlife habitat
and shelter, CO
2
materials), and future timber resources. The main associated timber and non-timber forest species are:
Cordia alliodora, Schizolobium parahyba, Cedrela odorata, Clarisia biora, Quararibea cordata, Inga
edulis, Pouteria caimito, Pouroma cecropiifolia and Guadua angustifolia. The associated production
Theobroma
cacao, Mussa x paradisiaca, Mussa sapientum, and Manihot esculenta. The research highlights that
production systems can be more sustainable and comprehensive through the inclusion of multipurpose
well as improving people’s resilience.
Keywords: Agroforestry System, landscape restoration, ecosystem goods and services, degradation, biodiversity.
INTRODUCCIÓN
El planeta se enfrenta a la degradación de los
recursos naturales renovables, lo que afecta a la
población humana, a medida que el crecimiento
crece y su permanencia se ve comprometida. Los
bosques en 2020 ocupaban alrededor de 4 060
millones de hectáreas (Programa de las Naciones
Unidas para la Agricultura y Alimentación [FAO]
y Programa de las Naciones Unidas para el Medio
Ambiente [PNUMA], 2020). Sin embargo, la FAO
(2025) en su evaluación de los recursos forestales
mundiales revela que el planeta alberga 4 140
millones de hectáreas de bosque que representan
el 32 % de la cobertura terrestre. Entonces
los datos indicarían que ¿los bosques se están
recuperando? A pesar de que, en América Latina
las actividades extractivistas, la agricultura y el
pastoreo representan ~70 % de la degradación de
los bosques (Sabogal et al., 2015). Por otra parte,
entre 1985 y 2023 Ecuador perdió 1,1 millones de
hectáreas de cobertura natural (MAPBIOMAS,
2023).
Ante la degradación de la tierra y sus recursos
naturales, se promueve implementar estrategias,
técnicas y métodos de restauración sostenibles,
por ejemplo, la recuperación de ecosistemas, la
restauración productiva, la rehabilitación ecológica,
siendo clave en estos procesos la inclusión de las
personas. En la actualidad se ha potenciado trabajar
con los SAFs, como una medida de mitigación,
dando oportunidades para mejorar la calidad de
vida de las personas. Los SAFs se incluyen como
una Adaptación basada en Ecosistemas, la cual, es
una estrategia que apoya con las mejores prácticas
a las comunidades de agricultores y así integren la
conservación, restauración y manejo sostenible de
ecosistemas y la biodiversidad (Chain-Guadarrama
et al., 2019).
Los Sistemas Agroforestales son un sistema
y/o arbustos (frutales y/o maderables) y cultivos
procurando mantener la diversidad, producción e
integridad ecológica del ecosistema y, satisfacer
las necesidades de las familias. Este sistema se
enmarca en la agroforestería, que se sostiene bajo
el principio de el “uso de la tierra que combina
árboles con cultivos, árboles con ganado o árboles
con cultivos y ganado” (Gassner y Dobie, 2022).
Somarriba (2012) menciona que, “La agroforestería
es una forma de cultivo múltiple que satisface tres
condiciones básicas: existen al menos dos especies
que interactúan biológicamente; al menos uno
de los componentes es una leñosa perenne; y, al
menos dos de los componentes se manejan para
satisfacer los objetivos del administrador de la
tierra”, aunque también se incluyen los animales.
El éxito de estos sistemas depende del propietario
o labrador de la tierra, que son quienes buscan
satisfacer sus necesidades, principalmente,
económicas. Es ahí donde también juega un
rol clave la participación del profesional para
proponer un buen diseño (Carvajal et al., 2024),
valor ecológico. El propietario es clave, ya que
con su conocimiento ancestral conoce el potencial
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o atributos ecológicos de muchas especies nativas
y exóticas, y los requerimientos o preferencias de
hábitat de las especies que se usen en los SAFs.
En un SAF se puede aprovechar la tierra de manera
cultivos agrícolas con la plantación de especies
arbóreas de uso múltiple. También se pueden
aprovechar las tierras con pequeñas extensiones
y así mantener una buena conexión del paisaje y
parte de la integridad ecológica. Incluir especies
arbóreas ayuda a la generación de varios servicios
y bienes, entre ellos: frutos para consumo familiar,
alimento para las aves, madera, biomasa, captura
de CO
2
, regulación de temperatura, conectividad,
entre otros Gassner y Dobie (2022), también
mencionan la relevancia de los árboles en los
sistemas productivos ya que en el mundo el 45 %
arbórea.
pensamientos acerca de la agroforestería y la
importancia de la implementación de sistemas
agroforestales, como alternativa técnica-social
para promover la restauración del paisaje. También
se analiza de forma descriptiva un caso de SAF
establecido de manera empírica en un ecosistema
y socioeconómicos.
La Agroforestería y sus sistemas
La Agroforestería es un mecanismo histórico que
ha trascendido en las culturas y generaciones,
aunque en los últimos años ha perdido valor por la
práctica mayoritaria de los cultivos convencionales
y monocultivos comerciales; sin embargo, hay que
considerar que el cambio climático y la degradación
de la tierra es preocupante para la biodiversidad,
por ende, la agroforestería resulta un buen aliado.
Espinoza et al. (2004) resaltan puntos claves
sobre la importancia de la agroforestería, como: el
energía, presencia de problemas ecológicos y salud
humana (seguridad alimentaria), degradación de
la tierra y necesidades de asegurar recursos para
las generaciones futuras. Ante estas necesidades
la agroforestería oferta y propone modelos como
los sistemas silvopastoriles (árboles y/o arbustos
+ pastos), agroforestales (árboles y/o arbustos +
cultivos), agrosilvopastoriles (árboles y/o arbustos
+ pastos + cultivos) y forestales multipropósitos
de la agroforestería son amplios e incluyen la
recuperación de la fertilidad del suelo, el control de
la salinidad, la reducción de la erosión, la mejora de
la calidad del agua, la protección y recuperación de
la biodiversidad y del hábitat de los polinizadores
(Pacheco et al., 2024).
Estos sistemas técnicos de producción no solo
también integran la parte social, cultural y
económica (Figura 1), lo que se interpretaría
como la convivencia armónica entre ser humano y
naturaleza. La diversidad de plantas establecidas en
un sistema agroforestal crea un micro ecosistema
capaz de ofertar varios bienes y servicios
ecosistémicos, aunque no sean comparables
con las masas de bosques nativos o secundarios,
éstos ayudan a mantener en parte la integridad
y funcionalidad ecológica, la biodiversidad, y
por ende la complejidad ecosistémica, también
contribuye a mitigar los efectos del cambio
climático (Álava-Núñez et al., 2025).
sistemas: silvopastoril, agroforestal, agrosilvopastoril y
forestales multipropósitos.
Estudio de caso del establecimiento empírico
de un sistema agroforestal
El predio se ubica en la parroquia Los Encuentros,
Barrio El Carmen, en las riberas del río Zamora
(Figura 2). Se encuentra a una altura de 790 m s.n.m.,
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cuenta con un área aproximada de 0,2 ha y pertenece
al ecosistema bosque siempreverde piemontano de
la Cordillera del Condor Kutukú. Algunos bosques
cercanos son de tipo secundario acompañados de
mosaicos agropecuarios, principalmente pastizales
y cultivos de cacao, yuca, maíz, guineo y plátano.
Figura 2. Ubicación del predio bajo un sistema
agroforestal empírico. Imagen obtenida de Google
Earth Pro, actualización 18 de enero de 2025.
agroforestal empírico a la restauración del
paisaje
agroforestal, se realizó una caracterización
línea histórica del uso de la tierra y cómo fue su
proceso de recuperación. Se registraron las especies
forestales maderables y no maderables empleadas
las especies cultivadas para la subsistencia y
mejoramiento de la económica familiar. Además,
se registró los bienes y servicios ecosistémicos que
brindan estos métodos.
RESULTADOS
Estudio de caso del establecimiento empírico
de un sistema agroforestal
El predio aproximadamente en el año 1975 fue
utilizado para un campamento de maquinaria en
la apertura de la vía Los Encuentros-Bellavista-
Paquisha. La tierra estuvo sometida a compactación
y derrame de residuos como diésel, gasolina y
aceites lubricantes. Como resultado existía un
terreno con suelo pobre, poco fértil con presencia
de malezas pioneras y ruderales.
En el área se encontraban especies como pasto
elefante Cenchrus purpureus, pasto cariamanga
Andropogon sp., caña agria Costus scaber y otras
especies que en su conjunto formaban una luzara.
Con el propósito de obtener alimentos para la
subsistencia familiar se establecieron las primeras
plantas de cacao Theobroma cacao, yuca Manihot
esculenta y Mussa x paradisiaca guineo; además,
se asoció algunas plantas de guaba machetona Inga
spectabilis, guaba bejuco Inga edulis, caña suave
Saccharum ocinarum, yarazo Pouteria caimito y
zapote Matisia cordata.
Posteriormente, por regeneración natural se
establecieron árboles de laurel costeño Cordia
alliodora
de recuperar el suelo, así mismo, se manejaron
márgenes de protección en la zona riparia, en
donde, se ha establecido aproximadamente 10 m
de protección permanente con especies autóctonas
como Zigia sp., Clarisia biora, Guarea guidonia,
Sapium marmieri, Gynerium sagittatum que crecen
de manera natural (Figura 3).
se establecieron árboles de pachaco Schizolobium
parahyba, cedro Cedrela odorata, yumbingue
Terminalia amazonia, guadua Guadua angustifolia,
uva de monte Pourouma cecropiifolia. El pachaco
se seleccionó por ser una especie de rápido
crecimiento, el cedro y yumbingue por su madera
apreciada para la construcción, la guadua para
protección de las zonas riparias y por ser útil como
material de construcción y, la uva de monte por sus
frutos comestibles (Figura 3).
Figura 3. Modelo de un sistema agroforestal empírico
que promueve el principio de la restauración del paisaje.
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Contribución de un sistema agroforestal
empírico a la restauración del paisaje en la
Amazonía ecuatoriana
Los SAFs ofertan una variedad de bienes y
servicios ecosistémicos que dependerán también
del tamaño o área de la tierra. Por ejemplo, Avellán
et al. (2020) mencionan que Cordia alliodora en su
biomasa aérea puede contener 1,87 t/ha y 61 árboles
de Inga edulis contienen 0,35 t/ha comparado con
2 424 plantas de Theobroma cacao que contienen
de árboles. Estos sistemas también aportan en la
mitigación contra el cambio climático. Por otra
parte, Álava-Núñez et al. (2025) destacan que
sistemas productivos como las Ajas o Chakras
enfocadas como Soluciones Climáticas Basadas
en la Naturaleza llegan a almacenar cantidades de
carbono similares a los bosques secundarios.
En la Figura 4 se realiza una descripción de los
en el sistema agroforestal establecido en Los
Encuentros, Yantzaza, Ecuador.
Conectividad del paisaje
El SAF facilita el intercambio de la diversidad
mejor conservados, permitiendo la llegada y
formación de nuevos bancos de semillas que, a la
vez, brinda una mejor resiliencia y adaptabilidad
de los ecosistemas. Esta conectividad llega a ser
paisaje, formando micro-corredores biológicos.
En este sentido, los árboles dominantes albergan
líquenes, orquídeas, bromelias, aráceas y
organismos que viven asociados a estas especies.
Atractivo para la fauna
Los árboles dominantes son hábitat y refugio para
la fauna silvestre, especialmente para aves de gran
tamaño, que ayudan en la dispersión de semillas de
especies nativas. Los árboles frutales establecidos
en el sistema son fuente de alimento. Algunos
mamíferos como Guatusa, Armadillo, Yamala,
Guanchaca también utilizan estos espacios para
desplazarse a bosques secundarios cercanos.
También se reporta que los frutos de cacao y yuca
son alimento para la Guatusa, cabe mencionar que
no representan una plaga.
Regulan la temperatura, capturan CO
2
,
Las copas de los árboles son excelentes receptores
de los rayos solares, disminuyendo la radiación
directa bajo el dosel, lo que ayuda a regular la
temperatura. Además, plantar árboles incrementa
la captura de CO
2
debido a su gran tamaño que
pueden superar los 20 m de altura. Por ejemplo, se
menciona que se necesitan 22 árboles diarios por
persona para sobrevivir, en este sentido, debería
ser una obligación moral proteger los árboles para
la provisión de oxígeno.
Retienen la materia orgánica y da soporte al
suelo
Los troncos y raíces evitan el deslizamiento de
la materia orgánica, así mismo, evitan la erosión
del suelo cuando hay pendientes fuertes, por
ejemplo, las raíces tablares de Clarisia biora
o Schizolobium parahyba. Además, el sistema
radicular forma galerías y estructuras complejas,
en el suelo permitiendo una mejor aireación e
hídrica.
Disminuye la presencia de malezas
El aporte de hojarasca y sombra inhiben la
presencia de malezas, esto evita la competencia
con los cultivos y mejora su desarrollo, que
también contribuye a minimizar los esfuerzos
en el mantenimiento del sistema agroforestal.
Adicionalmente, pueden ayudar a disminuir la
presencia de plagas y enfermedades en los cultivos.
Mejoramiento del suelo
La producción de hojarasca mejora la necromasa,
que a medida que se descompone actúa como
fertilizante natural para el suelo, este proceso
promueve la proliferación de microorganismos
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la fertilidad y prolongar la vida útil del suelo.
El abastecimiento de la materia orgánica ayuda
a incrementar el nivel de elementos básicos
como fósforo P, potasio K, nitrógeno N, calcio
Ca y magnesio Mg. Además, ayuda a regular la
para que los cultivos dispongan de agua y evitar el
estrés hídrico.
Recursos no maderables
Se puede obtener frutos para consumo familiar o
venta, por ejemplo, guabas Inga spp. y Matisia
cordata (zapote). El abastecimiento de alimentos
puede representar un alivio económico, ya que
permite ahorrar en la compra de ciertos alimentos,
principalmente yuca, plátano, guineo que
conforman la canasta familiar. Además, se provee
de material para producción de energía calórica
(leña y carbón) de los árboles y arbustos. Y
dependiendo de las especies plantadas, se obtienen
materiales para construcciones pequeñas como
por ejemplo la Guadua angustifolia que sirve
para hacer galpones, techos, huertos y artesanías.
Algunos arbustos también pueden ser medicinales,
por ejemplo, Bauhinia tarapotensis empleada para
tratar los niveles de colesterol y la presión alta.
Recurso maderable a futuro
Los árboles plantados proveerán de madera a
futuro, por ejemplo, el laurel costeño y el pachaco.
Esto permitirá tener un ingreso económico
asegurado para las futuras generaciones. Se
pueden implementar especies de crecimiento
rápido y lento, que permite el aprovechamiento
a corto, mediano y largo plazo, ajustándose a las
necesidades del productor.
Figura 4. Sistema agroforestal, combinación de cacao criollo y guineo (Musa x sapientum) con especies
maderables de Pachaco (Schizolobium parahyba) y Laurel costeño (Cordia alliodora).
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Agroforestales como Solución Climática
Basada en la Naturaleza para la Restauración
Se presenta de forma ilustrativa los resultados del
manejo de la tierra a través de la implementación
de un SAF bajo el principio de las Soluciones
Climáticas Basadas en la Naturaleza y enfocadas en
la restauración del paisaje. Cabe mencionar que los
procesos son a largo plazo y el productor debe estar
dispuesto a cambiar su producción convencional,
para enfocarse en una producción que combine los
saberes ancestrales y el conocimiento ecológico.
Por ejemplo, el uso adecuado de especies para
recuperar los suelos, especies forestales con
potencial maderable, la correcta asociación de
árboles con cultivos, el uso de plantas silvestres
comestibles y medicinales. Estos conocimientos
llegan a fortalecer la capacidad de adaptación de las
personas, las medidas contra el cambio climático y
la gestión sostenible de la tierra (Álava-Núñez et
al., 2025).
con el propósito de dar una breve descripción de los
sistema agroforestal empírico.
para especies de fauna (frutos de palma Iriartea deltoidea); b) Provisión de sombra y regulación del clima
(árboles de Schizolobium parahyba y Cordia alliodora); c) Almacenamiento de carbono y recurso maderable
(Schizolobium parahyba y Cordia alliodora) y aprovisionamiento de recurso no maderable. d) Guadua angustifolia
para protección ribereña y material de pequeñas construcciones; e) Producción de frutos de Pouteria caimito
muy apetecido por las familias para la dieta alimentaria. f) Cosecha de diversidad de frutos para la subsistencia
familiar; g) Plantas de guineo Musa x sapientum bajo cobertura de Cordia alliodora y Schizolobium parahyba;
h,i) Producción de cacao para la subsistencia y mejoramiento de la economía familiar.
CONCLUSIONES
Los Sistemas Agroforestales (SAFs) constituyen
una estrategia efectiva de restauración del paisaje,
al integrar componentes arbóreos, agrícolas y,
en algunos casos, pecuarios que contribuyen
a recuperar la fertilidad del suelo, mejorar
la conectividad ecológica e incrementar la
biodiversidad funcional. Estos sistemas mantienen
procesos ecológicos esenciales, disminuyen la
erosión y fortalecen la resiliencia de los ecosistemas
frente al cambio climático.
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González, L., Aguirre, Z. (2026). Sistemas Agroforestales (SAFs), una alternativa para la restauración del paisaje. Bosques
Latitud Cero, 16(1), 118-125. https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2637
La implementación empírica del SAF en Los
Encuentros, Yantzaza, evidencia la viabilidad
técnica y ecológica del manejo mixto de especies
nativas y cultivadas, demostrando su capacidad
para capturar carbono, regular la temperatura
local, retener materia orgánica y proveer bienes y
servicios ecosistémicos. Este modelo constituye
una referencia práctica para la adaptación basada
en ecosistemas en contextos tropicales amazónicos.
El enfoque agroforestal promueve la sostenibilidad
productiva y socioeconómica a largo plazo, al
combinar saberes ancestrales con conocimiento
técnico moderno, fortaleciendo las capacidades
locales para la gestión sostenible de los
recursos. La participación activa del productor
y el acompañamiento técnico especializado son
determinantes para optimizar el diseño, manejo y
monitoreo de los SAFs como soluciones climáticas
basadas en la naturaleza.
agroforestales (SAFs) como una estrategia
nacional de restauración del paisaje y mitigación
del cambio climático, es viable y para ello, es
necesario establecer protocolos técnicos de diseño,
monitoreo y evaluación que integren variables
ecológicas (biodiversidad, captura de carbono,
calidad del suelo) y socioeconómicas (rentabilidad,
seguridad alimentaria, participación comunitaria).
Además de fomentar la capacitación continúa
de productores y técnicos locales en prácticas
agroforestales adaptadas a las condiciones
edafoclimáticas de cada zona, promoviendo la
sinergia entre conocimiento ancestral y ciencia
aplicada como base para la gestión sostenible de
los recursos naturales.
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Figura 1. Vista panorámica de la vegetación en estudio.
La empresa Arbofino localizada en el cantón
Pichincha perteneciente a la provincia de Manabí,
Ecuador, es una empresa dedicada a la plantación
sustentable de Tectona grandis (teca), conservación
y reforestación de bosques y la producción agrícola
de Theobroma cacao (cacao) de forma orgánica.
Entre el periodo 2021 y 2024 en las fincas y reservas
de la empresa Arbofino, se ejecutaron expediciones
botánicas para el registro de información florística,
considerando todas las formas de vida de las
especies y los diferentes tipos de cobertura vegetal
presentes en la zona de estudio, como bosques
secundarios y bosques ribereños a lo largo del río
Daule.
Figura 2. Mapa de ubicación espacial del área de estudio
RECIBIDO: 21/09/2025 ACEPTADO: 19/11/2025 PUBLICADO: 05/01/2026
Publicado por la Universidad Nacional de Loja,
bajo licencia Creative Commons 4.0
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Según el Mapa de Ecosistemas del Ecuador (MAE, 2013),
el área de estudio corresponde a Bosque siempreverde
estacional de tierras bajas del Jama-Zapotillo, el cual se
caracteriza por poseer bosques estratificados, donde las
especies en su mayoría son de tipo perennes. Los árboles
forman un dosel denso, con un promedio entre 20 y 25 m
de altura, desarrollándose en relieves colinados y terrazas
bajo los 400 m s.n.m.
En este ecosistema concurren especies pertenecientes
a la flora de los bosques siempreverdes de tierras bajas
del Chocó Ecuatorial y algunas especies propias de los
bosques deciduos y semideciduos del Jama – Zapotillo.
Figura 3. Vegetación ribereña en el río Daule
Figura 4. Cascada dentro de un parche de bosque
Este inventario constituye un primer esfuerzo por documentar la flora
de esta zona. Se registraron 177 especies distribuidas en 61 familias,
siendo las más diversas Fabaceae (20), Asteraceae (10), Acanthaceae
(10) y Malvaceae (10). Se identificaron nueve especies endémicas
y se recopilaron nombres y usos comunes para algunas de ellas.
Bajo este contexto, la presente guía fotográfica busca resaltar y dar a
conocer las diferentes especies vegetales que crecen en esta zona, sus
usos y el estado de conservación de especies amenazadas. Además,
este material será una herramienta de consulta para estudiantes e
investigadores sobre la flora de esta región.
Figura 5. Colecta de Gustavia angustifolia
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1
Asystasia gangetica
2
Asystasia gangetica
3
Aphelandra sp
4
Aphelandra sp
5
Pachystachys spicata
ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE
6
Pachystachys spicata
7
Pachystachys spicata
8
Pseuderanthemum
cuspidatum
9
Pseuderanthemum
cuspidatum
10
Pseuderanthemum
cuspidatum
ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE
11
Ruellia blechum
12
Ruellia blechum
13
Sanchezia parviflora
14
Sanchezia parviflora
15
Sanchezia parviflora
ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE
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16
Sanchezia parviflora
17
Sanchezia parviflora
18
Tetramerium nervosum
19
Trichanthera gigantea
20
Trichanthera gigantea
ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE
21
Nelsonia canescens
22
Nelsonia canescens
23
Nelsonia canescens
24
Mayna odorata
25
Mayna odorata
ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACANTHACEAE ACHARIACEAE ACHARIACEAE
26
Celosia sp.
27
Celosia sp.
28
Celosia sp.
29
Eucrosia bicolor
30
Eucrosia bicolor
AMARANTHACEAE AMARANTHACEAE AMARANTHACEAE AMARYLLIDACEAE AMARYLLIDACEAE
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31
Asclepias curassavica
32
Asclepias curassavica
33
Gonolobus sp.
34
Gonolobus sp.
35
Laubertia boissieri
APOCYNACEAE APOCYNACEAE APOCYNACEAE APOCYNACEAE APOCYNACEAE
36
Macroscepis sp.
37
Macroscepis sp.
38
Macroscepis sp.
39
Mesechites sp.
40
Mesechites sp.
APOCYNACEAE APOCYNACEAE APOCYNACEAE APOCYNACEAE APOCYNACEAE
41
Mesechites sp.
42
Prestonia mollis
43
Tabernaemontana sp.
44
Tabernaemontana sp.
45
Anthurium sp.
APOCYNACEAE APOCYNACEAE APOCYNACEAE APOCYNACEAE ARACEAE
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46
Anthurium sp.
47
Anthurium sp.
48
Caladium bicolor
49
Monstera pinnatipartita
50
Monstera pinnatipartita
ARACEAE ARACEAE ARACEAE ARACEAE ARACEAE
51
Monstera pinnatipartita
52
Monstera sp.
53
Monstera sp.
54
Monstera sp.
55
Philodendron sp.
ARACEAE ARACEAE ARACEAE ARACEAE ARACEAE
56
Philodendron sp.
57
Xanthosoma sp.
58
Xanthosoma sp.
59
Adenostemma
platyphyllum
60
Ageratum sp.
ARACEAE ARACEAE ARACEAE ASTERACEAE ASTERACEAE
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61
Ageratum sp.
62
Bidens sp.
63
Bidens sp.
64
Centratherum
punctatum
65
Cosmos caudatus
ASTERACEAE ASTERACEAE ASTERACEAE ASTERACEAE ASTERACEAE
66
Cosmos caudatus
67
Emilia fosbergii
68
Emilia fosbergii
69
Jungia sp.
70
Jungia sp.
ASTERACEAE ASTERACEAE ASTERACEAE ASTERACEAE ASTERACEAE
71
Jungia sp.
72
Jungia sp.
73
Liabum eggersii
74
Liabum eggersii
75
Pseudogynoxys engleri
ASTERACEAE ASTERACEAE ASTERACEAE ASTERACEAE ASTERACEAE
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76
Pseudogynoxys engleri
77
Pseudogynoxys engleri
78
Synedrella sp.
79
Begonia sp.
80
Begonia sp.
ASTERACEAE ASTERACEAE ASTERACEAE BEGONIACEAE BEGONIACEAE
81
Amphilophium
crucigerum
82
Amphilophium
crucigerum
83
Crescentia cujete
84
Crescentia cujete
85
Handroanthus
chrysanthus
BIGNONIACEAE BIGNONIACEAE BIGNONIACEAE BIGNONIACEAE BIGNONIACEAE
86
Handroanthus
chrysanthus
87
Handroanthus
chrysanthus
88
Tabebuia rosea
89
Tabebuia rosea
90
Tabebuia rosea
BIGNONIACEAE BIGNONIACEAE BIGNONIACEAE BIGNONIACEAE BIGNONIACEAE
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91
Cochlospermum
vitifolium
92
Cochlospermum
vitifolium
93
Bixa orellana
94
Bixa orellana
95
Bixa orellana
BIXACEAE BIXACEAE BIXACEAE BIXACEAE BIXACEAE
96
Cordia alliodora
97
Cordia alliodora
98
Cordia alliodora
99
Cordia lutea
100
Cordia lutea
BORAGINACEAE BORAGINACEAE BORAGINACEAE BORAGINACEAE BORAGINACEAE
101
Heliotropium
rufipilum
102
Heliotropium rufipilum
103
Myriopus sp.
104
Myriopus sp.
105
Tournefortia sp.
BORAGINACEAE BORAGINACEAE BORAGINACEAE BORAGINACEAE BORAGINACEAE
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106
Aechmea pyramidalis
107
Aechmea pyramidalis
108
Guzmania
monostachia
109
Guzmania
monostachia
110
Pitcarnia
unilateralis
BROMELIACEAE BROMELIACEAE BROMELIACEAE BROMELIACEAE BROMELIACEAE
111
Pitcarnia unilateralis
112
Tillandsia disticha
113
Tillandsia disticha
114
Bursera graveolens
115
Bursera graveolens
BROMELIACEAE BROMELIACEAE BROMELIACEAE BURSERACEAE BURSERACEAE
116
Bursera graveolens
117
Rhipsalis micrantha
118
Rhipsalis micrantha
119
Selenicerus sp.
120
Selenicerus sp.
BURSERACEAE CACTACEAE CACTACEAE CACTACEAE CACTACEAE
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121
Hippobroma
longiflora
122
Hippobroma
longiflora
123
Trema micranthum
124
Trema micranthum
125
Canna sp.
CAMPANULACEAE CAMPANULACEAE CANNABACEAE CANNABACEAE CANNACEAE
126
Canna sp.
127
Canna sp.
128
Canna sp.
129
Canna sp.
130
Cynophalla sp.
CANNACEAE CANNACEAE CANNACEAE CANNACEAE CAPPARACEAE
131
Cynophalla sp.
132
Morisonia cf.
bonifazianum
133
Morisonia cf.
bonifazianum
134
Carica papaya
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Carica papaya
CAPPARACEAE CAPPARACEAE CAPPARACEAE CARICACEAE CARICACEAE
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136
Cleome sp.
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Cleome sp.
138
Cleome sp.
139
Garcinia intermedia
140
Garcinia intermedia
CLEOMACEAE CLEOMACEAE CLEOMACEAE CLUSIACEAE CLUSIACEAE
141
Camonea umbellata
142
Camonea umbellata
143
Camonea umbellata
144
Ipomea carnea
145
Ipomea ophiodes
CONVOLVULACEAE CONVOLVULACEAE CONVOLVULACEAE CONVOLVULACEAE CONVOLVULACEAE
146
Costus pictus
147
Costus pictus
148
Costus pictus
149
Momordica charantia
150
Momordica
charantia
COSTACEAE COSTACEAE COSTACEAE CUCURBITACEAE CUCURBITACEAE
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151
Momordica charantia
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Carludovica palmata
153
Carludovica palmata
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Carludovica palmata
155
Acalypha sp.
CUCURBITACEAE CYCLANTHACEAE CYCLANTHACEAE CYCLANTHACEAE EUPHORBIACEAE
156
Acalypha sp.
157
Acalypha sp.
158
Brownea coccinea
159
Brownea coccinea
160
Brownea coccinea
EUPHORBIACEAE EUPHORBIACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE
161
Brownea coccinea
162
Browneopsis sp.
163
Browneopsis sp.
164
Browneopsis sp.
165
Calliandra
angustifolia
FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE
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166
Calliandra
angustifolia
167
Centrolobium
ochroxylum
168
Centrosema
virginianum
169
Centrosema
virginianum
170
Centrosema
virginianum
FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE
171
Desmodium incanum
172
Desmodium incanum
173
Desmodium incanum
174
Dioclea sp.
175
Dioclea sp.
FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE
176
Dioclea sp.
177
Entada gigas
178
Erythrina
poeppigiana
179
Erythrina
poeppigiana
180
Erythrina
poeppigiana
FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE
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Gliricidia brenningii
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Gliricidia brenningii
183
Gliricidia brenningii
184
Inga edulis
185
Inga edulis
FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE
186
Inga edulis
187
Inga spectabilis
188
Inga spectabilis
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Inga spectabilis
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Leucaena
leucochepala
FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE
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Leucaena
leucochepala
192
Leucaena
leucochepala
193
Leucaena
leucochepala
194
Mucuna rostrata
195
Mucuna rostrata
FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero-Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
141
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Amarú Ramón Salcedo
1
, Edison García
2
, Paolo Piedrahita
1
, Nelson Jaramillo-Díaz
3
Espinosa”, Universidad Nacional de Loja
Email: ramon@espol.edu.ec Bosques Latitud Cero 16(1), 126-167. 2026 https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2608
196
Mucuna rostrata
197
Myroxylon balsamum
198
Myroxylon balsamum
199
Myroxylon balsamum
200
Neltuma pallida
FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE
201
Neltuma pallida
202
Pseudosamanea
guachapele
203
Pseudosamanea
guachapele
204
Samanea saman
205
Samanea saman
FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE
206
Samanea saman
207
Senna reticulata
208
Senna reticulata
209
Senna reticulata
210
Swartzia haughtii
FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE FABACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
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, Edison García
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, Nelson Jaramillo-Díaz
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211
Swartzia haughtii
212
Swartzia haughtii
213
Swartzia haughtii
214
Chrysothemis
friedrichstaliana
215
Chrysothemis
friedrichstaliana
FABACEAE FABACEAE FABACEAE GESNERIACEAE GESNERIACEAE
216
Diastema
racemiferum
217
Diastema
racemiferum
218
Drymonia sp.
219
Drymonia sp.
220
Drymonia sp.
GESNERIACEAE GESNERIACEAE GESNERIACEAE GESNERIACEAE GESNERIACEAE
221
Heliconia latisphata
222
Heliconia latisphata
223
Heliconia latisphata
224
Heliconia sp.
225
Heliconia sp.
HELICONIACEAE HELICONIACEAE HELICONIACEAE HELICONIACEAE HELICONIACEAE
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226
Hyptis sp.
227
Hyptis sp.
228
Vitex gigantea
229
Vitex gigantea
230
Vitex gigantea
LAMIACEAE LAMIACEAE LAMIACEAE LAMIACEAE LAMIACEAE
231
Vitex gigantea
232
Eschweilera sp.
233
Eschweilera sp.
234
Eschweilera sp.
235
Eschweilera sp.
LAMIACEAE LECYTHIDACEAE LECYTHIDACEAE LECYTHIDACEAE LECYTHIDACEAE
236
Grias sp.
237
Grias sp.
238
Grias sp.
239
Grias sp.
240
Grias sp.
LECYTHIDACEAE LECYTHIDACEAE LECYTHIDACEAE LECYTHIDACEAE LECYTHIDACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
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241
Gustavia angustifolia
242
Gustavia angustifolia
243
Gustavia angustifolia
244
Cuphea sp.
245
Cuphea sp.
LECYTHIDACEAE LECYTHIDACEAE LECYTHIDACEAE LYTHRACEAE LYTHRACEAE
246
Apeiba sp.
247
Apeiba sp.
248
Apeiba sp.
249
Ceiba trichistandra
250
Ceiba trichistandra
MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE
251
Guazuma ulmifolia
252
Guazuma ulmifolia
253
Guazuma ulmifolia
254
Matisia cordata
255
Matisia cordata
MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero-Junio, 2026
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256
Melochia lupulina
257
Melochia lupulina
258
Ochroma pyramidale
259
Ochroma pyramidale
260
Pseudobombax millei
MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE
261
Pseudobombax millei
262
Pseudobombax millei
263
Pseudobombax millei
264
Triumfetta
althaeoides
265
Triumfetta althaeoides
MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE
266
Triumfetta althaeoides
267
Urena lobata
268
Urena lobata
269
Calathea lutea
270
Calathea lutea
MALVACEAE MALVACEAE MALVACEAE MARANTHACEAE MARANTHACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
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271
Calathea lutea
272
Arthrostemma
ciliatum
273
Arthrostemma
ciliatum
274
Arthrostemma
ciliatum
275
Cedrela odorata
MARANTHACEAE MELASTOMATACEAE MELASTOMATACEAE MELASTOMATACEAE MELIACEAE
276
Cedrela odorata
277
Cedrela odorata
278
Artocarpus altilis
279
Artocarpus altilis
280
Castilla elastica
MELIACEAE MELIACE MORACEAE MORACEAE MORACEAE
281
Castilla elastica
282
Castilla elastica
283
Castilla elastica
284
Clarisia racemosa
285
Clarisia racemosa
MORACEAE MORACEAE MORACEAE MORACEAE MORACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero-Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
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286
Clarisia racemosa
287
Ficus insipida
288
Ficus insipida
289
Ficus insipida
290
Ficus sp. 1
MORACEAE MORACEAE MORACEAE MORACEAE MORACEAE
291
Ficus sp. 1
292
Ficus sp. 1
293
Ficus sp. 1
294
Ficus sp. 2
295
Ficus sp. 2
MORACEAE MORACEAE MORACEAE MORACEAE MORACEAE
296
Ficus sp. 2
297
Maclura tinctoria
298
Maclura tinctoria
299
Maclura tinctoria
300
Muntingia calabura
MORACEAE MORACEAE MORACEAE MORACEAE MUNTINGIACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
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301
Muntingia calabura
302
Muntingia calabura
303
Eugenia sp.
304
Eugenia sp.
305
Eugenia sp.
MUNTINGIACEAE MUNTINGIACEAE MYRTACEAE MYRTACEAE MYRTACEAE
306
Eugenia sp.
307
Eugenia sp.
308
Psidium guajava
309
Psidium guajava
310
Psidium guajava
MYRTACEAE MYRTACEAE MYRTACEAE MYRTACEAE MYRTACEAE
311
Pisonia aculeata
312
Pisonia aculeata
313
Pisonia aculeata
314
Pisonia aculeata
315
Heisteria acuminata
NYCTAGINACEAE NYCTAGINACEAE NYCTAGINACEAE NYCTAGINACEAE OLACACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero-Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
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316
Heisteria acuminata
317
Heisteria acuminata
318
Dimerandra
rimbachii
319
Dimerandra
rimbachii
320
Eulophia alta
OLACACEAE OLACACEAE ORCHIDACEAE ORCHIDACEAE ORCHIDACEAE
321
Eulophia alta
322
Eulophia alta
323
Notylia ecuadoriensis
324
Notylia ecuadoriensis
325
Notylia ecuadoriensis
ORCHIDACEAE ORCHIDACEAE ORCHIDACEAE ORCHIDACEAE ORCHIDACEAE
326
Oncidium planilabre
327
Oncidium planilabre
328
Oncidium planilabre
329
Prosthechea livida
330
Prosthechea livida
ORCHIDACEAE ORCHIDACEAE ORCHIDACEAE ORCHIDACEAE ORCHIDACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
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331
Prosthechea livida
332 333
Passiflora cisnana
334
Passiflora cisnana
335
Passiflora edulis
ORCHIDACEAE PASSIFLORACEAE PASSIFLORACEAE PASSIFLORACEAE PASSIFLORACEAE
336
Passiflora
macrophylla
337
Passiflora
macrophylla
338
Passiflora punctata
339
Passiflora punctata
340
Passiflora
quadrangularis
PASSIFLORACEAE PASSIFLORACEAE PASSIFLORACEAE PASSIFLORACEAE PASSIFLORACEAE
341
Passiflora
quadrangularis
342
Passiflora
quadrangularis
343
Passiflora vesicaria
344
Passiflora vesicaria
345
Passiflora vesicaria
PASSIFLORACEAE PASSIFLORACEAE PASSIFLORACEAE PASSIFLORACEAE PASSIFLORACEAE
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, Paolo Piedrahita
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346
Phyllanthus sp.
347
Phyllanthus sp.
348
Phyllanthus sp.
349
Peperomia sp. 1
350
Peperomia sp. 1
PHYLLANTHACEAE PHYLLANTHACEAE PHYLLANTHACEAE PIPERACEAE PIPERACEAE
351
Peperomia sp. 2
352
Peperomia sp. 2
353
Peperomia cf.
prostata
354
Peperomia cf.
prostata
355
Piper aduncum
PIPERACEAE PIPERACEAE PIPERACEAE PIPERACEAE PIPERACEAE
356
Piper aduncum
357
Piper aduncum
358
Piper aduncum
359
Piper cf.
tuberculatum
360
Piper cf.
tuberculatum
PIPERACEAE PIPERACEAE PIPERACEAE PIPERACEAE PIPERACEAE
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, Paolo Piedrahita
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3361
Piper peltatum
362
Piper peltatum
363
Piper peltatum
364
Piper sp.
365
Piper sp.
PIPERACEAE PIPERACEAE PIPERACEAE PIPERACEAE PIPERACEAE
366
Piper sp.
367
Piper sp.
368
Guadua angustifolia
369
Guadua angustifolia
370
Triplaris cumingiana
PIPERACEAE PIPERACEAE POACEAE POACEAE POLYGONACEAE
371
Triplaris cumingiana
372
Triplaris cumingiana
373
Heteranthera
reniformis
374
Heteranthera
reniformis
375
Heteranthera
reniformis
POLYGONACEAE POLYGONACEAE PONTEDERIACEAE PONTEDERIACEAE PONTEDERIACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero-Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
153
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, Paolo Piedrahita
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, Nelson Jaramillo-Díaz
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376
Clavija cf. eggersiana
377
Clavija cf.
eggersiana
378
Clavija cf.
eggersiana
379
Clavija cf. eggersiana
380
Gonzalagunia
dodsonii
PRIMULACEAE PRIMULACEAE PRIMULACEAE PRIMULACEAE RUBIACEAE
381
Gonzalagunia
dodsonii
382
Ixora cf. sparsifolia
383
Ixora cf. sparsifolia
384
Ixora cf. sparsifolia
385
Manettia sp.
RUBIACEAE RUBIACEAE RUBIACEAE RUBIACEAE RUBIACEAE
386
Manettia sp.
387
Manettia sp.
388
Pentagonia
involucrata
389
Pentagonia
involucrata
390
Pentagonia
involucrata
RUBIACEAE RUBIACEAE RUBIACEAE RUBIACEAE RUBIACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
154
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, Edison García
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, Paolo Piedrahita
1
, Nelson Jaramillo-Díaz
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Espinosa”, Universidad Nacional de Loja
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391
Rudgea sp.
392
Rudgea sp.
393
Sphinctanthus sp.
394
Sphinctanthus sp.
395
Sphinctanthus sp.
RUBIACEAE RUBIACEAE RUBIACEAE RUBIACEAE RUBIACEAE
396
Zanthoxylum sp.
397
Zanthoxylum sp.
398
Zanthoxylum sp.
399
Talisia setigera
400
Talisia setigera
RUTACEAE RUTACEAE RUTACEAE SAPINDACEAE SAPINDACEAE
401
Talisia setigera
402
Talisia setigera
403
Browallia americana
404
Browallia americana
405
Browallia
americana
SAPINDACEAE SAPINDACEAE SOLANACEAE SOLANACEAE SOLANACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero-Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
155
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province, Ecuador
Amarú Ramón Salcedo
1
, Edison García
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, Paolo Piedrahita
1
, Nelson Jaramillo-Díaz
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Espinosa”, Universidad Nacional de Loja
Email: ramon@espol.edu.ec Bosques Latitud Cero 16(1), 126-167. 2026 https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2608
406
Solanum americanum
407
Solanum americanum
408
Solanum americanum
409
Solanum quitoense
410
Solanum quitoense
SOLANACEAE SOLANACEAE SOLANACEAE SOLANACEAE SOLANACEAE
411
Solanum quitoense
412
Talinum fructicosum
413
Talinum fructicosum
414
Talinum fructicosum
415
Cecropia litoralis
SOLANACEAE TALINACEAE TALINACEAE TALINACEAE URTICACEAE
416
Cecropia litoralis
417
Cecropia litoralis
418
Cecropia litoralis
419
Laportea aestuans
420
Laportea aestuans
URTICACEAE URTICACEAE URTICACEAE URTICACEAE URTICACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
156
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province, Ecuador
Amarú Ramón Salcedo
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, Edison García
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, Paolo Piedrahita
1
, Nelson Jaramillo-Díaz
3
Espinosa”, Universidad Nacional de Loja
Email: ramon@espol.edu.ec Bosques Latitud Cero 16(1), 126-167. 2026 https://doi.org/110.54753/blc.v16i1.2608
421
Laportea aestuans
422
Myriocarpa longipes
423
Myriocarpa longipes
424
Myriocarpa longipes
425
Myriocarpa longipes
URTICACEAE URTICACEAE URTICACEAE URTICACEAE URTICACEAE
426
Pilea sp.
427
Pilea sp.
428
Urera baccifera
429
Urera baccifera
430
Lantana camara
URTICACEAE URTICACEAE URTICACEAE URTICACEAE VERBENACEAE
431
Lantana camara
432
Lantana camara
433
Petrea volubilis
434
Petrea volubilis
435
Petrea volubilis
VERBENACEAE VERBENACEAE VERBENACEAE VERBENACEAE VERBENACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero-Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
157
provincia de Manabí, Ecuador
province, Ecuador
Amarú Ramón Salcedo
1
, Edison García
2
, Paolo Piedrahita
1
, Nelson Jaramillo-Díaz
3
Espinosa”, Universidad Nacional de Loja
Email: ramon@espol.edu.ec Bosques Latitud Cero 16(1), 126-167. 2026 https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2608
436
Stachytarpheta
jamaicensis
437
Stachytarpheta
jamaicensis
438
Cissus sp.
439
Cissus sp.
440
Zamia lindenii
VERBENACEAE VERBENACEAE VITACEAE VITACEAE ZAMIACEAE
441
Zamia lindenii
442
Zamia lindenii
443
Zamia lindenii
444
Attalea colenda
445
Attalea colenda
ZAMIACEAE ZAMIACEAE ZAMIACEAE ARECACEAE ARECACEAE
446
Bactris gasipaes
447
Bactris gasipaes
448
Phytelephas
aequatorialis
449
Phytelephas
aequatorialis
450
Phytelephas
aequatorialis
ARECACEAE ARECACEAE ARECACEAE ARECACEAE ARECACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
158
provincia de Manabí, Ecuador
province, Ecuador
Amarú Ramón Salcedo
1
, Edison García
2
, Paolo Piedrahita
1
, Nelson Jaramillo-Díaz
3
Espinosa”, Universidad Nacional de Loja
Email: ramon@espol.edu.ec Bosques Latitud Cero 16(1), 126-167. 2026 https://doi.org/110.54753/blc.v16i1.2608
451
Selaginella sp.
452
Selaginella sp.
453
Lygodium venustum
454
Lygodium venustum
455
Lygodium venustum
SELAGINELLACEAE SELAGINELLACEAE LYGODIACEAE LYGODIACEAE LYGODIACEAE
456
Niphidium sp.
457
Niphidium sp.
458
Adiantum cf.
serratodentatum
459
Adiantum cf.
serratodentatum
460
Adiantum cf.
serratodentatum
POLYPODIACEAE POLYPODIACEAE PTERIDACEAE PTERIDACEAE PTERIDACEAE
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero-Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
159
provincia de Manabí, Ecuador
province, Ecuador
Amarú Ramón Salcedo
1
, Edison García
2
, Paolo Piedrahita
1
, Nelson Jaramillo-Díaz
3
Espinosa”, Universidad Nacional de Loja
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Tabla 1. Listado de las especies, origen y usos
N° Familia Especie
Nombre
local
Common
name
Nativa Introducida Endémica Usos
1 Acanthaceae
Asystasia
gangetica
African
Coromandel
X
2 Acanthaceae
Aphelandra sp.
X
3 Acanthaceae
Pachystachys
spicata
Cardinals
guad
X
4 Acanthaceae
Pseuderanthemum
cuspidatum
X
5 Acanthaceae
Ruellia blechum
Browne’s
Blechum
X
6 Acanthaceae
Sanchezia
parviflora
X
7 Acanthaceae
Thunbergia
fragrans
Fragrant
Thunbergia
X
8 Acanthaceae
Tetramerium
nervosum
Hairy
fournwort
X
9 Acanthaceae
Trichanthera
gigantea
X
10 Acanthaceae
Nelsonia
canescens
Blue
Pussyleaf
X
11 Achariaceae
Mayna odorata
X
12 Amaranthaceae
Celosia sp.
X
13 Amaryllidaceae
Eucrosia bicolor
X
14 Apocynaceae
Asclepias
curassavica
Mexican
butterfly
weed
X
15 Apocynaceae
Gonolobus sp.
X
16 Apocynaceae
Laubertia boissieri
X
17 Apocynaceae
Macroscepis sp.
X
18 Apocynaceae
Mesechites sp.
X
19 Apocynaceae
Prestonia mollis
X
20 Apocynaceae
Tabernaemontana
sp.
X
21 Araceae
Anthurium sp.
Camacho X
22 Araceae
Caladium bicolor
Heart of
Jesus
X
23 Araceae
Monstera
pinnatipartita
X
24 Araceae
Monstera sp.
Camacho X
25 Araceae
Philodendron sp.
Camachillo X
26 Araceae
Xanthosoma sp.
X
27 Asteraceae
Adenostemma
platyphyllum
X
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
160
provincia de Manabí, Ecuador
province, Ecuador
Amarú Ramón Salcedo
1
, Edison García
2
, Paolo Piedrahita
1
, Nelson Jaramillo-Díaz
3
Espinosa”, Universidad Nacional de Loja
Email: ramon@espol.edu.ec Bosques Latitud Cero 16(1), 126-167. 2026 https://doi.org/110.54753/blc.v16i1.2608
N° Familia Especie
Nombre
local
Common
name
Nativa Introducida Endémica Usos
28 Asteraceae
Ageratum sp.
X
29 Asteraceae
Bidens sp.
X
Medicinal, infusión
usada para dolor de
estómago.
30 Asteraceae
Centratherum
punctatum
Brazilian
bachelor’s
button
X
31 Asteraceae
Cosmos caudatus
Ulam raja X
32 Asteraceae
Emilia fosbergii
Florida
tasseflower
X
33 Asteraceae
Jungia sp.
Papa
begonia
X
Medicinal, para
dolores de cabeza.
34 Asteraceae
Liabum eggersii
X
35 Asteraceae
Pseudogynoxys
engleri
X
36 Asteraceae
Synedrella sp.
X
37 Begoniaceae
Begonia sp.
X
38 Bignoniaceae
Amphilophium
crucigerum
Monkey’s
comb
X
39 Bignoniaceae
Crescentia cujete
Mate
Calabash
tree
X
Fruto seco usado para
llevar agua; medicinal
como infusión. Cerca
viva.
40 Bignoniaceae
Handroanthus
chrysanthus
Guayacán
Golden
trumpet tree
X Maderable.
41 Bignoniaceae
Tabebuia rosea
Guayacán
rosa
Rosy
trumpet tree
X
42 Bixaceae
Cochlospermum
vitifolium
Bototillo
Buttercup
tree
X
43 Bixaceae
Bixa orellana
Achiote Lipstick tree X Alimenticio.
44 Boraginaceae
Cordia alliodora
Laurel
blanco
Spanish elm X Maderable.
45 Boraginaceae
Cordia lutea
Yellow
cordia
X
Gel del fruto usado
para peinarse.
46 Boraginaceae
Heliotropium
rufipilum
X
47 Boraginaceae
Myriopus sp.
X
48 Boraginaceae
Tournefortia sp.
X
49 Bromeliaceae
Aechmea
pyramidalis
X
50 Bromeliaceae
Guzmania
monostachia
Piñuela
West Indian
tufted
airplant
X
51 Bromeliaceae
Pitcarnia
unilateralis
X
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero-Junio, 2026
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161
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, Edison García
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, Paolo Piedrahita
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, Nelson Jaramillo-Díaz
3
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Email: ramon@espol.edu.ec Bosques Latitud Cero 16(1), 126-167. 2026 https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2608
N° Familia Especie
Nombre
local
Common
name
Nativa Introducida Endémica Usos
52 Bromeliaceae
Tilandsia disticha
Air plant X
53 Burseraceae
Bursera
graveolens
Palo santo
Sacred
wood
X
Madera usada para
ahuyentar mosquitos.
54 Cactaceae
Rhipsalis
micrantha
X
55 Cactaceae
Selenicerus sp.
X
56 Campanulaceae
Hippobroma
longiflora
Star of
Bethlehem
X
57 Cannabaceae
Trema micranthum
Sapán de
paloma
Jamaican
nettletree
X Cerca viva.
58 Cannaceae
Canna sp.
X
59 Capparaceae
Cynophalla sp.
X
60 Capparaceae
Morisonia cf.
bonifazianum
X
61 Caricaceae
Carica papaya
Papaya Papaya X Alimenticio.
62 Cleomaceae
Cleome sp.
X
63 Clusiaceae
Garcinia
intermedia
Lemon drop
mangosteen
X
64 Convolvulaceae
Camonea
umbellata
Hogvine X
65 Convolvulaceae
Ipomea carnea
Bush
morning
glory
X
66 Convolvulaceae
Ipomea ophiodes
Snake
morning
glory
X
67 Costaceae
Costus pictus
Insulin plant X
68 Cucurbitaceae
Momordica
charantia
Bitter melon X
69 Cyclanthaceae
Carludovica
palmata
Paja
toquilla
Panama hat
plant
X
70 Euphorbiaceae
Acalypha sp.
X
71 Fabaceae
Brownea coccinea
Flor de
mayo
Scarlet
flame bean
X
72 Fabaceae
Browneopsis sp.
X
73 Fabaceae
Calliandra
angustifolia
X
74 Fabaceae
Centrolobium
ochroxylum
Amarillo X
75 Fabaceae
Centrosema
virginianum
Sourred
butterfly pea
X
Empleada para hacer
sonidos con la flor,
imitando a ratones.
76 Fabaceae
Desmodium
incanum
Creeping
beggarwed
X
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
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N° Familia Especie
Nombre
local
Common
name
Nativa Introducida Endémica Usos
77 Fabaceae
Dioclea sp.
X
78 Fabaceae
Entada gigas
Bejuco de
Pascuenca
Sea bean X
Usada para hacer
pitos.
79 Fabaceae
Erythrina
poeppigiana
Caraca
Mountain
immortelle
X
80 Fabaceae
Gliricidia
brenningii
Yuca de
ratón
X Cerca viva.
81 Fabaceae
Inga edulis
Guaba
Ice cream
bean
X Alimenticio.
82 Fabaceae
Inga spectabilis
Guaba de
machete
Machete ice
cream bean
X Alimenticio.
83 Fabaceae
Leucaena
leucochepala
Leucaena
White
leadtree
X Cerca viva.
84 Fabaceae
Mucuna rostrata
X
85 Fabaceae
Myroxylon
balsamum
Balsa de
montaña
Peruvian
balsam
X Maderable.
86 Fabaceae
Neltuma pallida
Algarrobo Algarroba X Cerca viva.
87 Fabaceae
Pseudosamanea
guachapele
Guachapelí X Maderable.
88 Fabaceae
Samanea saman
Samán Monkeypod X Maderable.
89 Fabaceae
Senna reticulata
X Cerca viva.
90 Fabaceae
Swartzia haughtii
X X
91 Gesneriaceae
Chrysothemis
friedrichstaliana
X
92 Gesneriaceae
Diastema
racemiferum
X
93 Gesneriaceae
Drymonia sp.
X
94 Heliconiaceae
Heliconia
latisphata
Expanded
lobsterclaw
X
95 Heliconiaceae
Heliconia sp.
X
96 Lamiaceae
Hyptis sp.
X
97 Lamiaceae
Vitex gigantea
Pechiche X Alimenticio.
98 Lecythidaceae
Eschweilera sp.
X
99 Lecythidaceae
Grias sp.
X
100 Lecythidaceae
Gustavia
angustifolia
Bola de toro X
101 Lythraceae
Cuphea sp.
X
102 Malvaceae
Apeiba sp.
X
103 Malvaceae
Ceiba
trichistandra
Ceibo Kapok tree X
104 Malvaceae
Guazuma ulmifolia
Guasmo
West indian
elm
X
Medicinal, infusión
usada para tratar
gripe.
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero-Junio, 2026
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N° Familia Especie
Nombre
local
Common
name
Nativa Introducida Endémica Usos
105 Malvaceae
Matisia cordata
Sapote
South
american
sapote
X Alimenticio.
106 Malvaceae
Melochia lupulina
X
107 Malvaceae
Ochroma
pyramidale
Balsa Balsa X Maderable.
108 Malvaceae
Pseudobombax
millei
X
109 Malvaceae
Triumfetta
althaeoides
X
110 Malvaceae
Urena lobata
Caesarweed X
111 Malvaceae
Calathea lutea
Bijao
Cigar
calatea
X
Hojas usadas en
preparación de
alimentos.
112 Melastomataceae
Arthrostemma
ciliatum
Pinkfringe X
113 Meliaceae
Cedrela odorata
Cedro
blanco
Spanish
cedar
X Maderable.
114 Moraceae
Artocarpus altilis
Árbol de
pan
Breadfruit X Alimenticio.
115 Moraceae
Castilla elastica
Caucho Rubber tree X
Látex usado como
caucho, para reparar
botas.
116 Moraceae
Clarisia racemosa
Moral bobo X
Maderable, para
puentes por su
resistencia.
117 Moraceae
Ficus insipida
X
118 Moraceae
Ficus sp1.
X
119 Moraceae
Ficus sp2.
X
120 Moraceae
Maclura tinctoria
Moral fino Fustic tree X Maderable.
121 Muntingiaceae
Muntingia
calabura
Niguito
Jaimaican
cherry
X Alimenticio.
122 Myrtaceae
Eugenia sp.
X
123 Myrtaceae
Psidium guajava
Guayaba Guava X Alimenticio.
124 Nyctaginaceae
Pisonia aculeata
Uña de gato Devil’s claw X
125 Olacaceae
Heisteria
acuminata
X
126 Orchidaceae
Dimerandra
rimbachii
X X
127 Orchidaceae
Eulophia alta
Wild coco X
128 Orchidaceae
Notylia
ecuadoriensis
X X
129 Orchidaceae
Oncidium
planilabre
Flat-lip
oncidium
X
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
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N° Familia Especie
Nombre
local
Common
name
Nativa Introducida Endémica Usos
130 Orchidaceae
Prosthechea livida
Bluish
prosthechea
X
131 Passifloraceae
Passiflora cisnana
X
132 Passifloraceae
Passiflora edulis
Maracuyá
Passion
fruit
X Alimenticio
133 Passifloraceae
Passiflora
macrophylla
Tree passion
flower
X
134 Passifloraceae
Passiflora
punctata
X
135 Passifloraceae
Passiflora
quadrangularis
Badea
Giant
granadilla
X Alimenticio
136 Passifloraceae
Passiflora
vesicaria
Granadilla
de monte
X Alimenticio.
137 Phyllanthaceae
Phyllanthus sp.
X
138 Piperaceae
Peperomia sp1.
X
139 Piperaceae
Peperomia sp2.
X
140 Piperaceae
Peperomia cf.
prostata
X
141 Piperaceae
Piper aduncum
Matico
Spiked
matico
X Medicinal.
142 Piperaceae
Piper cf.
tuberculatum
Pomoncillo X Cerca viva, medicinal.
143 Piperaceae
Piper peltatum
Pomoncillo
de mayo
Monkey’s
hand
X Medicinal.
144 Piperaceae
Piper sp.
X
145 Poaceae
Guadua
angustifolia
Guadua
Colombian
timber
bambo
X
Construcción,
artesanía.
146 Polygonaceae
Triplaris
cumingiana
Fernán
Sánchez
Ant tree X
147 Pontederiaceae
Heteranthera
reniformis
Kidneyleaf
mudplantain
X
148 Primulaceae
Clavija cf.
eggersiana
X
149 Rubiaceae
Gonzalagunia
dodsonii
X X
150 Rubiaceae
Ixora cf.
sparsifolia
X
151 Rubiaceae
Manettia sp.
X
152 Rubiaceae
Pentagonia
involucrata
X
153 Rubiaceae
Rudgea sp.
X
154 Rubiaceae
Sphinctanthus sp.
X
155 Rutaceae
Zanthoxylum sp.
X
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, Paolo Piedrahita
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N° Familia Especie
Nombre
local
Common
name
Nativa Introducida Endémica Usos
156 Sapindaceae
Talisia setigera
Cebo de
mico
X Alimenticio.
157 Solanaceae
Browallia
americana
Bush violet X
158 Solanaceae
Solanum
americanum
American
black
nightshade
X
159 Solanaceae
Solanum quitoense
Naranjilla X Alimenticio.
160 Talinaceae
Talinum
fructicosum
Ceylon
spinach
X
161 Urticaceae
Cecropia litoralis
Guarumo X Medicinal.
162 Urticaceae
Laportea aestuans
West indian
woodnettle
X
163 Urticaceae
Myriocarpa
longipes
Cola de
caballo
X
164 Urticaceae
Pilea sp.
X
165 Urticaceae
Urera baccifera
Scratchbush X
166 Verbenaceae
Lantana camara
Common
lantana
X
167 Verbenaceae
Petrea volubilis
Queen’s
wreath
X
168 Verbenaceae
Stachytarpheta
jamaicensis
Blue
porterweed
X
169 Vitaceae
Cissus sp.
X
170 Zamiaceae
Zamia lindenii
Tobacco
palm
X
171 Arecaceae
Attalea colenda
Palma real X
Elaboración de techos
y petates.
172 Arecaceae
Bactris gasipaes
Peach-palm X
Alimenticio, usada
en bebidas como la
chucula.
173 Arecaceae
Phytelephas
aequatorialis
Tagua
Ecuadorian
ivory palm
X
Alimenticio,
elaboración de
botones y artesanías.
174 Selaginellaceae
Selaginella sp.
X
175 Lygodiaceae
Lygodium
venustum
X
176 Polypodiaceae
Niphidium sp
X
177 Pteridaceae
Adiantum cf.
serratodentatum
Plant leaf
dorsal fern
X
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
166
provincia de Manabí, Ecuador
province, Ecuador
Amarú Ramón Salcedo
1
, Edison García
2
, Paolo Piedrahita
1
, Nelson Jaramillo-Díaz
3
Espinosa”, Universidad Nacional de Loja
Email: ramon@espol.edu.ec Bosques Latitud Cero 16(1), 126-167. 2026 https://doi.org/110.54753/blc.v16i1.2608
Tabla 2. Estado de conservación de las especies endémicas
Especie Familia Estado de conservación IUCN
Sanchezia parviflora
Acanthaceae LC
Phytelephas aequatorialis
Arecaceae NT
Pseudogynoxys engleri
Asteraceae EN
Pitcarnia unilateralis
Bromeliaceae VU
Swartzia haughtii
Fabaceae VU
Dimerandra rimbachii
Orchidaceae NT
Notylia ecuadoriensis
Orchidaceae VU
Gonzalagunia dodsonii
Rubiaceae CR
Talisia setigera
Sapindaceae EN
Figura 6. Número de especies por familia
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero-Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
167
provincia de Manabí, Ecuador
province, Ecuador
Amarú Ramón Salcedo
1
, Edison García
2
, Paolo Piedrahita
1
, Nelson Jaramillo-Díaz
3
Espinosa”, Universidad Nacional de Loja
Email: ramon@espol.edu.ec Bosques Latitud Cero 16(1), 126-167. 2026 https://doi.org/10.54753/blc.v16i1.2608
AGRADECIMIENTO
Queremos agradecer a la empresa Arbofino y Bosquefino a la Escuela Superior Politécnica del Litoral (ESPOL) y al Herbario
“Reinaldo Espinosa” por su ayuda en las diferentes etápas de la producción de esta guía.
CONTRIBUCIÓN DE AUTORES
R, A: Investigación, Metodología, Conceptualización, Escritura-Borrador original, Análisis formal; G, E: Recursos; P, P:
Metodologia, Supervisión, Investigación; J, N: Escritura- Revisión y edición, Curación de datos.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Dodson, C. H., Gentry, A. H., & Valverde, F. M. (1985). La flora de Jauneche: Los Ríos, Ecuador. Quito: Banco Central del
Ecuador
Gentry, A. (1993). A Field Guide to the Families and Genera of Woody Plants of Northwest South America (Colombia, Ecuador,
Perú). Washington, DC. ISBN 1-881173-01-1
Jørgensen, P. & León-Yánez, S. (1999). Catalogue of Vascular Plants of Ecuador. Missouri Botanical Garden. San Louis. Missouri.
USA.
León-Yánez S. Valencia R. Pitman N. Endara L. Ulloa Ulloa C. & Navarrete H. (2011). Libro Rojo de las Plantas Endémicas del
Ecuador. 2ª edn. Publicaciones del Herbario QCA. Pontificia Universidad Católica del Ecuador. Quito.
Ministerio del Ambiente del Ecuador. (2013). Sistema de Clasificación de los Ecosistemas del Ecuador Continental. Subsecretaría
de Patrimonio Natural. Quito.
Tropicos.org/home.(https://www.tropicos.org/home) [acceso 20.10.2025]
World Flora Online Plant List. (2022). Explore the data. https://wfoplantlist.org/plant-list/
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero - Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
168
Habitantes sigilosas de los Andes.
Polylepis del Ecuador
Secretive inhabitants of the Andes.
Polylepis forests of Ecuador
Eduardo Obando
1,2
, Mayra Caiza
1
*
, Cecilia Castañeda
1
, Francisco Tobar
1,3
1. Fundación Ecuatoriana para la Investigación y Conservación de las Aves y sus Hábitats. Quito, Ecuador.
2. Consultora Ambiental, Desarrollo y Turismo Sostenible (CADYSOT). Ibarra, Ecuador.
3. Instituto Nacional de Biodiversidad, Herbario Nacional del Ecuador QCNE ., Quito, Ecuador.
Email: mayrafer002@gmail.com Bosques Latitud Cero 16(1), 168-178. 2026 https://doi.org/110.54753/blc.v16i1.2634
RECIBIDO: 05/10/2025 ACEPTADO: 01/12/2025 PUBLICADO: 05/01/2026
Publicado por la Universidad Nacional de Loja,
bajo licencia Creative Commons 4.0
Figura 1. Árbol adulto de Polylepis reticulata en el Parque Nacional
Cotacachi Cayapas.
Fotografía de Francisco Tobar.
Los bosques de Polylepis son ecosistemas altoandinos de
montaña, caracterizados por su ubicación en zonas rocosas,
laderas escarpadas, valles glaciares. Su singularidad radica
en albergar una biodiversidad excepcional, con numerosas
especies endémicas y especializadas que dependen de esos
hábitats para sobrevivir (Aucca & Ramsay, 2005).
propuestos por el Ministerio del Ambiente del Ecuador
(2013), los bosques de Polylepis están incluidos dentro de la
denominación: Bosque siempreverde del Páramo (BsSn01).
Estos bosques se presentan como fragmentos aislados
dentro de una matriz cubierta por vegetación herbácea o
arbustiva. Estos singulares ecosistemas desempeñan un
papel fundamental en la mitigación del cambio climático,
debido a su capacidad para almacenar carbono, estabilizar
Se estima que más del 90 % de la cobertura de los bosques de
Polylepis históricamente se han perdido debido a amenazas
de carbón, leña, madera y principalmente a la expansión
de la frontera agrícola (Boza-Espinoza & Kessler, 2022;
Cuyckens & Renison, 2018).
Bosques Latitud Cero 16(1): Enero-Junio, 2026
ISSNe: 2528-7818
169
Habitantes sigilosas de los Andes.
Polylepis del Ecuador
Secretive inhabitants of the Andes.
Polylepis forests of Ecuador
Eduardo Obando
1,2
, Mayra Caiza
1
*
, Cecilia Castañeda
1
, Francisco Tobar
1,3
1. Fundación Ecuatoriana para la Investigación y Conservación de las Aves y sus Hábitats. Quito, Ecuador.
2. Consultora Ambiental, Desarrollo y Turismo Sostenible (CADYSOT). Ibarra, Ecuador.
3. Instituto Nacional de Biodiversidad, Herbario Nacional del Ecuador QCNE ., Quito, Ecuador.
Email: mayrafer002@gmail.com Bosques Latitud Cero 16(1), 168-178. 2026 https://doi.org/110.54753/blc.v16i1.2634
El calentamiento global representa una amenaza adicional. El aumento de las temperaturas está provocando un desplazamiento
altitudinal de los bosques de Polylepis hacia zonas más elevadas, limitando aún más su hábitat y aumentando su vulnerabilidad,
al enfrentar condiciones menos favorables sin posibilidad de migración superior (Caballero-Villalobos et al., 2021; Chanove-
Manrique & Cárdenas-Pillco, 2024). La pérdida de hábitat y la fragmentación del paisaje son factores que impulsan cambios en la
Polylepis, y su supervivencia
está estrechamente vinculada a la integridad de estos ecosistemas (Astudillo et al., 2020; Sevillano-Ríos & Rodewald, 2017).
Los bosques dominados por el género Polylepis se encuentran entre los más amenazados del neotrópico, abarca unas 47 especies
distribuidas desde el centro de Venezuela hasta el Norte de Argentina y Chile. Su mayor diversidad está en Perú con 25 especies,
Bolivia con 15 especies, en tercer lugar, está Ecuador con 10 especies nativas: Polylepis humboldtii T. Boza, Romol. & M. Kessler,
Polylepis incana Kunth, Polylepis lanuginosa Kunth, Polylepis longipilosa T. Boza, Romol. & M. Kessler, Polylepis loxensis T.
Boza, Romol. & M. Kessler, Polylepis microphylla (Wedd.) Bitter, Polylepis ochreata (Wedd.) Bitter, Polylepis pauta Hieron.,
Polylepis reticulata Hieron, y Polylepis simpsoniae T. Boza & M. Kessler) y una introducida Polylepis racemosa y en el otro
extremo se encuentra Chile y Venezuela con dos y una especie respectivamente.
Los bosques de Polylepis
(Fjeldsà, 2002). En Ecuador, investigaciones sobre fragmentos de Polylepis en el Parque Nacional Cajas evidenciaron que tanto
fragmentos resulta clave para mantener comunidades tanto de aves especialistas de bosque y generalistas (Tinoco et al., 2013). Esta
hábitats y una cobertura vegetal reducida (Astudillo et al., 2020; Fjeldsa, 1993).
El Picocono Gigante (Conirostrum binghami), es una especie
especialista de los bosques de Polylepis que se ha visto amenazada
por su fragmentación. La conservación de esta especie, al igual
que la de otras especies especialistas, depende de las accione de
protección de bosques remanentes, expansión de áreas protegidas
y reducción de amenazas como incendios, tala y sobrepastoreo;
adicionalmente, promover la restauración en áreas degradadas que
permitan la conectividad, y llevar a cabo actividades de educación
ambiental.
Metodología
Durante este estudio, la observación de aves en bosques de
Polylepis se realizó exclusivamente mediante puntos de muestreo,
sin intervención directa sobre los animales. No se emplearon
transectos ni otras técnicas de monitoreo manipulatorio; únicamente
se llevaron a cabo observaciones sistemáticas desde ubicaciones
de las entidades públicas y privadas involucradas.
Área de estudio
Se evaluaron tres localidades con presencia de bosques nativos de
Polylepis en el norte y centro del Ecuador (Figura 2). El páramo de
Piñan en la provincia de Imbabura (0.481735, -78.335462), Ponce
Paluguillo - Papallacta en la provincia de Pichincha (-0.317618,
-78.225420) y Yanahurco (-0.725582, -78.262598), en la provincia
de Napo. Estas áreas están comprendidas entre los 3592 y 4102
metros de altitud.
Figura 2. Localidades muestreadas para el registro de la
diversidad de aves que interactúan con los bosques de Polylepis.
Elaborado por Eduardo Obando.
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Polylepis del Ecuador
Secretive inhabitants of the Andes.
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Eduardo Obando
1,2
, Mayra Caiza
1
*
, Cecilia Castañeda
1
, Francisco Tobar
1,3
1. Fundación Ecuatoriana para la Investigación y Conservación de las Aves y sus Hábitats. Quito, Ecuador.
2. Consultora Ambiental, Desarrollo y Turismo Sostenible (CADYSOT). Ibarra, Ecuador.
3. Instituto Nacional de Biodiversidad, Herbario Nacional del Ecuador QCNE ., Quito, Ecuador.
Email: mayrafer002@gmail.com Bosques Latitud Cero 16(1), 168-178. 2026 https://doi.org/110.54753/blc.v16i1.2634
Figura 3. Paisajes de los parches de Polylepis en donde se realizó
el muestreo de la avifauna. Localidad 1, páramo de Piñan en la
provincia de Imbabura: A) Laderas del cerro Yanahurco de Piñán,
B) Sector de Pantaví (Piñán). Localidad 2, Ponce Paluguillo-
Papallacta, provincia de Pichincha: C) Sector de Ponce Paluguillo
(Papallacta), D) Parches de Polylepis del sector La Virgen
(Papallacta). Localidad 3, Yanahurco en la provincia de Napo: E)
Sector de Yanahurco, F) Sector de Chigtapamba.
Colección de datos
El esfuerzo de muestreo varió entre cinco y nueve días por localidad. En cada localidad se establecieron entre 15 y 40 puntos de
conteo. Este número varió en función del área total de los parches de Polylepis y la accesibilidad. La información se levantó entre
los meses de julio y diciembre del año 2023. Se realizaron tres expediciones a cada localidad alternando los meses disponibles,
con excepción de Yanahurco en donde se realizaron dos expediciones debido al difícil acceso. Para el monitoreo de aves se utilizó
el método de puntos de conteo. Se ubicaron los puntos a una distancia mínima de 150 metros entre ellos para evitar reconteos
de individuos y se estableció un radio de conteo de 30 metros. En cada punto se realizó el registro de aves por un lapso de 15
minutos. Se obtuvo información de la avifauna presente en las localidades a través de observaciones directas y registros auditivos.
Se realizaron observaciones en la mañana, entre las 06h00 y 10h00. Este lapso varió en algunas ocasiones debido a la presencia de
lluvia o a la baja visibilidad a causa de la neblina. Se registraron únicamente los individuos que se encontraron en los parches de
Polylepis.
Para los registros visuales se usaron binoculares Bushnell Trophy 10x42, una cámara Nikon D500 con el lente Nikon 200 – 500 5.6.
Para grabar las vocalizaciones de las aves se usó un celular Samsung A54 con un micrófono externo CKMOVA VCM3 Pro. Para la
se usó un recopilado de cantos de aves del Ecuador (Moore et al., 2013).
2024). De cada especie se determinó su estado de conservación a nivel nacional en base a Freile et al. (2019).
Resultados
Láminas de caracterización de datos de plantas (LCDP).
Para este estudio se evaluaron remanentes boscosos de Polylepis incana, Polylepis pauta, Polylepis reticulata y Polylepis ochreata.
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, Mayra Caiza
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, Cecilia Castañeda
1
, Francisco Tobar
1,3
1. Fundación Ecuatoriana para la Investigación y Conservación de las Aves y sus Hábitats. Quito, Ecuador.
2. Consultora Ambiental, Desarrollo y Turismo Sostenible (CADYSOT). Ibarra, Ecuador.
3. Instituto Nacional de Biodiversidad, Herbario Nacional del Ecuador QCNE ., Quito, Ecuador.
Email: mayrafer002@gmail.com Bosques Latitud Cero 16(1), 168-178. 2026 https://doi.org/110.54753/blc.v16i1.2634
Figura 4. Lámina LCDP de Polylepis incana. Diseño y elaboración
por Cecilia Castañeda.
Fotografías por Francisco Tobar.
Figura 5. Lámina LCDP de Polylepis pauta. Diseño y elaboración
por Cecilia Castañeda.
Fotografías por Francisco Tobar.
Figura 6. Lámina LCDP de Polylepis reticulata. Diseño y
elaboración por Cecilia Castañeda.
Fotografías por Francisco Tobar.
Figura 7. Lámina LCDP de Polylepis ochreata. Diseño y elaboración
por Cecilia Castañeda.
Fotografías por Francisco Tobar.
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, Mayra Caiza
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, Cecilia Castañeda
1
, Francisco Tobar
1,3
1. Fundación Ecuatoriana para la Investigación y Conservación de las Aves y sus Hábitats. Quito, Ecuador.
2. Consultora Ambiental, Desarrollo y Turismo Sostenible (CADYSOT). Ibarra, Ecuador.
3. Instituto Nacional de Biodiversidad, Herbario Nacional del Ecuador QCNE ., Quito, Ecuador.
Email: mayrafer002@gmail.com Bosques Latitud Cero 16(1), 168-178. 2026 https://doi.org/110.54753/blc.v16i1.2634
Registro de Aves
Se registraron un total de 49 especies en las tres localidades donde se llevó a cabo el muestreo: 27 en Piñan, 33 en Papallacta y 33
en Yanahurco. Las especies registradas se agrupan en 18 familias y 7 órdenes. Las familias con mayor diversidad fueron Thraupidae
(11 especies), Trochilidae (9 especies), Tyrannnidae (6 especies), Furnariidae (5 especies) y Gallaridae (3 especies). En las tres
localidades las especies en común más abundantes fueron Grallaria quitensis y Cistothorus platensis.
No se han registraron especies amenazadas a nivel global, pero se registraron dos especies amenazadas a nivel nacional en base
a los criterios de la lista roja de aves del Ecuador (Freile et al., 2019). Estas especies son Chalcostigma stanleyi
Vulnerable (Figura 8. C) y Conirostrum binghami
Se realizaron dos registros de Phyllomyias uropygialis (Figura 9. H). Un registro en Piñán a 3813 m s.n.m. y un registro en
Papallacta a 3608 m s.n.m. Estos registros amplían el rango de distribución altitudinal de esta especie. Según Freile et al. (2019), el
rango extremo al que se ha registrado P. uropygialis es de 1600 a 3400 m s.n.m.
Figura 8. Fotografías de algunas especies
registradas en los parches de Polylepis
muestreados en Papallacta, Yanahurco y Piñán.
A) Gavilán Variable (Geranoaetus polyosoma),
B) Búho Coronado (Bubo virginianus), C)
Picoespina Dorsiazul (Chalcostigma stanleyi),
D) Metalura Verde (Metallura williami), E)
Estrellita Ecuatoriana hembra (Oreotrochilus
chimborazo), F) Gralaria Leonada (Grallaria
quitensis), G) Alinaranja Lomirrojo
(Cnemarchus erythropygius), H) Tiranolete
Lomileonado (Phyllomyias uropygialis), I)
Soterrey Sabanero (Cistothorus platensis), J)
Picocono Gigante (Conirostrum binghami),
K) Quinuero Dorsioscuro (Urothraupis
stolzmanni), Candelita de Anteojos (Myioborus
melanocephalus).
Fotografías por Eduardo Obando.
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, Mayra Caiza
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2. Consultora Ambiental, Desarrollo y Turismo Sostenible (CADYSOT). Ibarra, Ecuador.
3. Instituto Nacional de Biodiversidad, Herbario Nacional del Ecuador QCNE ., Quito, Ecuador.
Email: mayrafer002@gmail.com Bosques Latitud Cero 16(1), 168-178. 2026 https://doi.org/110.54753/blc.v16i1.2634
1
Geranoaetus polyosoma
2
Systellura longirostris
3
Ampelion rubrocristatus
4
Phalcoboenus
carunculatus
5
Spinus magellanicus
ACCIPITRIDAE CAPRIMULGIDAE COTINGIDAE FALCONIDAE FRINGILLIDAE
6
Asthenes fuliginosa
7
Cinclodes albidiventris
8
Cinclodes excelsior
9
Leptasthenura andicola
10
Margarornis squamiger
FURNARIIDAE FURNARIIDAE FURNARIIDAE FURNARIIDAE FURNARIIDAE
11
Grallaria quitensis
12
Grallaria squamigera
13
Orochelidon murina
14
Myioborus
melanocephalus
15
Myiothlypis
nigrocristata
GRALLARIIDAE GRALLARIIDAE HIRUNDINIDAE PARULIDAE PARULIDAE
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, Cecilia Castañeda
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1,3
1. Fundación Ecuatoriana para la Investigación y Conservación de las Aves y sus Hábitats. Quito, Ecuador.
2. Consultora Ambiental, Desarrollo y Turismo Sostenible (CADYSOT). Ibarra, Ecuador.
3. Instituto Nacional de Biodiversidad, Herbario Nacional del Ecuador QCNE ., Quito, Ecuador.
Email: mayrafer002@gmail.com Bosques Latitud Cero 16(1), 168-178. 2026 https://doi.org/110.54753/blc.v16i1.2634
16
Atlapetes latinuchus
17
Atlapetes pallidinucha
18
Scytalopus opacus
19
Gallinago jamesoni
20
Bubo virginianus
PASSERELLIDAE PASSERELLIDAE RHINOCRYPTIDAE SCOLOPACIDAE STRIGIDAE
21
Anisognathus
igniventris
22
Catamenia homochroa
23
Catamenia inornata
24
Conirostrum binghami
25
Diglossa cyanea
THRAUPIDAE THRAUPIDAE THRAUPIDAE THRAUPIDAE THRAUPIDAE
26
Diglossa humeralis
27
Dubusia taeniata
28
Geospizopsis unicolor
29
Urothraupis stolzmanni
30
Aglaeactis cupripennis
THRAUPIDAE THRAUPIDAE THRAUPIDAE THRAUPIDAE TROCHILIDAE
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2. Consultora Ambiental, Desarrollo y Turismo Sostenible (CADYSOT). Ibarra, Ecuador.
3. Instituto Nacional de Biodiversidad, Herbario Nacional del Ecuador QCNE ., Quito, Ecuador.
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31
Chalcostigma herrani
32
Chalcostigma stanleyi
33
Eriocnemis luciani
34
Lesbia victoriae
35
Metallura tyrianthina
TROCHILIDAE TROCHILIDAE TROCHILIDAE TROCHILIDAE TROCHILIDAE
36
Metallura tyrianthina
37
Metallura williami
38
Oreotrochilus
chimborazo
39
Ramphomicron
microrhynchum
40
Cistothorus platensis
TROCHILIDAE
TROCHILIDAE TROCHILIDAE TROCHILIDAE TROCHILIDAE
41
Turdus fuscater
42
Anairetes parulus
43
Cnemarchus
erythropygius
44
Elaenia albiceps
45
Mecocerculus
leucophrys
TURDIDAE TYRANNIDAE TYRANNIDAE TYRANNIDAE TYRANNIDAE
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2. Consultora Ambiental, Desarrollo y Turismo Sostenible (CADYSOT). Ibarra, Ecuador.
3. Instituto Nacional de Biodiversidad, Herbario Nacional del Ecuador QCNE ., Quito, Ecuador.
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46
Ochthoeca fumicolor
47
Phyllomyias uropygialis
TYRANNIDAE TYRANNIDAE
Litado de especies de los bosques de Polylepis
Las aves fueron registradas mediante detección visual y auditiva en bosques de Polylepis de tres localidades del centro-norte
del Ecuador: Papallacta, Piñán y la hacienda Yanahurco. Las especies observadas interactuaron estrechamente con los árboles
de Polylepis, utilizándolos como refugio, sitios de percha y forrajeo, así como fuente de alimento para especies granívoras que
registrada.
Tabla 1. Listado de especies registradas en los bosques Polylepis de Papallacta (A), Piñán (B) y Yanahurco (C)
N
Familia
Taxón
Nombre común Nombre en inglés A B C
1
Accipitridae
Geranoaetus polyosoma
Gavilán Variable Variable Hawk Carnívoro X
2
Caprimulgidae
Systellura longirostris
Chotacabras Alifajeado Band-winged Nightjar Insectívoro X
3
Cotingidae
Ampelion rubrocristatus
Continga Crestirroja Red-crested Cotinga Frugívoro X X X
4
Falconidae
Phalcoboenus
carunculatus
Caracara Carunculado Carunculated Caracara Omnívoro X
5
Fringillidae
Spinus magellanicus
Jilguero Encapuchado Hooded Siskin Granívoro X X X
6
Furnariidae
Asthenes fuliginosa
Colicardo Barbiblanco White-chinned Thistletail Insectívoro X X
7
Furnariidae
Cinclodes albidiventris
Cinclodes Alicastaño Chestnut-winged Cinclodes Insectívoro X X
8
Furnariidae
Cinclodes excelsior
Cinclodes Piquigrueso Stout-billed Cinclodes Insectívoro X X
9
Furnariidae
Leptasthenura andicola
Tijeral Andino Andean Tit-Spinetail Insectívoro X X X
10
Furnariidae
Margarornis squamiger
Subepalo Perlado Pearled Treerunner Insectívoro X X
11
Grallariidae
Grallaria quitensis
Gralaria Leonada Tawny Antpitta Insectívoro X X X
12
Grallariidae
Grallaria squamigera
Gralaria Ondulada Undulated Antpitta Insectívoro X
13
Hirundinidae
Orochelidon murina
Golondrina Ventricafé Brown-bellied Swallow Insectívoro X
14
Parulidae
Myioborus
melanocephalus
Candelita de Anteojos Spectacled Redstart Insectívoro X X
15
Parulidae
Myiothlypis nigrocristata
Reinita Crestinegra Black-crested Warbler Insectívoro X X
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2. Consultora Ambiental, Desarrollo y Turismo Sostenible (CADYSOT). Ibarra, Ecuador.
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N
Familia
Taxón
Nombre común Nombre en inglés A B C
16
Passerellidae
Atlapetes latinuchus
Matorralero Nuquirrufo Omnívoro X X
17
Passerellidae
Atlapetes pallidinucha
Matorralero
Nuquipálido
Omnívoro X X
18
Rhinocryptidae
Scytalopus opacus
Tapaculo Paramero Paramo Tapaculo Insectívoro X X
19
Scolopacidae
Gallinago jamesoni
Becasina de Jameson Jamesons Snipe Insectívoro X
20
Strigidae
Bubo virginianus
Búho Coronado Great Horned Owl Carnívoro X
21
Thraupidae
Anisognathus igniventris
Tangara Montana
Ventriescarlata
Scarlet-bellied Mountain-
Tanager
Frugívoro X X
22
Thraupidae
Catamenia homochroa
Semillero Paramero Paramo Seedeater Granívoro X
23
Thraupidae
Catamenia inornata
Semillero Sencillo Plain-colored Seedeater Granívoro X X
24
Thraupidae
Conirostrum binghami
Picocono Gigante Giant Conebill Insectívoro X X
25
Thraupidae
Diglossa cyanea
Masked Flowerpiercer Frugívoro X X
26
Thraupidae
Diglossa humeralis
Black Flowerpiercer Frugívoro X X
27
Thraupidae
Dubusia taeniata
Tangara Montana
Pechianteada
Tanager
Omnívoro X
28
Thraupidae
Geospizopsis unicolor
Frigilo Plomizo Plumbeous Sierra-Finch Granívoro X X X
29
Thraupidae
Urothraupis stolzmanni
Quinuero Dorsinegro Black-backed Bush Tanager Omnívoro X
30
Trochilidae
Aglaeactis cupripennis
Rayito Brillante Shining Sunbeam Nectarívoro X X X
31
Trochilidae
Chalcostigma herrani
Picoespina Arcoiris Rainbow-bearded Thornbill Nectarívoro X
32
Trochilidae
Chalcostigma stanleyi
Picoespina Dorsiazul Blue-mantled Thornbill Nectarívoro X
33
Trochilidae
Eriocnemis luciani
Zamarrito Colilargo Nectarívoro X X
34
Trochilidae
Lesbia victoriae
Colacintillo Colinegro Black-tailed Trainbearer Nectarívoro X X
35 - 36
Trochilidae
Metallura tyrianthina
Metalura Tiria Tyrian Metaltail Nectarívoro X X X
37
Trochilidae
Metallura williami
Metalura Verde Viridian Metaltail Nectarívoro X X
38
Trochilidae
Oreotrochilus chimborazo
Estrellita Ecuatoriana Ecuadorian Hillstar Nectarívoro X X
39
Trochilidae
Ramphomicron
microrhynchum
Picoespina
Dorsipúrpura
Purple-backed Thornbill Nectarívoro X
40
Turdidae
Turdus fuscater
Mirlo Grande Great Thrush Omnívoro X X X
41
Troglodytidae
Cistothorus platensis
Soterrey Sabanero Grass Wren Insectívoro X X X
42
Tyrannidae
Anairetes parulus
Cachudito Torito Tufted Tit-Tyrant Insectívoro X X
43
Tyrannidae
Cnemarchus erythropygius
Alinaranja Lomirrojo Red-rumped Bush-Tyrant Insectívoro X
44
Tyrannidae
Elaenia albiceps
Elenia Crestiblanca White-crested Elaenia Insectívoro X
45
Tyrannidae
Mecocerculus leucophrys
Tiranillo Barbiblanco White-throated Tyrannulet Insectívoro X X X
46
Tyrannidae
Ochthoeca fumicolor
Pitajo Dorsipardo Brown-backed Chat-Tyrant Insectívoro X X X
47
Tyrannidae
Phyllomyias uropygialis
Tiranolete Lomileonado Tawny-rumped Tyrannulet Insectívoro X X
AGRADECIMIENTO
Este estudio se realizó en marco del programa FORESTA parte del Programa Acción Andina, con el apoyo de Global Forest
Generation y la Asociación de Ecosistemas Andinos – Ecoan. Su compromiso con la conservación de los ecosistemas altoandinos
permitió la ejecución de este levantamiento de información, necesario para comprender y proteger nuestra biodiversidad.
Expresamos nuestro sincero agradecimiento al equipo técnico y logístico del proyecto FORESTA, cuyo apoyo constante facilitó
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2. Consultora Ambiental, Desarrollo y Turismo Sostenible (CADYSOT). Ibarra, Ecuador.
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el desarrollo de la investigación en campo. Extendemos también un profundo agradecimiento al personal del Parque Nacional
Cayambe-Coca, así como a las administraciones del Parque Nacional Cotacachi-Cayapas y del Área de Protección Hídrica Ponce-
Paluguillo, por su colaboración y respaldo en la gestión de estas áreas protegidas. Su labor diaria es importante para la conservación
de este invaluable patrimonio natural.
Hacemos extensivo nuestro reconocimiento a la Hacienda Yanahurco, cuya hospitalidad y disposición para colaborar enriquecieron
Finalmente, agradecemos a la comunidad de Piñán por su apertura y participación activa en este estudio. Su compromiso con la
conservación y su profundo conocimiento del territorio son un ejemplo del papel fundamental que desempeñan las comunidades
locales en la protección de nuestros recursos naturales.
CONTRIBUCIÓN DE AUTORES
Eduardo Obando: Conceptualización, Metodología Software, Validación, Investigación, Análisis formal; Escritura, Administración
del proyecto, Escritura – Borrador original, Generación de fotografías.
Mayra Caiza: Escritura – Borrador original; Escritura – Revisión y edición, Visualización.
Francisco Tobar: Adquisición de fondos, Supervisión, Recursos, Generación de fotografías.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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Importance of Habitat Quality for High-Andean Birds in Polylepis Woodlands. Https://Doi.Org/10.13157/Arla.67.2.2020.Ra5,
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(2019). Lista Roja de las Aves del Ecuador. Ministerio del Ambiente, Aves y Conservación, Comité Ecuatoriano de Registros
Ornitológicos, Fundación Charles Darwin, Universidad del Azuay, Red Aves Ecuador & Universidad San Francisco de Quito.
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BTP.12047
Editorial Universidad Nacional de Loja
Dirección: Ciudad Universitaria Guillermo Falconí. Loja - Ecuador
Cod. Postal: 110111 PBX: +593 7 254 7252
email: bosqueslatitudcero@unl.edu.ec
www.unl.edu.ec revistas.unl.edu.ec/index.php/bosques
