e-ISSN: 1390-5902
CEDAMAZ Revista del Centro de Estudio y Desarrollo de la Amazonia , Vol. 10, No. 02, pp. 47–50, julio–diciembre 2020
Protocolo de desinfección para establecimiento in vitro de meristema apical
de banano Musa spp.
Disinfection protocol for in vitro establishment of banana apical merystema Musa spp.
Yerutí Mongelós Franco
1,*
, Carlos Mussi Cataldi
1
, Nabila Duarte Ovejero
2
y Maura Díaz Lezcano
4
1
Laboratorio de Biotecnología, Centro Multidisciplinario de Investigaciones Tecnológicas, Universidad Nacional de Asunción. San
Lorenzo, Paraguay.
2
Maestría en Fitosanidad, Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad Nacional de Asunción. San Lorenzo, Paraguay.
3
Laboratorio de Biología, Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad Nacional de Asunción. San Lorenzo, Paraguay.
*
Autor para correspondencia: yeruti91@gmail.com
Fecha de recepción del manuscrito: 30/07/2020 Fecha de aceptación del manuscrito: 16/12/2020 Fecha de publicación: 31/12/2020
Resumen—La propagación in vitro de banano (Musa spp.) constituye una alternativa rentable y segura para la producción de mudas
libres de patógenos. Uno de los principales problemas del establecimiento in vitro de este cultivo es la alta carga de contaminantes que
acompaña a los explantes. Por ello, el objetivo de este estudio fue evaluar dos concentraciones de hipoclorito de sodio (NaClO) para la
desinfección de meristemas de Musa spp. Las concentraciones utilizadas fueron de 5% y 10%, con un tiempo de inmersión de 5 minutos,
y fueron evaluados los porcentajes de sobrevivencia, contaminación y oxidación. Se registró un 100% de sobrevivencia de explantes y 0%
de contaminación en el tratamiento con NaClO al 10% durante 5 minutos, en contraste con un 62,5% de explantes viables y un 37,5% de
contaminación con hongos y bacterias en el tratamiento con NaClO al 5%. El porcentaje de oxidación de explantes fue de 100% en ambos
tratamientos. El tratamiento con NaClO al 10% durante 5 minutos fue el más efectivo para la desinfección y establecimiento in vitro de
meristema apical de Musa spp
Palabras clave—Banana; Micropropagación; Contaminación; Oxidación.
Abstract—In vitro propagation of banana (Musa spp.) is a profitable and safe alternative for the production of pathogen-free seedlings. One
of the main problems in the in vitro establishment of this culture is the high load of contaminants that accompanies the explants. Therefore,
the objective of this study was to evaluate two concentrations of sodium hypochlorite (NaClO) for the disinfection of meristems of Musa
spp. The concentrations used were 5% and 10%, with an immersion time of 5 minutes, and the percentages of survival, contamination
and oxidation were evaluated. A 100% survival of explants and 0% contamination were recorded in the treatment with 10% NaClO for
5 minutes, in contrast to 62.5% of viable explants and 37.5% contamination with fungi and bacteria in treatment with 5% NaClO. The
percentage of oxidation of explants was 100% in both treatments. Treatment with 10% NaClO for 5 minutes was the most effective for
disinfection and in vitro establishment of the apical meristem of Musa spp.
Keywords—Banana; Micropropagation; Contamination; Oxidation.
INTRODUCCIÓN
E
l cultivo de banano (Musa spp.) tiene gran relevancia
económica y social en Paraguay, ya que constituye una
fuente importante de ingresos para pequeños productores,
así como también para medianos productores asociados
en cooperativas productivas, principalmente en los depar-
tamentos de Caaguazú y San Pedro, zonas productoras de
banano por excelencia en el país (Ministerio de Agricultura
y Ganadería, 2008). El consumo de banano está difundido en
todo el mundo, por lo cual cuenta con un mercado nacional
e internacional importante.
Sin embargo, a pesar del enorme potencial productivo,
el cultivo presenta diversas limitantes, especialmente en lo
que concierne a la propagación. Las variedades comerciales
de banano no producen semillas, por lo cual la propagación
se realiza con material vegetativo extraído directamente
del campo, principalmente por cormos. Sin embargo, esta
actividad conlleva diferentes problemas fitosanitarios ya que
generalmente poseen una alta carga de contaminantes, y
constituyen un medio de diseminación de patógenos, lo cual
no garantiza la productividad y sanidad de las plantaciones.
Además, debido al escaso número de variedades locales y su
reproducción asexual, el banano tiene una reducida reserva
genética que lo hace vulnerable a plagas y enfermedades.
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PROTOCOLO DE DESINFECCIÓN PARA ESTABLECIMIENTO IN VITRO CALLE-CHILIQUINGA et al.
Los cultivares son susceptibles a enfermedades como la
Sigatoka negra (Mycospharella fijiensis), la marchitez
bacteriana (Ralstonia solanacearum), y el Mal de Panamá
(Fusarium oxysporum f. sp cubense) que ocasionan pérdidas
en la producción de frutas y afecta la disponibilidad de
material vegetal de propagación sano en campo (Ancasi et
al., 2016). Otro de los problemas que se presentan con esta
actividad es la lentitud de la propagación y la baja tasa de
multiplicación obtenida en el campo (Díaz Lezcano et al.,
2016).
Frente a estos problemas, la propagación in vitro cons-
tituye una de las alternativas para la obtención de plantas
sanas libres de patógenos (Sandoval et al., 1991). El cultivo
in vitro de meristema apical permite la producción en masa
de mudas de banano totalmente uniformes y de alta calidad
sanitaria, libres de patógenos, incluso en espacios reducidos
(Castro et al., 2002). Por todos los beneficios que ofrece esta
técnica, es fundamental establecer un protocolo eficiente de
desinfección de los explantes que permita la implementación
óptima de esta técnica.
Actualmente se han desarrollado con gran éxito diferentes
técnicas y metodologías para la micropropagación in vitro
de musáceas, que permiten la obtención masiva de plántulas
útiles en el establecimiento de cultivos comerciales (Pérez
et al., 2011). La multiplicación in vitro acompañada de una
buena selección en el campo del material parental, permite
disponer de plantas con excelentes condiciones agronómicas
y fitosanitarias para conservar la especie y disponer de
germoplasma (Medina et al., 2015).
La propagación in vitro de Musa spp. generalmente se
realiza por meristemos apicales extraídos de los cormos,
debido a que estos meristemos tienen un crecimiento
longitudinal y también por su totipotencia. Los meristemos
se establecen en un medio de cultivo adecuado donde puede
crecer una nueva planta (Ortega et al., 2010). La desinfec-
ción de los explantes es fundamental para esta técnica, y la
concentración del desinfectante pude ser determinante para
su éxito (Díaz Lezcano et al., 2016).
Por todo lo expuesto, el objetivo de la presente investi-
gación fue evaluar la efectividad de dos concentraciones de
hipoclorito de sodio en la desinfección de meristemas apica-
les para el establecimiento in vitro de banano Musa spp, bajo
la premisa de que, a mayor concentración de hipoclorito de
sodio, mayor efectividad en el control de la contaminación.
MATERIALES Y MÉTODOS
El ensayo fue desarrollado en el Laboratorio de Biología
de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad
Nacional de Asunción, ubicada en la ciudad de San Lorenzo,
Departamento Central, Paraguay. El periodo de ejecución
estuvo comprendido entre los meses de abril y mayo de 2018.
Se utilizó un diseño experimental completamente al azar,
con 2 tratamientos y 8 repeticiones, totalizando 16 unidades
experimentales, cada una de las cuales estuvo constituida
por un tubo de ensayo con un explante. Los tratamientos
aplicados estuvieron comprendidos por diferentes concen-
traciones de hipoclorito de sodio en la desinfección de los
explantes, los cuales se detallan en la Tabla 1. El número
reducido del número de muestras se dio en función de la
escasez en la disponibilidad de plantas madres sanas.
Tabla 1: Tratamientos aplicados en la desinfección de meristema
apical de Musa sp. para establecimiento in vitro. FCA – UNA. San
Lorenzo, Paraguay. 2018.
Tratamiento Concentración NaClO
Tiempo de
exposición
1 5% 5 min.
2 10% 5 min.
Para la siembra in vitro, se utilizaron 16 ápices provenien-
tes de hijuelos de Musa sp. de 0,8 a 1 m de altura, colectados
del Campo Experimental de la FCA – UNA.
Los hijuelos fueron extraídos del suelo con una pala y
en el campo se procedió a eliminar la parte aérea. Pos-
teriormente, las hojas del pseudotallo fueron eliminadas
hasta observar los tejidos blancos del cormo. Los tejidos
blancos también fueron removidos hasta obtener un pequeño
cono con meristema de 4 a 6 cm de longitud, los cuales
constituyeron el material de siembra.
Los mismos fueron desinfectados mediante una inmersión
en etanol al 70% durante 30 segundos, luego en NaClO en
las diferentes concentraciones según los tratamientos durante
5 minutos, seguido de un triple enjuague con agua destilada
estéril. El material desinfectado fue sembrado en medio
de cultivo MS (Murashige y Skoog, 1962) suplementado
con carbón activado (3 g.L-1), y fue incubado en oscuridad
durante 7 días (Fig. 1).
Fig. 1: Procedimiento para establecimiento in vitro de Musa sp. A)
Meristema apical. B) Aplicación de los tratamientos. C) Siembra
en medio MS con carbón activado. FCA – UNA. San Lorenzo,
Paraguay. 2018.
La identificación del agente causal se basó en la iden-
tificación visual del crecimiento micelial de los hongos
o la apariencia lechosa de color blanquecino o amarillo,
característico de las bacterias, pudiéndose manifestar ambos
patógenos: dentro del medio de cultivo, alrededor del
explante en contacto con el medio de cultivo o saliendo del
meristemo del explante.
Las variables evaluadas fueron el porcentaje de sobrevi-
vencia, contaminación y oxidación. Se aplicó la prueba de
T Student a un nivel de confianza del 95% para verificar si
existen diferencias significativas entre los tratamientos apli-
cados.
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RESULTADOS
Se evaluaron dos concentraciones de hipoclorito de sodio
para determinar la eficiencia en la desinfección de ápices de
Musa sp. con la finalidad de realizar el establecimiento in
vitro. Los resultados obtenidos se detallan en la Tabla 2.
Tabla 2: Sobrevivencia, contaminación y oxidación de ápices de
Musa sp. desinfectados con diferentes concentraciones de
hipoclorito de sodio. FCA – UNA. San Lorenzo, Paraguay. 2018.
NaClO
(%)
Sobrevivencia
(%)
Contaminación
(%)
Oxidación
(%)
5 62,5 37,5 100
10 100 0 100
El menor porcentaje de sobrevivencia se registró en el
tratamiento con hipoclorito de sodio al 5%, en donde se
constató un 62,5% de explantes viables. Por otro lado, para
este tratamiento se registró un 37,5% de contaminación
con hongos y bacterias. El tratamiento con hipoclorito
de sodio al 10% presentó un 100% de sobrevivencia y
0% de explantes contaminados, por lo cual resultó ser el
tratamiento más efectivo en el control de la contaminación
para el establecimiento in vitro de meristema apical de
banano, registrándose diferencias significativas mediante la
aplicación de la prueba de T Student a un nivel de confianza
del 95%.
En cuanto a la contaminación del medio de cultivo (Fig.
2), se presentó cerca de 38% de explantes contaminados en
el tratamiento con la concentración de 5% de NaClO y para
la mayor concentración no se presentó contaminación algu-
na, siendo esta más efectiva en la desinfección del material.
En cuanto a los agentes contaminantes, se puede constatar
que el 25% estuvo constituido por bacterias, mientras que
un 12,5% de explantes estuvieron contaminados con hongos.
En relación al porcentaje de oxidación, se observó que, pa-
ra ambos tratamientos, el 100% de los meristemas apicales
sembrados presentaron oxidación en diferentes niveles (Fi-
gura 2).
Fig. 2: Contaminación con hongos y bacterias en explantes de
Musa sp. tratados con diferentes concentraciones de hipoclorito de
sodio. FCA – UNA. San Lorenzo, Paraguay. 2018..
DISCUSIÓN
Abdelwahd et al. (2008) evaluaron diferentes protocolos
de desinfección para el establecimiento in vitro de meristema
apical de Musa sp., y constataron que la probabilidad de
contaminación por hongos y bacterias es 8,65 veces mayor
cuando se utiliza hipoclorito de sodio al 5%, en contraste
con la utilización de hipoclorito de sodio al 10%. Los
resultados obtenidos en la presente investigación también
demostraron que la aplicación de NaClO al 10% es más
efectiva para controlar la contaminación, en contraste con la
utilización de NaClO al 5%.
Al respecto, Medina et al. (2015) registraron un bajo
porcentaje de contaminación en explantes tratados con hipo-
clorito de sodio al 3%, sin embargo, el tiempo de exposición
fue de 20 minutos. Por otro lado, en un estudio sobre el
efecto del carbón activado y las condiciones de oscuridad
para la propagación in vitro de Musa sp., Díaz Lezcano et al.
(2016) registraron un 39,09% de ápices contaminados en la
fase de establecimiento, con un tratamiento con hipoclorito
de sodio al 5%, lo cual coincide con los resultados obtenidos
en este estudio.
Por su parte, Pereira et al. (2003) mencionan que la
contaminación fúngica en el cultivo in vitro de tejidos
vegetales procede principalmente del ambiente, mientras
que las bacterias generalmente acompañan al explante y son
un indicador de una desinfección deficiente. Así mismo,
estos autores afirman que la contaminación bacteriana es
más perjudicial, ya que no se detecta de forma temprana y
los agentes contaminantes pueden ser trasferidos durante
los subcultivos. En la presente investigación se registró un
25% y 12,5% de contaminación con bacterias y hongos,
respectivamente, en el tratamiento con 5% de NaClO, lo
cual indica una desinfección insuficiente de los explantes.
Sin embargo, la aplicación de NaClO al 10% resultó
efectiva para controlar estos agentes contaminantes. Sánchez
y Salaverría (2004) también observaron que a medida que
se incrementa la concentración de cloro y el tiempo de
inmersión, la contaminación de los explantes disminuye.
En cuanto a la oxidación, el 100% de los explantes
tratados con 5% y 10% de NaClO presentó oxidación.
Ramírez et al. (2008), la oxidación puede estar asociada con
compuestos fenólicos, responsables del ennegrecimiento,
causado por enzimas oxidorreductasas que se liberan durante
el proceso de obtención de los explantes por corte del tejido,
lo cual es muy característico en banano, y por esta razón
se utiliza carbón activado en el medio de cultivo, para
adsorber los compuestos fenólicos, aunque en la presente
investigación no evitó la oxidación, por lo que queda abierta
la posibilidad de aumentar su concentración para obtener
mejores resultados.
Existe también la posibilidad de utilizar agentes antioxi-
dantes o la combinación de estos con carbón activado para
aumentar el porcentaje de sobrevivencia de los explantes.
Abdelwahd et al. (2008) observaron que la suplementación
con ácido ascórbico a una concentración de 1 mg.L-1 en
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PROTOCOLO DE DESINFECCIÓN PARA ESTABLECIMIENTO IN VITRO CALLE-CHILIQUINGA et al.
combinación con 10 g.L-1 de carbón activado en el medio
de cultivo redujo significativamente la oxidación y mejoró la
regeneración in vitro de brotes de habas Vicia faba L.
Los autores anteriormente citados también sugieren la
utilización de nitrato de plata o cisteína como agentes
antioxidantes. Sánchez y Salaverría (2004) eliminaron
completamente la oxidación en explantes de fresa Fragaria
x ananassa al adicionar 4 g.L-1 de cisteína al medio de
cultivo, en presencia de luz, lo cual podría funcionar para la
propagación in vitro de meristema apical de banano.
En relación a la sobrevivencia, Ubilla N (2016) obtuvo re-
sultados similares a los obtenidos en este estudio al registrar
un 62% a 64% de meristemas apicales de Musa sp. estable-
cidos in vitro, cuando sometió estos explantes a una desin-
fección con hipoclorito de sodio al 5% durante 10 minutos.
A medida que se incrementa la concentración de cloro para
la desinfección, la sobrevivencia de explantes se ve reducida
hasta un 50% en algunos casos (Sánchez y Salaverría, 2004).
CONCLUSIÓN
En las condiciones en las cuales se llevó a cabo este es-
tudio, se concluye que el tratamiento de desinfección más
efectivo para el establecimiento in vitro de meristema apical
de Musa sp. es con hipoclorito de sodio al 10%.
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