Balance hormonal para la fase de brotación y enraizamiento in vitro de explantes de Cinchona Officinalis L., provenientes de relictos boscosos de la provincia de Loja
Keywords:
Cinchona, in vitro, reguladores de crecimiento, brotamiento, enraizamientoAbstract
Cinchona officinalis L., quina o cascarilla, es endémica de la provincia de Loja, es uno de los géneros de mayor importancia por al alto contenido de alcaloides que contiene su corteza, el cual durante siglos ayudó a combatir la malaria. En la presente investigación se determinó el balance hormonal adecuado para las fases de multiplicación y enraizamiento in vitro de Cinchona officinalis L. El material vegetal fue proveniente de tres relictos boscosos de la provincia de Loja: Zamora Huayco, Uritusinga y Selva Alegre. Para la fase de multiplicación y enraizamiento in vitro se utilizó ápices caulinares y segmentos nodales provenientes de vitroplantas, se sembraron en medio de cultivo Murashige & Skoog (MS) suplementado con auxinas y citocininas en diferentes concentraciones; para brotamiento: AIA (0.0; 0.2; 0.5 mg L-1) y BAP (2.0 y 2.5 mg L-1) y enraizamiento AIB (0.0; 0.2; 1.0; 2.0 mg L-1) y BAP (0.0 y 0.5 mg L-1). El tratamiento T2 (0.0 mg L-1 AIA + 2.5 mg L-1 BAP) se obtuvo mayor porcentaje de brotación en los tres sectores Zamora Huayco con 97.78 %, Uritusinga 93,33 % y Selva Alegre alcanzando 78,89 %. Así También, el T2 (2.0 mg L-1 AIB + 0.0 mg L-1 BAP), presentó mayor porcentaje de enraizamiento en los sectores Zamora Huayco con 46,11 %, Uritusinga 17,78 % y Selva Alegre con 26,67 %. De esta manera, se comprobó que a mayor concentración de citoquininas mayor estimulación de brotes; y al ser combinadas con auxinas a altas concentraciones se estimulan la formación de raíces.References
Acosta-Solís, M. (1947). Cinchonas del Ecuador. Editorial del Ecuador, Quito.
Anda, A. (2002). La Cascarilla. Ed. Universidad Técnica Particular de Loja. Loja-Ecuador.
Anderson, L., & Taylor, C. (1994). “Rubiaceae-Cinchoneae-Coptosapelteae”. En: Harling G, Anderson, L. (Eds), Flora of Ecuador No. 50. Council for Nordic Publications in Botany. Museo Botánica. Dinamarca.
Armijos, R., & Pérez, C. (2011). Germinación y multiplicación in vitro en Cinchona pubescens Vahl y Cinchona officinalis Linneo. Loja, Ecuador: Universidad Técnica Particular de Loja, Universidad Politécnica de Madrid.
Buddenhagen, C., Renteria, J., Gardener, M., Wilkinson, S., Soria, M., Yanez, P., Tye, A., & Valle, R. (2004). Control of a highly invasive tree Cinchona, in Galápagos. Weed Technonolgy 18: 1194-1202.
Camp, W. (1949). “Cinchona at high altitudes in Ecuador“. Brittonian Volumene 6.
Chamba L. (2019). Procesos biotecnológicos para el brotamiento y enraizamiento de Cinchona officinalis L., a partir de vitroplantas, en la Argelia- Loja. (In press).
Conde, V. (2017). Procesos biotecnológicos para la proliferación y enraizamiento in vitro de hualtaco Loxopterygium huasango Spruce ex Engl., proveniente del bosque seco de la provincia de Loja. Bosques Latitud Cero. 7(1): 34-55.
Cóndor C., Bras E., Loayza O., & Reyna K. (2009). Estudio Químico De Los Tallos De Cinchona pubescens Vahl. RevSocQuím Perú. 75 (1).
Córdova, P. (2012). Evaluación del efecto de los ciclos de cultivo y reguladores de crecimiento sobre la estabilidad genética en el cultivo de segmentos nodales de Cinchona officinalis usando marcadores ISSR. Universidad Técnica Particular de Loja.
Cuvi, N. (2011). Ciencia e imperialismo en América Latina: La Misión de Cinchona y las estaciones agrícolas cooperativas. Saarbrucken: Editorial Académica Española.
Daquinta, M., Rodríguez, L., Ramos, L., & Capote, R. (2003). Biotechnology management of species and bamboos in Cuba. XII Woorld Forestry. Québec, Canada.
Díaz-Quichimbo, G., Poma-Angamarca, R., Minchala-Patiño, J., González-Zaruma, D., Rojas-Idrogo, C., & Delgado-Paredes, G. (2013). In vitro Clonal Propagation and Germplasm Conservation in the troplical Timber Tree Spanish White Cedar (C. Montana Moritz Ex Turcz.) (Meliaceae). Journal of Biological Sciences. 7(1).59-69.
Garmendia, A. (2005). El árbol de la quina (Cinchona spp), Distribución, caracterización de su hábitat y arquitectura. Loja, Ecuador: Editorial Universidad Técnica Particular de Loja.
Jha, S., & Jha, T. (1989). Micropropagation of Cephaelis ipecacuanha Rich. Plant Cell Reports. 437–9.
Jordán y Casereto. (2006). Hormonas y Reguladores de crecimiento: Auxinas, Giberelinas y Citocininas. Fisiología Vegetal. 15:20.
Jorgensen, P., & León, M. (1999). Catalogue of the vascular plants of Ecuador. Monogr. Syst. Bot. Missouri Bot. Gard. 75: 1- 1182.
Lima, R., Moreno, J., Eras, V., Michala, J., Gonzalez, D., Yaguana, M., & Valarezo, C. (2018). Propagación in vitro de Cinchona officinalis L., a partir de semillas. Revista de Invesigaciones Altoandinas. 20(2). 169–178. DOI:http://dx.doi.org/10.18271/ria.2018.361
Loján, L. (1992). El verdor de los Andes: Árboles y arbustos nativos para el desarrollo forestal alto andino. FAO. Proyecto de desarrollo forestal participativo en los Andes. Quito, Ecuador.
Madsen, J. (2002). Historia cultural de la cascarilla de Loja, 385-399pp. En Z Aguirre M., J.E. Madsen, E. Cotton & H. Balslev (eds), Botánica austro ecuatoriana: Estudio sobre los recursos vegetales en las provincias de El Oro, Loja y Zamora Chinchipe. Ediciones Abya Yala, Quito-Ecuador.
Moya, A. (1994). Augey Crisis de la Cascarilla en la Audiencia de Quito, Siglo XVIII. FLACSO, sede Ecuador. Obtenido de: http://www.flacsoandes.edu.ec/libros/digital/44227.pdf
Murashige, T., & Skoog. (1962). A revised médium gor rapid growth and bioessays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum. 15: 473- 497. Disponible en: http://www.javeriana.edu.co/biblos/tesis/ciencias/tesis68.pdf
Pérez, J. (1998). Propagación y mejora genética de plantas por biotecnología. Instituto de Biotecnología de las plantas. Ediciones GEO. Santa Clara, Cuba.
Pérez-Tornero, O., Egea, J, Vanoostende, A., & Burgos, L. (2000). Assessment of factors affecting adventitious shoot regeneration from in vitro cultured leaves of apricot, Plant Science, 158: 61-70.
Roja, G., Benjamin, B., Heble, R., Patankar, A., & Sipahimalani, A. (1990). The effect of plant growth regulators and nutrient conditions on growth and alkaloid production in multiple shoot cultures of Rauwolfia serpentina. Phytotherapy Research 4(2): 49–52.
Rout, G., & Das, P. (1997a). In vitro organogenesis in ginger (Zingiber officinale Rosc.). J Herbs Spices Medicinal Plants. 4(4): 41–51.
Rout, G., & Das, P. (1997b). Techniques of micropropagation in vitro. In: Bose TK, Mitra SK, Sadhu MK, Das P, editors. Propagation of Tropical and Sub-tropical Horticultural Crops. Calcutta: Kalyani Publishers. 105–16 pp.
Sharma, T., & Singh, B. (1997). High frequency in vitro multiplication of disease-free Zingiber officinale Rosc. Plant Cell Reports. 17(1): 68–72.
Shasany, A., Khanuja, S., Dhawan, S., Yadav, U., Sharma, S., & Kumar S. (1998). High regenerative nanature of Mentha arvensis internodes. J Biosci. 23(5) 641–6.
Tsay, H., Gau, T., & Chen, C. (1998). Rapid clonal propagation of Pinellia ternata by tissue culture. Plant Cell Reports. 8 450–4.
Ulloa, C. (2006). Aromas y sabores andinos. En: M. Moraes R., B. Øllgaard, L.P. Kvist, F. Borchsenius y H. Balslev (Eds.), Botánica económica de los Andes Centrales. Universidad Mayor de San Andrés. La Paz, Bolivia.
Zevallos, P. (1989). Taxonomía, distribución geográfica y estatus del género Cinchona en Perú. Universidad Nacional Agraria la Molina. Lima-Perú
Anda, A. (2002). La Cascarilla. Ed. Universidad Técnica Particular de Loja. Loja-Ecuador.
Anderson, L., & Taylor, C. (1994). “Rubiaceae-Cinchoneae-Coptosapelteae”. En: Harling G, Anderson, L. (Eds), Flora of Ecuador No. 50. Council for Nordic Publications in Botany. Museo Botánica. Dinamarca.
Armijos, R., & Pérez, C. (2011). Germinación y multiplicación in vitro en Cinchona pubescens Vahl y Cinchona officinalis Linneo. Loja, Ecuador: Universidad Técnica Particular de Loja, Universidad Politécnica de Madrid.
Buddenhagen, C., Renteria, J., Gardener, M., Wilkinson, S., Soria, M., Yanez, P., Tye, A., & Valle, R. (2004). Control of a highly invasive tree Cinchona, in Galápagos. Weed Technonolgy 18: 1194-1202.
Camp, W. (1949). “Cinchona at high altitudes in Ecuador“. Brittonian Volumene 6.
Chamba L. (2019). Procesos biotecnológicos para el brotamiento y enraizamiento de Cinchona officinalis L., a partir de vitroplantas, en la Argelia- Loja. (In press).
Conde, V. (2017). Procesos biotecnológicos para la proliferación y enraizamiento in vitro de hualtaco Loxopterygium huasango Spruce ex Engl., proveniente del bosque seco de la provincia de Loja. Bosques Latitud Cero. 7(1): 34-55.
Cóndor C., Bras E., Loayza O., & Reyna K. (2009). Estudio Químico De Los Tallos De Cinchona pubescens Vahl. RevSocQuím Perú. 75 (1).
Córdova, P. (2012). Evaluación del efecto de los ciclos de cultivo y reguladores de crecimiento sobre la estabilidad genética en el cultivo de segmentos nodales de Cinchona officinalis usando marcadores ISSR. Universidad Técnica Particular de Loja.
Cuvi, N. (2011). Ciencia e imperialismo en América Latina: La Misión de Cinchona y las estaciones agrícolas cooperativas. Saarbrucken: Editorial Académica Española.
Daquinta, M., Rodríguez, L., Ramos, L., & Capote, R. (2003). Biotechnology management of species and bamboos in Cuba. XII Woorld Forestry. Québec, Canada.
Díaz-Quichimbo, G., Poma-Angamarca, R., Minchala-Patiño, J., González-Zaruma, D., Rojas-Idrogo, C., & Delgado-Paredes, G. (2013). In vitro Clonal Propagation and Germplasm Conservation in the troplical Timber Tree Spanish White Cedar (C. Montana Moritz Ex Turcz.) (Meliaceae). Journal of Biological Sciences. 7(1).59-69.
Garmendia, A. (2005). El árbol de la quina (Cinchona spp), Distribución, caracterización de su hábitat y arquitectura. Loja, Ecuador: Editorial Universidad Técnica Particular de Loja.
Jha, S., & Jha, T. (1989). Micropropagation of Cephaelis ipecacuanha Rich. Plant Cell Reports. 437–9.
Jordán y Casereto. (2006). Hormonas y Reguladores de crecimiento: Auxinas, Giberelinas y Citocininas. Fisiología Vegetal. 15:20.
Jorgensen, P., & León, M. (1999). Catalogue of the vascular plants of Ecuador. Monogr. Syst. Bot. Missouri Bot. Gard. 75: 1- 1182.
Lima, R., Moreno, J., Eras, V., Michala, J., Gonzalez, D., Yaguana, M., & Valarezo, C. (2018). Propagación in vitro de Cinchona officinalis L., a partir de semillas. Revista de Invesigaciones Altoandinas. 20(2). 169–178. DOI:http://dx.doi.org/10.18271/ria.2018.361
Loján, L. (1992). El verdor de los Andes: Árboles y arbustos nativos para el desarrollo forestal alto andino. FAO. Proyecto de desarrollo forestal participativo en los Andes. Quito, Ecuador.
Madsen, J. (2002). Historia cultural de la cascarilla de Loja, 385-399pp. En Z Aguirre M., J.E. Madsen, E. Cotton & H. Balslev (eds), Botánica austro ecuatoriana: Estudio sobre los recursos vegetales en las provincias de El Oro, Loja y Zamora Chinchipe. Ediciones Abya Yala, Quito-Ecuador.
Moya, A. (1994). Augey Crisis de la Cascarilla en la Audiencia de Quito, Siglo XVIII. FLACSO, sede Ecuador. Obtenido de: http://www.flacsoandes.edu.ec/libros/digital/44227.pdf
Murashige, T., & Skoog. (1962). A revised médium gor rapid growth and bioessays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum. 15: 473- 497. Disponible en: http://www.javeriana.edu.co/biblos/tesis/ciencias/tesis68.pdf
Pérez, J. (1998). Propagación y mejora genética de plantas por biotecnología. Instituto de Biotecnología de las plantas. Ediciones GEO. Santa Clara, Cuba.
Pérez-Tornero, O., Egea, J, Vanoostende, A., & Burgos, L. (2000). Assessment of factors affecting adventitious shoot regeneration from in vitro cultured leaves of apricot, Plant Science, 158: 61-70.
Roja, G., Benjamin, B., Heble, R., Patankar, A., & Sipahimalani, A. (1990). The effect of plant growth regulators and nutrient conditions on growth and alkaloid production in multiple shoot cultures of Rauwolfia serpentina. Phytotherapy Research 4(2): 49–52.
Rout, G., & Das, P. (1997a). In vitro organogenesis in ginger (Zingiber officinale Rosc.). J Herbs Spices Medicinal Plants. 4(4): 41–51.
Rout, G., & Das, P. (1997b). Techniques of micropropagation in vitro. In: Bose TK, Mitra SK, Sadhu MK, Das P, editors. Propagation of Tropical and Sub-tropical Horticultural Crops. Calcutta: Kalyani Publishers. 105–16 pp.
Sharma, T., & Singh, B. (1997). High frequency in vitro multiplication of disease-free Zingiber officinale Rosc. Plant Cell Reports. 17(1): 68–72.
Shasany, A., Khanuja, S., Dhawan, S., Yadav, U., Sharma, S., & Kumar S. (1998). High regenerative nanature of Mentha arvensis internodes. J Biosci. 23(5) 641–6.
Tsay, H., Gau, T., & Chen, C. (1998). Rapid clonal propagation of Pinellia ternata by tissue culture. Plant Cell Reports. 8 450–4.
Ulloa, C. (2006). Aromas y sabores andinos. En: M. Moraes R., B. Øllgaard, L.P. Kvist, F. Borchsenius y H. Balslev (Eds.), Botánica económica de los Andes Centrales. Universidad Mayor de San Andrés. La Paz, Bolivia.
Zevallos, P. (1989). Taxonomía, distribución geográfica y estatus del género Cinchona en Perú. Universidad Nacional Agraria la Molina. Lima-Perú
Downloads
Published
2019-06-05
How to Cite
Eras-Guamán, V. ., Moreno, J., Yaguana, M., Poma, R., & Paredes, D. (2019). Balance hormonal para la fase de brotación y enraizamiento in vitro de explantes de Cinchona Officinalis L., provenientes de relictos boscosos de la provincia de Loja. Bosques Latitud Cero, 9(1), 58–68. Retrieved from https://revistas.unl.edu.ec/index.php/bosques/article/view/586
Issue
Section
Artículos
License
This work is published under the Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International (CC BY-NC-SA 4.0) license. This means that users may copy, distribute, and adapt the content, provided that proper credit is given to the authors and the journal. Commercial use of the material is not permitted. Additionally, any derivative work must be distributed under the same license. This license ensures open access to knowledge, promoting the dissemination and reuse of published works for non-commercial purposes, respecting authorship, and ensuring the free circulation of content under fair terms.
